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17HPN |
17-HIDROXIPROGESTERONA NEONATAL, GOTA DE SANGRE SECA |
Plazos |
7 Días hábiles. |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras deben ser obtenidas desde las 48 horas del nacimiento hasta los 7 días de vida, como máximo.Solicitar al laboratorio el soporte de papel apropiado para la obtención y transporte de la muestra.
Método de obtención de las muestras: 1. Entibiar el talón del bebé con una compresa tibia, punzarlo con una lanceta desechable, formar con el pulgar y el índice un pliegue de la piel en lugar de la punción y oprimir para obtener las gotas de sangre 2. Embeber con la sangre cada uno de los círculos marcados en el papel hasta que la sangre se distribuya homogéneamente por toda la superficie del círculo en ambas caras del mismo. 3. Completar cuidadosamente todos los datos solicitados en el soporte y colocarlo en un envase tipo Ziploc para proteger de la humedad. Si es necesario adjuntar planilla de datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Fluoroinmunoensayo con tecnología DELFIA ® |
Valores de referencia |
Hasta 22 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
07.10.2026 |
17HPO |
17-HIDROXIPROGESTERONA, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. Recomendaciones: Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hombre adulto 0.5 a 2.1 ng/ml Mujeres: Fase folicular: 0.1 a 0.8 ng/ml Fase lútea: 0.6 a 2.3 ng/ml Pos menopausia: 0.1 a 0.6 ng/ml 1-3 meses hasta 13.7 ng/ml Prepuberes hasta 1.7 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
25.08.2026 |
20210 |
GEN DEL FACTOR II (PROTROMBINA), POLIMORFISMO G20210A, SANGRE PERIFÉRICA |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 5,0 ml de sangre periférica con EDTA, en el día de obtención de la muestra. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Real Time PCR |
Valores de referencia |
La presencia de la mutación G20210A en el gen del Factor II (Protrombina), está asociada a eventos trombóticos. • Genotipo Homocigoto Normal (20210GG). No presenta riesgo. • Genotipo Heterocigoto (20210GA): Riesgo moderado • Genotipo Homocigoto Mutado (20210AA): Riesgo aumentado. |
Modificado/Vigencia |
23.12.2024 |
21HDR |
ANTICUERPOS ANTI 21 HIDROXILASA |
Plazos |
24 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Elisa |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
10.07.2025 |
5HI24 |
ACIDO 5 - HIDROXIINDOLACETICO (5-HIAA), ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 3 ml de orina de 24 horas con el conservante,congelada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
|
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
1.0 a 10.0 mg/24 hs |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
5NUC |
5'- NUCLEOTIDASA , SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. Almacenar a 2 - 8 ºC hasta 7 días. Luego conservar congelado a -20 ºC |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimático |
Valores de referencia |
Hasta 10.0 UI/l |
Modificado/Vigencia |
15.10.2026 |
A1CTUR |
HEMOGLOBINA GLICOSILADA (A1C), SANGRE |
Plazos |
1 Dia hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2.5 ml de sangre con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
|
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
4.8 a 5.9 % (IFCC: 30 a 41 mmol/mol)
|
Modificado/Vigencia |
31.01.2024 |
A2APL |
ALFA 2 ANTIPLASMINA, ACTIVIDAD, PLASMA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio 3,0 ml de plasma citratado, congelado (-18°C a -20°C). |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Funcional-Cromogénico |
Valores de referencia |
80 a 120% |
Modificado/Vigencia |
21.08.2025 |
A2MAC |
ALFA 2 MACROGLOBULINA, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunodifusión radial |
Valores de referencia |
107 - 450 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
07.11.2018 |
A4 |
ANDROSTENODIONA, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Recomendaciones: Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hombre adulto: 0.6 a 3.1 ng/ml Mujer adulta: 0.3 a 3.3 ng/ml Postmenopausia: 0.3 a 1.0 ng/ml Prepúberes: 0.3 a 1.0 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
09.02.2026 |
ABLCR |
ANTIGENOS BACTERIANOS, LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO (Neisseria meningitidis grupos A, B, C |
Plazos |
4 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir la laboratorio de proceso líquido cefalorraquídeo en envase estéril. Indicar la edad del paciente. Laboratorio de Proceso:Clinica Los Arcos – Sector Bacteriologia –TE 4778 4628 |
Instrucciones al paciente |
N.A.: |
| Método |
Aglutinación de partículas |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
16.11.2021 |
ACAQU |
NMO ANTICUERPOS IgG (AQUAPORINA 4) |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio 1 ml de suero o LCR
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
CBA (cell-based assay) |
Valores de referencia |
Negativo: Valor de Corte 1/10 |
Modificado/Vigencia |
26.02.2026 |
ACARN |
ACILCARNITINA, GOTA DE SANGRE SECA (Carnitina total y esterificada, Índices de acetilcarnitin |
Plazos |
18 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Solicitar al laboratorio el soporte de papel apropiado para la obtención y transporte de la muestra. Método de obtención de las muestras: BEBES :1. Entibiar el talón del bebé con una compresa tibia, punzarlo con una lanceta desechable, formar con el pulgar y el índice un pliegue de la piel en lugar de la punción y oprimir para obtener las gotas de sangre; 2. Embeber con la sangre cada uno de los círculos marcados en el papel hasta que la sangre se distribuya homogéneamente por toda la superficie del círculo en ambas caras del mismo. NIÑOS Y ADULTOS: Sangre venosa, sin agregado de anticoagulante, en soporte de papel apropiado . Completar cuidadosamente todos los datos solicitados en el soporte y colocarlo en un envase tipo Ziploc para proteger de la humedad. Es necesario adjuntar planilla de datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Espectofotometría de Masa en Tandem |
Valores de referencia |
Valores en umol/l: Acetilcarnitina: 7,0 a 48,0 Carnitina libre: 13,0 a 52,0 Propionil carnitina: 0,21 a 4,70 Malonilcarnitina: 0,02 a 0,35 Butirilcarnitina: 0,05 a 0,85 Hidroxibutirilcarnitina: 0,04 a 0,39 Metilmalonilcarnitina: 0,05 a 0,70 Tiglilcarnitina: 0,01 a 0,23 Isovalerilcarnitina: 0,04 a 0,61 Hidroxiisovalerilcarnitina: 0,04 a 0,54 Glutarilcarnitina: 0,01 a 0,28 Hexanoilcarnitina: 0,05 a 0,40 Adipilcarnitina: 0,01 a 0,30 Octanoilcarnitina: 0,01 a 0,36 Decenoilcarnitina: 0,02 a 0,70 Decanoilcarnitina: 0,01 a 0,29 Dodecanoilcarnitina: 0,01 a 0,10 Hidroxidodecanoilcarnitina: 0,01 0,15 Tetradecadienoilcarnitina: 0,06 a 0,25 Tetradecenoilcarnitina: 0,08 a 0,55 Tetradecanoilcarnitina: 0,01 a 0,23 Hidroxitetradecanoilcarnitina: 0,01 a 0,09 • Hexadecenoilcarnitina: 0,02 a 0,51 Palmitoilcarnitina: 0,25 a 9,0 Hidroxihexadecenoilcarnitina: 0,01 a 0,32 Hidroxihexadecanoilcarnitina: 0,01 a 0,26 Linoileilcarnitina: 0,03 a 1,52 Hidroxilinoleilcarnitina: 0,01 a 0,05 Oleilcarnitina: 0,50 a 3,10 Hidroxioleilcarnitina: 0,01 a 0,16 Estearoilcarnitina: 0,09 a 2,30 Hidroxiestearoilcarnitina: 0,01 a 0,12
|
Modificado/Vigencia |
05.02.2025 |
ACASC |
ÁCIDO ASCORBICO (VITAMINA C) |
Plazos |
20 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero congelado y al abrigo de la luz. |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
•0.20 a 2.00 mg/dL
|
Modificado/Vigencia |
16.12.2025 |
ACBIL |
ÁCIDOS BILIARES TOTALES, SUERO |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. “Enviar mail de aviso a Recepcion DA, LOGISTICA Y LAB.OTAMENDI.” |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimático colorimétrico |
Valores de referencia |
2 a 10 umol/l |
Modificado/Vigencia |
24.02.2025 |
ACBP |
COXSACKIE TOTAL, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles - |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo (valor de corte 1/10) |
Modificado/Vigencia |
23.12.2024 |
ACDGA |
ANTICUERPOS DEAMINADOS DE GLIADINA, IgA, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativa: Menor de 20 U/ml Positiva: Mayor de 20 U/ml |
Modificado/Vigencia |
09.01.2026 |
ACDGG |
ANTICUERPOS DEAMINADOS DE GLIADINA, IgG, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativa: Menor de 20 U/ml Positiva: Mayor de 20 U/ml
|
Modificado/Vigencia |
09.01.2026 |
ACINS |
ANTICUERPOS ANTI - INSULINA, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Menor o igual a 20 AU/ml |
Modificado/Vigencia |
19.05.2025 |
ACMMA |
ÁCIDO METIL - MALONICO, ORINA |
Plazos |
18 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Homogeneizar cada muestra (descongelar si el paciente las entregó congeladas) y recolectar una porción de cada una de ellas en un envase estéril. Homogeneizar las muestras recibidas. Alicuotar partes iguales de cada una de ellas de manera de obtener una alícuota de 50 ml. Congelar a -20 no menos de 12 hs. Enviar una alícuota de 50 ml bien congelada. |
Instrucciones al paciente |
ORINA REPRESENTATIVA DE 24 HS Recolectar de 4 a 6 muestras durante todo el día (24hs) previa higiene , en condiciones de asepsia en frasco estéril(Técnica de Urocultivo).
Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción.
Durante el período de recolección, mantener cada una de las muestras en heladera. Una vez terminada la recolección, las muestras deben ser remitidas al laboratorio lo antes posible, idealmente dentro de las 4 hs de finalizada la recolección. Mantener refrigeradas hasta su entrega al laboratorio. Si excepcionalmente no puede entregar las muestras dentro del horario establecido, congelar y mantener en la condición de congelado hasta su entrega.
IMPORTANTE: El desarrollo bacteriano invalida el estudio debido a los productos metabólicos de microorganismos. |
| Método |
Cromatografía gaseosa con detector FID (FLAME IONIZACION DETECTOR) |
Valores de referencia |
Hasta 3,6 mmoles/mol creatinina. Valores mayores a 8,5 mmoles/mol creatinina son considerados evidencia de deficit de Vitamina B12.
|
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
ACNEP |
ANTICUERPOS ANTI - NEURONA YO62, RI55 Y HU35, SUERO |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 2,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Western Blot |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
28.05.2024 |
ACOLII |
ANTICUERPOS ANTI COLAGENO TIPO II, SUERO |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiera ayuno |
| Método |
Enzimoinmunoensayo |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 20 EU/ml Indeterminado: De 20 a 25 EU/ml Positivo: Mayor de 25 EU/ml |
Modificado/Vigencia |
02.12.2025 |
ACORG |
ÁCIDOS ORGANICOS, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Mezclar cuantitativamente todas las muestras. Tomar una alícuota de 50 ml aproximadamente y colocar en un recipiente apto para el traslado de muestras biológicas (frasco esteril) Congelar (-18º a -20º) no menor de 12 horas. Nota: adjuntar la planilla de solicitud de datos del paciente.
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Instrucciones al paciente |
ORINA REPRESENTATIVA DE 24 HS Recolectar de 4 a 6 muestras durante todo el día (24hs) previa higiene , en condiciones de asepsia en frasco estéril(Técnica de Urocultivo). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante el período de recolección, mantener cada una de las muestras en heladera Una vez terminada la recolección, las muestras deben ser remitidas a laboratorio lo antes posible. Trasladar refrigerdas IMPORTANTE: El desarrollo bacteriano invalida el estudio debido a los productos metabólicos de microorganismos. |
| Método |
GC-MS - Cromatografía gaseosa con detector MS |
Valores de referencia |
ÁCIDOS ORGÁNICOS INVESTIGADOS:Láctico, Pirúvico, Glicólico, Oxálico, B-OH Butírico, 2-OH Valérico, Acetoacético, Metilmalónico, Fenilacético, Malónico, Etilmalónico, 2-ceto Caproico, Succínico, Metilsuccínico, Fumárico, Isovalérico, Adípico, Piroglutámico, Glutárico, 2-OH Glutárico, 3-OH Glutárico, 3-OH,3-metil Glutárico, n-acetilAspártico, Subérico, Orótico, Aconítico, Homovanílico, Hipúrico, Homogentísico, Vainillin Mandélico, Cítrico, metil-Cítrico, Mevalónico, Sebácico, 2-OH Fenilláctico, 3-OH Fenilláctico, 2-OH Hipúrico, p-OH Fenilpirúvico.
|
Modificado/Vigencia |
13.02.2026 |
ACP |
ANTICUERPOS ANTI - CÉLULA PARIETAL, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
09.09.2019 |
ACRA |
ANTICUERPOS ANTI - RECEPTOR DE ACETILCOLINA, SUERO |
Plazos |
15 Días hábiles. |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero refrigerado (2 - 8ºC)
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Elisa |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.45 nmol/l Positivo: Mayor o igual a 0.45 nmol/l |
Modificado/Vigencia |
28.11.2025 |
ACTH |
ADRENOCORTICOTROFINA (ACTH), PLASMA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio una alícuota de 1,0 ml de plasma congelado (-18°C a -20°C) en tubo plástico (polipropileno o similares), nunca de vidrio. Instrucciones: La extracción debe realizarse antes de las 9.00 hs, mantener en reposo al paciente durante 20 minutos antes de la obtención de la muestra. Obtener sangre periférica con EDTA. Centrifugar la muestra inmediatamente después de su obtención; rápidamente separar el plasma con pipeta plástica y llevarlo a tubos de plástico (polipropileno similares). Congelar las muestras (-18°C a -20°C) y transportarlas en hielo seco. “ENVIAR TUBO EXCLUSIVO PARA ESTA DETERMINACION”
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. La extracción debe realizarse antes de las 9.00 hs. Antes de la obtención de la muestra deberá permanecer en reposo, en el laboratorio, durante unos 20 minutos, por lo que es conveniente que tenga en cuenta este detalle para regular el horario de concurrencia al laboratorio. Informar al recepcionista la medicación o medicaciones que recibe habitualmente.
|
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 46.0 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
ACTIN |
ANTICUERPOS ANTI - ACTINA, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
18.06.2014 |
ADA |
ADENOSIN DEAMINASA, ACTIVIDAD |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio 2,0 ml del material biológico solicitado por el médico. Informar al laboratorio el tipo de material a ser analizado. IMPORTANTE: no remitir muestras en frascos con tapa a rosca , remitir en tubo de Khan.
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Instrucciones al paciente |
NA |
| Método |
Enzimático |
Valores de referencia |
•Líquidos de punción (pleural, ascítico, pericárdico): hasta 30 UI/l Líquido cefalorraquídeo: hasta 9 UI/l • Suero: hasta 21 UI/l |
Modificado/Vigencia |
05.02.2025 |
ADAM13 |
ACTIVIDAD DE ADAMTS 13 |
Plazos |
16 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
La muestra debe ser extraida antes de iniciar el tratamiento inmunosupresor y/o transfucional. Remitir al Laboratorio 1.0 ml de plasma con citrato, congelado.
Obtención de la muestra: 1. Centrifugar a 3500-4000 rpm de 15 a 20 minutos. 2. Trasvasar el plasma a un tubo de plástico y volver a centrifugarlo en las mismas condiciones del paso anterior. 3. Trasvasar a un nuevo tubo de plástico y congelar.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
La muestra debe ser extraida antes de iniciar el tratamiento inmunosupresor y/o transfucional. |
| Método |
Ensimoinmunoensayo |
Valores de referencia |
40 a 130 UI/dl |
Modificado/Vigencia |
16.04.2026 |
ADEAG |
ADENOVIRUS, ANTIGENO |
Plazos |
Al día siguiente. SI LA MUESTRA LLEGA AL LABORATORIO ANTES DE LA 14 HS . |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0.5 ml (mínimo) y 1.0 ml (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras que no se hayan conservado refrigeradas, las que hayan sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias.
Instrucciones: ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARINGEOS O BRONQUIALES:Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. No se recibirán jeringas, ni sondas, ni cánulas con el materia a analizar. Si llega una cánula el Laboratorio se procederá mediante una jeringa y una aguja a lavar la cánula con 0.5 ml de solución fisiológica y recoger este material en el tubo plástico debidamente etiquetado. |
Instrucciones al paciente |
NA |
| Método |
IFD (Inmunofluorescencia directa) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
ADEGI |
ADENOVIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo (Valor de corte:1/10) |
Modificado/Vigencia |
23.12.2024 |
ADEMF |
ADENOVIRUS, MATERIA FECAL |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir a DAA la materia fecal refrigerada de LUNES A SABADOS.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario proveerse de un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo), un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc.), lavado con agua y jabón, una cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco, nunca hisopos. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera.
Instrucciones para obtener las muestras: Obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril. Si se trata de heces liquidas la cantidad a tomar será no más de 1 cm del recipiente estéril. Si se trata de pañal, raspar y pasar al envase estéril. No llevar al laboratorio el pañal, “no será aceptado”
Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas.
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| Método |
Inmunocromatografía |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
03.06.2026 |
ADEMI |
ADENOVIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo (Valor dr corte 1/16) |
Modificado/Vigencia |
23.12.2024 |
ADEUR |
ADENOVIRUS, ADN, CUALITATIVO, SECRECIONES RESPIRATORIAS (URGENTE) |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N 95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con: • Hisopos estériles con punta de poliéster o dacron, nunca de madera con punta de algodón. • Tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0,5 mL (mínimo) a 1,0 mL (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras que no se hayan conservado refrigeradas, las que haya sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias. Instrucciones: SECRECIONES NASALES O FARÍNGEAS • Obtener las muestras de los orificios nasales profundos (hisopado nasal) o de la faringe (hisopado faríngeo).Por cada tipo de muestra (nasal o faríngea) recolectar dos hisopos. • Colocar ambos hisopos en el tubo con solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente y rotular. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARÍNGEOS O BRONQUIALES • Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante.
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Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Real Time PCR |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
20.12.2024 |
ADIOL |
ANDROSTENODIOL-GLUCURONIDO, SUERO |
Plazos |
12 Dias hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero congelado.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA |
Valores de referencia |
Hombre adulto: 1.53 - 14.82 ng/ml
Mujer adulta: 0.22 - 4.64 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
31.07.2026 |
ADREO |
ADRENALINA, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 3 ml de orina de 24 horas con el conservante,congelada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
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| Método |
HPLC- EQ (Cromatografía Líquida de Alta Performance, con detección electtroquímica) |
Valores de referencia |
Adultos: Hasta 27.0 ug/24 hs
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Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
ADRLI |
ADRENALINA LIBRE, PLASMA |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Muestra: Remitir al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma congelado a -20°C en tubo plástico tapón azul exclusivo para catecolaminas. Instrucciones: Antes de la obtención de la muestra, mantener a la persona en reposo, sentado, durante 30 minutos. Obtener sangre periférica con HEPARINA y centrifugar inmediatamente después. Separar el plasma en tubo plástico tubo plástico tapón azul exclusivo para catecolaminas y congelar a -20°C. NOTA: remitir plasma libre de hemólisis |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Durante 3 días antes de concurrir al laboratorio no ingerir banana, tomate, chocolate, cacao, cremas, tortas, helados o cualquier alimento que pueda contener vainilla. No ingerir aspirinas. No tomar bebidas alchólicas. Se debe evitar la ingesta de té, café y mate durante el día anterior. No realizar grandes ingestas ni fumar durante la noche anterior. Al cuarto día, continuando con el régimen concurrir al laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas, a las 8:00 de la mañana. En el laboratorio deberá permanecer 30 minutos en reposo, sentado, antes de obtener la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Normotenso: 30 a 100 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
09.02.2026 |
AFA24 |
ACIDO FENILACETICO, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 ml de orina de 24 horas con el conservante,congelada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
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| Método |
HPLC- EQ (Cromatografía Líquida de Alta Performance, con detección electtroquímica) |
Valores de referencia |
70 a 175 mg/24Horas |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
AFIN |
ANTICUERPOS ANTI - FACTOR INTRINSECO, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio 1,0 ml de suero libre de hemólisis. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 6 U/ml Positivo: Mayor o igual de 6 U/ml |
Modificado/Vigencia |
13.10.2022 |
AFOS |
ANTICUERPOS ANTI - FOSFOLIPIDOS, IgG e IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Valores de referencia: ? Normal: Menor de 10 u/ml (GPL o MPL) Elevado: Mayor de 10 u/ml (GPL o MPL)
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Modificado/Vigencia |
27.07.2015 |
AFP |
ALFA FETOPROTEINA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 9 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
01.09.2023 |
AFPEM |
ALFA FETOPROTEINA, EMBARAZO, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Comentarios: Realizar entre las semanas 15 a 20 del embarazo, preferentemente en las semanas 16 a 18. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Mediana - Mediana x 2,5 Sem 15 ………….31,1-77,8 ng/ml Sem 16…………36,0-90,0 ng/ml Sem 17………….41,6-104,1 ng/ml Sem 18.............48,1-120,3 ng/ml Sem 19..............55,7-139,2 ng/ml Sem 20.............64,4-161,0 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
01.09.2023 |
AGALAR |
Busqueda de Streptococcus agalactiae en hisopado anal |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE).
Materiales necesarios: Tubo con medio de transporte de Stuart (solicitar al laboratorio), un hisopo estéril.
Instrucciones para la obtención de muestras: Idealmente el estudio debe efectuarse entre las semanas 35 y 37 del embarazo, lo más cercanamente posible al la fecha de parto. Con la paciente en posición ginecológica, con hisopo tomar muestra de la zona perianal y colocarlo en el tubo con medio de transporte. Conservar y transportar la muestra a temperatura ambiente (18°C a 20°C).
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Instrucciones al paciente |
Durante un lapso de 72 horas antes del estudio observar abstinencia sexual y excepto expresa indicación médica en contrario, suspender todo tratamiento antibiótico por vía oral, o vaginal, como cremas u óvulos. Desde la noche anterior al estudio no utilizar duchas vaginales, ni colocarse cremas o desodorantes vaginales o talco. El día del estudio, concurrir al Laboratorio.
Si la orden médica solicita al mismo tiempo Búsqueda de Streptococcus Agalactiae en hisopado vaginal y/o hisopado anal además de Urocultivo , la recomendación es primero seguir las indicaciones para la toma de muestra de Streptococcus Agalactiae en hisopado vaginal y/o hisopado anal y luego realizar la higiene para la toma de muestra del urocultivo |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
27.07.2026 |
AGALAV |
Busqueda de Streptococcus agalactiae en hisopado vaginal |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE).
Materiales necesarios: Tubo con medio de transporte de Stuart (solicitar al laboratorio), un hisopo estéril.
Instrucciones para la obtención de muestras: Idealmente el estudio debe efectuarse entre las semanas 35 y 37 del embarazo, lo más cercanamente posible al la fecha de parto. Con la paciente en posición ginecológica, sin usar espéculo, visualizar el orificio vaginal y mediante un hisopo estéril tomar una muestra de secreción en el tercio inferior de la vagina y colocarlo en el medio de transporte. Conservar y transportar la muestra a temperatura ambiente (18°C a 20°C).
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Instrucciones al paciente |
Durante un lapso de 72 horas antes del estudio observar abstinencia sexual y excepto expresa indicación médica en contrario, suspender todo tratamiento antibiótico por vía oral, o vaginal, como cremas u óvulos. Desde la noche anterior al estudio no utilizar duchas vaginales, ni colocarse cremas o desodorantes vaginales o talco. El día del estudio, concurrir al Laboratorio.
Si la orden médica solicita al mismo tiempo Búsqueda de Streptococcus Agalactiae en hisopado vaginal y/o hisopado anal además de Urocultivo , la recomendación es primero seguir las indicaciones para la toma de muestra de Streptococcus Agalactiae en hisopado vaginal y/o hisopado anal y luego realizar la higiene para la toma de muestra del urocultivo. |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
27.07.2026 |
AGM1 |
ANTICUERPOS ANTI - GANGLIOSIDO GM1, SUERO |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 mL de suero refrigerado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunodot |
Valores de referencia |
• Negativo |
Modificado/Vigencia |
04.06.2020 |
AGUA |
AGUA, CONTROL MICROBIOLÓGICO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 200 ml de agua en envase estéril. Conservarlo en heladera hasta su envío al Laboratorio. Las muestras deben llegar al laboratorio dentro de las 12 horas de obtenidas.
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Instrucciones al paciente |
Proveerse de un envase estéril de 250 – 300 ml de capacidad por cada muestra a analizar. Seleccionar el tipo de muestra a recoger (A: agua de pozo, B: agua corriente). Cuando se debe recolectar más de una muestra numerar cuidadosamente los envases estériles que van a ser utilizados. Indicar en una hoja aparte el número y el tipo de muestra (A o B) y nombre del solicitante. Si el agua es de pozo anotar la profundidad, si se conoce. Lavar cuidadosamente la boca elegida de salida de agua, eliminando los restos de suciedad de alrededor de la misma y dejar correr abundante agua durante aproximadamente 30 segundos. Abrir el envase estéril, llenarlo con agua hasta más de los 2/3 de su capacidad (± 200 ml), cerrar el envase y conservarlo en heladera hasta su envío al Laboratorio. Las muestras deben llegar al laboratorio dentro de las 12 horas de obtenidas.
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| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
09.02.2026 |
AH1N1 |
INFLUENZA A VIRUS, ESTACIONAL ARN,SECRECIONES RESPIRATORIAS |
Plazos |
2 Dias hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N 95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con: • Hisopos estériles con punta de poliéster o dacron, nunca de madera con punta de algodón. • Tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0,5 mL (mínimo) y 1,0 mL (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras no se hayan conservado refrigeradas, las que haya sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias. Instrucciones: SECRECIONES NASALES O FARÍNGEAS • Obtener las muestras de los orificios nasales profundos (hisopado nasal) o de la faringe (hisopado faríngeo).Por cada tipo de muestra (nasal o faríngea) recolectar dos hisopos. • Colocar ambos hisopos en el tubo con solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente y rotular. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos (S6). ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARÍNGEOS O BRONQUIALES • Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos (S6).(Gripe.pdf) |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
RT PCR REAL TIME |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
02.05.2024 |
AH3N2 |
INFLUENZA A VIRUS H3N2 Y H1N1 |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N 95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con: • Hisopos estériles con punta de poliéster o dacron, nunca de madera con punta de algodón. • Tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0,5 mL (mínimo) y 1,0 mL (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras no se hayan conservado refrigeradas, las que haya sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias. Instrucciones: SECRECIONES NASALES O FARÍNGEAS • Obtener las muestras de los orificios nasales profundos (hisopado nasal) o de la faringe (hisopado faríngeo).Por cada tipo de muestra (nasal o faríngea) recolectar dos hisopos. • Colocar ambos hisopos en el tubo con solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente y rotular. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos (S6). ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARÍNGEOS O BRONQUIALES • Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos (S6).(Gripe.pdf). |
Instrucciones al paciente |
N/A |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
30.03.2026 |
AHV24 |
ACIDO HOMOVANILICO (AHV), ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
9 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina de 24 horas con el conservante,congelada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
|
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
|
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
3 a 6 años: 1.4 a 4.3 mg/24 horas 6 a 10 años: 2.1 a 4.7 mg/24 horas 10 a 16 años: 2.4 a 8.7 mg/24 horas Mayor de 16 años: 1.4 a 8.8 mg/24 horas |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
AL |
ALUMINIO, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero libre de hemólisis en tubo plástico (polipropileno o similares). Cuando se utilicen tubos con gel, la muestra debe ser centrifugada inmediatamente luego de la obtención para evitar la contaminación. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotometría de Absorción Atómica con horno de grafito |
Valores de referencia |
Hasta 60 ug/l |
Modificado/Vigencia |
01.09.2025 |
ALB |
ALBUMINA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico |
Valores de referencia |
Hasta 14 días: 3.0 a 4.0 g/dl De 15 días a 18 años: 3.0 a 5.0 g/dl Mayores de 19 años: 3.5 a 5.2 g/dl
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Modificado/Vigencia |
11.08.2026 |
ALD |
ALDOSTERONA, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: De no existir ninguna indicación médica, obtener la muestra con el paciente acostado luego de un reposo de 30 minutos. La posición erguida es mantener al paciente de pie durante aproximadamente 30 minutos y luego realizar la extracción. Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Recomendaciones: No aceptar pacientes medicados con alguno de los siguientes fármacos: eplerenona, espironolactona, triamtireno, amilorida, diuréticos tiazídicos. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Consultar con su médico interrumpir las medicaciones no permitidas para este examen: eplerenona, espironolactona, triamtireno, amilorida, diuréticos tiazídicos. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
•Posición de pie: 2.5 a 39.2 ng/dl • Posición supina: 1.8 a 23.2 ng/dl |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
ALD24 |
ALDOSTERONA, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 4 ml de orina de 24 horas en tubos de plástico (polipropileno o similares) a temperatura ambiente (18°C a 25°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
|
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
1.2 a 28.0 ug/24hs |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
ALIM |
CULTIVO BACTERIOLÓGICO DE LÍQUIDO DE ALIMENTACION PARENTERAL. |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Envase estéril. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico en envase estéril. • Conservar y transportar la muestra a Temperatura Ambiente |
Instrucciones al paciente |
La muestra es obtenida por el médico bajo condiciones de rigurosa asepsia • Se remite al laboratorio en recipiente estéril a Temperatura ambiente. |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
28.02.2018 |
ALO |
ALUMINIO, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos mas una alícuota de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral.
|
Instrucciones al paciente |
Recolectar una muestra de orina al final de la jornada laboral. |
| Método |
Espectrofotometría de Absorción Atómica con horno de grafito |
Valores de referencia |
•IBE: Hasta 150 ug/g creatinina |
Modificado/Vigencia |
12.01.2023 |
alpra |
ALPRAZOLAM, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 2.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 5 a 50 ng/ml Nivel tóxico: Mayor de 100 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
05.10.2026 |
AMAG |
ANTICUERPOS ANTI - MAG (IgM) |
Plazos |
25 Días hábiles. |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero congelado (-18°C a -20°C) libre de hemólisis.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzyme Linked Inmunosorbent Assay) |
Valores de referencia |
• Negativo: Menor de 1000 BTU |
Modificado/Vigencia |
13.03.2024 |
AMB |
ANTICUERPOS ANTI - MEMBRANA BASAL, SUERO |
Plazos |
13 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 16 UA/ml Imdeterminado: de 16 a 24 UA/ml Positivo:Mayor a 24 UA/ml
|
Modificado/Vigencia |
19.03.2025 |
AMBP |
COXSACKIE TOTAL, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia indirecta |
Valores de referencia |
Negativo (valor de corte 1/16) |
Modificado/Vigencia |
06.12.2023 |
AME |
ANTICUERPOS ANTI - MÚSCULO ESTRIADO, SUERO |
Plazos |
7 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 mL de suero. iNFORMAR edad, sexo, diagnóstico presuntivo y medicación del paciente |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia indirecta. |
Valores de referencia |
Menor o igual a 1:20 |
Modificado/Vigencia |
27.09.2018 |
AMI |
AMILASA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico enzimático |
Valores de referencia |
Hasta 12 meses: 5 a 70 UI/l De 1 año a 19 años: 50 a 125 UI/l Mayores de 20 años: 28 a 100 UI/l |
Modificado/Vigencia |
11.08.2026 |
AMIM2 |
ANTICUERPOS ANTI - FRACCIÓN MITOCONDRIAL, SUBTIPO M2, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimoinmunoensayo (ELISA) |
Valores de referencia |
• Negativo: Menor a 10 U/ml Positivo: Mayor a 10 U/ml |
Modificado/Vigencia |
08.10.2014 |
AMINP |
AMINOÁCIDOS PLASMATICOS |
Plazos |
18 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Adjuntar planilla con datos clínicos.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
TMS (Espectrometría de masas en tándem) |
Valores de referencia |
Acido glutámico: Hasta 3 meses: 8.0 a 179.0 4 meses a 12 años: 14.0 a 78.0 13 años a adulto: 6.0 a 60.0 Acido aspártico: Hasta 3 meses: 0 a 31.0 4 meses a 12 años: 1,0 a 17.0 13 años a adulto: 2..0 a 9.0
Alanina: Hasta 3 meses: 142 a 421 4 meses a 12 años: 120 a 600 13 años a adulto: 146 a 494 Arginina: Hasta 3 meses: 7.0 a 128.0 4 meses a 12 años: 12.0 a 112.0 13 años a adulto: 28.0 a 108.0
Citrulina: Hasta 3 meses: 8.0 a 36.0 4 meses a 12 años: 8.0 a 47.0 13 años a adulto: 10.0 a 58.0
Fenilalanina: Hasta 3 meses: 25.0 a 74.0 4 meses a 12 años: 260 a 98.0 13 años a adulto: 420 a 74.0
Glicina: Hasta 3 meses: 154 a 338 4 meses a 12 años: 107 a 343 13 años a adulto: 100 a 384
Glutamina: Hasta 3 meses: 402 a 776 4 meses a 12 años: 333 a 809 13 años a adulto: 340 a 798.
Histidina: Hasta 3 meses: 37.0 a 83.0 4 meses a 12 años: 47.0 a 135.0 13 años a adulto: 68.0 a 108.0
Leucina-Isoleucina: Hasta 3 meses: 46.0 a 147.0 4 meses a 12 años: 30.0 a 246.0 13 años a adulto: 98.0 a 205.0
Lisina: Hasta 3 meses: 52.0 a 196.0 4 meses a 12 años: 48.0 a 184.0 13 años a adulto: 116.0 a 296.0
Metionina: Hasta 3 meses: 9.00 a 44.0 4 meses a 12 años: 300 a 43.0 13 años a adulto: 14.0 a 37.0
Ornitina: Hasta 3 meses: 41.0 a 129.0 4 meses a 12 años: 20.0 a 136.0 13 años a adulto: 36.0 a 135.0
Prolina: Hasta 3 meses: 97.0 a 254.0 4 meses a 12 años: 40.0 a 332.0 13 años a adulto: 97.0 a 297.0
Serina: Hasta 3 meses: 92.0 a 178.0 4 meses a 12 años: 70.0 a 194.0 13 años a adulto: 78.0 a 166.0
Tirosina: Hasta 3 meses: 13.0 a 91.0 4 meses a 12 años: 19.0 a 119.0 13 años a adulto: 16.0 a 78.0
Treonina: Hasta 3 meses: 24.0 a 174.0 4 meses a 12 años: 35.0 a 226.0 13 años a adulto: 69.0 a 225.0
Triptofano: Hasta 3 meses: 23.0 a 71.0 4 meses a 12 años: 10.0 a 69.0 13 años a adulto: 10.0 a 75.0
Valina: Hasta 3 meses: 79.0 a 217.0 4 meses a 12 años: 132.0 a 480.0 13 años a adulto: 172.0 a 335.0
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Modificado/Vigencia |
24.10.2025 |
AMIOC |
AMINOÁCIDOS CUANTITATIVO, ORINA DE 24 HORAS (ácido glutámico, ácido asp& |
Plazos |
13 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Mezclar cuantitativamente todas las muestras. Tomar una alícuota de 50 ml aproximadamente y colocar en un recipiente apto para el traslado de muestras biológicas (frasco esteril) Congelar (-18º a -20º) no menor de 12 horas. Nota: adjuntar la planilla de solicitud de datos clínicos del paciente.
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Instrucciones al paciente |
ORINA REPRESENTATIVA DE 24 HS Recolectar de 4 a 6 muestras durante todo el día (24hs) previa higiene y en condiciones de asepsia (Técnica de Urocultivo).
Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción.
Mantenga refrigerada entre 2-8ºC, cada una de las muestras, una vez recolectadas. Remita las muestras al laboratorio dentro de las 4 horas de finalizada la recolección.
IMPORTANTE: El desarrollo bacteriano invalida el estudio debido a los productos metabólicos de microorganismos.
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| Método |
TMS (Espectrometría de masas en tándem) |
Valores de referencia |
Unidades: umol/mol de creatinina
Acido glutámico: Menores de 3 meses: 2.0 a 29.0 – Niños: hata 9.0 - Adultos: hasta 9.0 Acido aspártico: Menores de 3 meses: 2.0 a 7.0 - Niños: 2.0 a 8.0 - Adultos: 1.0 a 10.0 Alanina: Menores de 3 meses: 36.0 a 206.0 - Niños: 41.0 a 130.0 - Adultos: 17.0 a 65.0 Arginina: Menores de 3 meses: hasta 14.0 - Niños: hasta 9.0 - Adultos: hasta 7.0 Citrulina: Menores de 3 meses: hasta 10.0 - Niños: hasta 7.0 - Adultos: hasta 5.0 Fenilalanina: Menores de 3 meses: 4.0 a 32.0 - Niños: 6,0 a 26.0 - Adultos: 5.0 a 24.0 Glicina: Menores de 3 meses: 210.0 a 812.0 - Niños: 117.0 a 326.0 - Adultos: 64.0 a 236.0 Glutamina: Menores de 3 meses: 52.0 a 229.0 - Niños: 43.0 a 236.0 - Adultos: 20.0 a 112.0 Histidina: Menores de 3 meses: 72.0 a 343.0 - Niños: 61.0 a 255.0 - Adultos: 43.0 a 184.0 Metionina: Menores de 3 meses: 6.0 a 27.0 - Niños: 5,0 a 21.0 - Adultos: 3.0 a 17.0 Ornitina: Menores de 3 meses: hasta 19.0 - Niños: hasta 6.0 - Adultos: hasta 7.0 Prolina: Menores de 3 meses: 21.0 214.0 - Niños: hasta 9.0 - Adultos: hasta 9.0 Serina: Menores de 3 meses: 42.0 a 250.0 - Niños: 32.0 a 94.0 - Adultos: 23.0 a 69.0 Tirosina: Menores de 3 meses: 6.0 a 54.0 - Niños: 9.0 a 35.0 - Adultos: 600.0 a 26.0 Valina: Menores de 3 meses: 3.0 a 26.0 - Niños: 3.0 a 20.0 - Adultos: 3.0 a 17.0 |
Modificado/Vigencia |
24.08.2026 |
AMITO |
ANTICUERPOS ANTI - FRACCIÓN MITOCONDRIAL, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
09.09.2019 |
AMIUR |
AMILASA, ORINA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio una alícuota de 5ml de orina espontánea en tubo de Kahn. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario que se provea de un envase estéril para urocultivo. Sin necesidad de mantener retención urinaria, recoger orina de cualquier micción espontánea en el envase estéril. Tapar el envase, rotularlo con su nombre y llevarlo al laboratorio tan pronto como sea posible. |
| Método |
Enzimático - Colorimétrico |
Valores de referencia |
42 a 321 UI/l |
Modificado/Vigencia |
19.08.2025 |
AML |
ANTICUERPOS ANTI - MÚSCULO LISO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
09.09.2019 |
AMNOR |
AMITRIPTILINA-NORTRIPTILINA, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Rango terapéutico de la suma: 100 a 250 ng/ml. Nivel tóxico: mayor de 500 ng/ml
|
Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
AMOG |
ANTICUERPOS IGG ANTI-MOG |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir 1 ml de suero refrigerado |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
29.07.2024 |
ANAEC |
CULTIVO BACTERIOLÓGICO ANAEROBIOS |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestras adecuadas para cultivo de anaerobios:
|
Instrucciones al paciente |
Las muestras se recolectan de acuerdo con las instrucciones generales y se envían de inmediato al laboratorio, sin refrigerar, evitando el contacto prolongado con Oxigeno |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
02.08.2023 |
ANCA |
ANTICUERPOS ANTI - CITOPLASMA DE NEUTROFILOS (ANCA), SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,3 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia indirecta. |
Valores de referencia |
Menor o igual a 1:20 |
Modificado/Vigencia |
09.09.2019 |
ANFET |
ANFETAMINAS , ORINA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
“MEDICINA LABORAL: Instrucciones para la obtención de muestras de alcohol y drogas de abuso: Solicitar al laboratorio de referencia el formulario (triplicado) para recolección de datos. 1. Cortar el agua del toilette o encintar las canillas. 2. Identificar fehacientemente a la persona con DNI o CI. 3. Anotar los datos personales en el formulario e identificar a la persona con un código. 4. Entregar a la persona un recipiente para la recolección de orina y solicitarle que recoja una muestra en el toilette. 5. Tomar inmediatamente la temperatura de la muestra y consignarla en el formulario: sin este dato la muestra quedará invalidada. 6. Fraccionar la muestra en un tubo de Kahn y refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C). 7. Identificar las muestras con el código de identificación (NO con el nombre). 8. Indicar en el formulario que determinaciones se solicitan. 9. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad, refrigerada (4°C-8°C) en envase térmico con refrigerante. la tercera hoja del formulario (que no tiene el nombre del paciente) . Retener otra alícuota en el laboratorio. SEDES AMBULATORIAS: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad (ver instrucciones para el paciente). |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio con una retención urinaria de 3 hs, como mínimo. La muestra de orina se obtendrá en el Laboratorio. |
| Método |
Kinetic interaction of microparticles in solution (KIMS) |
Valores de referencia |
Negativo.Valor de corte :1000 ng/mL Detecta Anfetaminas, Metanfetaminas, MDMA (Extasis) |
Modificado/Vigencia |
22.05.2018 |
ANGEL |
PRADER WILLI, ANGELMAN, SINDROMES, PRUEBA DE METILACION |
Plazos |
18 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras se reciben de Lunes a Miercoles , no en vísperas de feriados Remitir al laboratorio analítico 10 ml de sangre periférica con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Polymerase chain reaction) - Metilación de ADN en 15 (Q11 - Q13). |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
ANJO1 |
ANTICUERPOS ANTI - NÚCLEO JO1, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
EIA (Enzimoinmunoensayo indirecto) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 15 U/ml Valor de corte: 15 a 25 U/ml Positivo: Mayor de 25 U/ml |
Modificado/Vigencia |
08.10.2014 |
ANTIX |
HEPARINA DE BAJO PESO MOLECULAR, PLASMA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico en el día de obtenido 2,5 ml de plasma con citrato a temperatura ambiente (18°C a 25°C). De no ser posible enviar en el día, inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. Congelar (-18°C a -20°C) y remitir en esa condición. Instrucciones: • Pacientes con perfusión continua de heparina sódica: obtener la muestra del brazo opuesto al de la perfusión en cualquier momento del día. • Pacientes que reciben heparina de bajo peso molecular: obtener la muestra 4 horas después de la inyección. • Obtener sangre periférica con citrato. Centrifugar inmediatamente, separar el plasma y remitir a temperatura ambiente en el caso de que la muestra pueda ser procesada dentro de las cuatro horas de obtenida. De lo contrario, realizar la doble centrifugación, congelar y remitir en esas condiciones al lugar de procesado.
|
Instrucciones al paciente |
Concurrir al laboratorio sin ayuno previo 4 horas depués de la aplicación de la última dosis. La prueba de anti Xa utilizada en nuestro laboratorio no es apta para el DOSAJE de rivaroxabán, apixabán o edoxabán que presentan actividad anti Xa.
|
| Método |
Cromogénico |
Valores de referencia |
Rangos de concentración terapéutica: Heparina de bajo peso molecular en 2 aplicaciones diarias: 0.5-1.2 Unidades/ml Heparina de bajo peso molecular en 1 sola aplicación diaria: 0.6-1.4 Unidades/ml Heparina de bajo peso molecular en dosis profilácticas: 0.2-0.4 Unidades/ml Heparina no fraccionada terapéutica en BIC: 0.3-0.7 Unidades/ml
Nota de resultado: Las drogas Rivaroxaban, Apixaban, Edoxaban, presentan actividad anti Xa en este ensayo, pero requieren calibración especial. Los resultados obtenidos con nuestro método a través de la calibración con heparina de bajo peso molecular, solo dan información cualitativa sobre la presencia de estas drogas en plasma. |
Modificado/Vigencia |
09.08.2024 |
ANTUR |
ANTIMONIO, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos mas una alícuola de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Absorción Atómica |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica: hasta 35 ug/g creatinina |
Modificado/Vigencia |
07.11.2018 |
AOV |
ANTICUERPOS ANTI - OVARIO, SUERO "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA" |
Plazos |
16 Días hábiles. |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero refrigerado.
"MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA"
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia (IFI) |
Valores de referencia |
Negativo. Dilución de corte: 1/5 |
Modificado/Vigencia |
18.05.2026 |
APOA |
APOLIPOPROTEINA A, SUERO |
Plazos |
1 Días hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
• Varones adultos: 105 a 175 mg/dl • Mujeres adultas: 105 a 205 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
05.02.2025 |
APOB |
APOLIPOPROTEINA B, SUERO |
Plazos |
1 Días hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
De 0 a 19 años: Hasya 90 mg/dl
Mayores de 19 años: Hombres: 60 a 144 mg/dl Mujeres: 60 a141 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
19.08.2026 |
APOE4 |
APOLIPOPROTEINA E, GENOTIPO |
Plazos |
35 Dias Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 5.0 ml de sangre periférica con EDTA. NOTA: Completar los siguientes datos al momento de realizar la derivación. Sexo, Edad, Diagnóstico presuntivo o motivo del pedido, Antecedentes familiares. Caso contrario no podrá ser procesada la muestra. Es imprescindible que el paciente firme el consentimiento de la ficha adjunta. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR-Secuenciación |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
07.09.2026 |
APTTC |
CORRECCION DE KPTT CON PLASMA NORMAL |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2,5 ml de plasma con citrato.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
N.A.. |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
ARS |
ARSENICO, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1 mL de suero refrigerado |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Absorción atómica |
Valores de referencia |
1.7 a 15.4 ug/l |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
ARSA |
ARSENICO, AGUA |
Plazos |
14 Dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 500 ml de agua en un envase plástico (polipropileno o similares), libre de contaminación (puede enviarse en una botella de agua mineral en buen estado). |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
ICP - AES - Espectroscopia de emisión de plasma acoplado inductivamente |
Valores de referencia |
Máximo permitido para agua potable según el Código Alimentario Argentino: 0.05 mg/l. |
Modificado/Vigencia |
18.12.2025 |
ARSUR |
ARSENICO, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina espontánea en 2 tubos plásticos. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
Recolectar la orina al final de la jornada laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio.
|
| Método |
Espectrofotometría de absorción Atómica, con generador de hidruros. |
Valores de referencia |
• No expuestos: Hasta 35 ug/l |
Modificado/Vigencia |
19.08.2025 |
ASA |
ALDOLASA, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día como mínimo 1,0 ml de suero. De no ser posible remitirla en el día, congelar (-18°C a -20°C) y transportarla en esa condición.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cinético UV a 37 Grados C |
Valores de referencia |
Hasta 7.6 UI/l |
Modificado/Vigencia |
28.11.2025 |
ASCA |
SACCAROMYCES SP, ANTICUERPOS IGG, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 10 U/ml Positivo: Mayor o igual de 10 U/ml |
Modificado/Vigencia |
13.06.2024 |
ASLO |
ANTICUERPOS ANTI - ESTREPTOLISINA O, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico |
Valores de referencia |
Niños; Hasta 150 UI/mL; • Adultos: Hasta 200 UI/mL |
Modificado/Vigencia |
11.10.2016 |
ASPAG |
ASPERGILLUS SSP, ANTÍGENO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1 ml de suero o BAL refrigerado (2°C a 8°C) en tubo estéril herméticamente cerrado. Se puede almacenar hasta 7 días a entre 2 y 8 ºC. Luego conservar congelado a -20°C. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.16 La metodología está validada para muestras de lavado broncoalveolar y suero |
Modificado/Vigencia |
26.12.2024 |
ASPSP |
ASPERGILLUS SP, ANTICUERPOS, SUERO |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunodifusión radial |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
25.11.2024 |
ATDG |
ACIDO TIODIGLICOLICO EN ORINA |
Plazos |
10 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina espontáneaen 2 tubos plásticos. Refrigerar Recolectar al final de la jornada laboral |
Instrucciones al paciente |
N/A |
| Método |
Electroforesis Capilar |
Valores de referencia |
Hasta 4.00 mg/g creatinina |
Modificado/Vigencia |
07.11.2019 |
ATGUS |
ANTICUERPOS ANTI - TIROGLOBULINA ULTRASENSIBLES, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 4.0 UI/ml |
Modificado/Vigencia |
15.08.2023 |
ATIII |
ANTITROMBINA III, PLASMA |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 5- Adjuntar planilla con datos adjuntos |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cromogénico |
Valores de referencia |
80 a 120% |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
ATMO |
ÁCIDO TRANS TRANSMUCONICO, ORINA |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 2.5 ml de orina espontánea en tubo plástico. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
Obtener la muestra al finalizar la última jornada laboral de la semana laboral.
Evitar consumir por lo menos 72hs antes de la recolección de la muestra cualquier alimento que contenga ácido sorbico o sorbatos, que se usan como conservantes, como jugos en sobres para diluir, embutidos, aceitunas envasadas, gaseosas y productos de panadería.
El acido sorbico es precursor químico del acido trans muconico y eleva considerablemente su valor en la orina cuando se halla presente. |
| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
BEI (Indice de exposición biológica): hasta 500 mcg/g creatinina |
Modificado/Vigencia |
19.08.2025 |
ATPO |
ANTICUERPOS ANTI - PEROXIDASA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 13.8 U/ml |
Modificado/Vigencia |
29.08.2025 |
ATRCL |
ALFA 1 - ANTITRIPSINA, ACLARAMIENTO DE |
Plazos |
6 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Este estudio se realiza únicamente en la SEDE PALERMO (Niceto Vega 5651). Suero: Remitir 1 ml de suero refrigerado. Materia fecal de 72 hs: se le debe entregar al paciente el frasco plástico previamente tarado para la recolección de las muestras. El paciente deberá remitir la totalidad de la materia fecal evacuada en 72 hs. Todo en el mismo frasco entregado por el laboratorio. El material no debe estar contaminado con ninguna otra secreción. El laboratorio deberá volver a pesar el frasco + mat. Fecal, y restar el peso del frasco vacío (indicado en la etiqueta que contiene el frasco), de manera de obtener el peso neto de materia fecal. Ese peso debe dividirse por 3 y es esa cantidad la que se debe informar al laboratorio de proceso. Se deberá enviar al laboratorio de proceso una única alícuota de materia fecal representativa de las muestras recolectadas durante los tres días. Es importante preguntarle a la paciente los síntomas que tiene y si recibe alguna medicación.
El frasco"tarado" para la recolección debe ser solicitado por mail a la sede Palermo Hollywood (recepción_da@centralab.com.ar) y a deposito.da@centralab.com.ar , el mismo luego será enviado por logística.
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Instrucciones al paciente |
Evite o disminuya la ingesta de alimentos ricos en fibras (verduras de hojas, cítricos, harinas de salvado, etc.) el día previo al inicio de la recolección y durante los tres días que recolecta materia fecal. Recolecte toda la materia fecal durante 3 días consecutivos en el frasco que le entregó el laboratorio, no contamine la materia fecal con orina. Mantenga en un lugar fresco la materia fecal durante el período de recolección. Remita al laboratorio la materia fecal una vez finalizada la recolección del tercer día y concurra para la extracción de sangre, no requiere ayuno.
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| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
Hasta 10 g/24 hs
|
Modificado/Vigencia |
17.12.2025 |
ATRIP |
ALFA 1 ANTITRIPSINA, ACTIVIDAD, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
84 a 218 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
28.08.2025 |
AVM24 |
ACIDO VAINILLIN MANDELICO (VANILMANDELICO), ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 3 ml de orina de 24 horas con el conservante,congelada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
|
| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
Adultos: Hasta 13,6 mg/24hs
|
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
B12 |
VITAMINA, B12 (CIANOCOBALAMINA), SUERO |
Plazos |
1 Días hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Normal: 180 a 914 pg/ml Indeterminado: 145 a 180 pg/ml Deficiente: Menor de 145 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
15.09.2023 |
B19UR |
PARVOVIRUS B19, ADN, CUALITATIVO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenidos, en tubo estéril 3,0 ml de plasma con edta o 1.0 ml de líquido cefalorraquídeo. |
Instrucciones al paciente |
N.A.
|
| Método |
Real Time PCR |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
12.08.2024 |
B27 |
HLA - B27 (ANTÍGENO LEUCOCITARIO HUMANO B - 27), SANGRE |
Plazos |
20 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico en el día de obtenida 3.0 ml de sangre periférica con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
18.08.2025 |
B2GP |
ANTICUERPOS ANTI - BETA 2 GLICOPROTEINA, IgG - IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo:Menor a 16 U/ml Indeterminado:De 16 a 24 U/ml Positivo:Mayor a 24 U/ml |
Modificado/Vigencia |
21.01.2026 |
B2MIC |
BETA 2 MICROGLOBULINA, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
0.8 a 2.2 mg/l |
Modificado/Vigencia |
26.12.2024 |
B2MUR |
BETA - 2 MICROGLOBULINA, ORINA |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 10 mL de orina ocasional. Refrigerada. |
Instrucciones al paciente |
Recolectar orina espontánea en cualquier momento del día en un envase nuevo de boca ancha.
|
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
5 a 154 ug/l |
Modificado/Vigencia |
13.01.2020 |
B51 |
FENOTIPO, HLA B-51, SANGRE |
Plazos |
25 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico en el día 5.0 ml de sangre periférica con EDTA.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Polymerase Chain Reaction) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
14.05.2026 |
B5701 |
ANTIGENO HLA - B5701 |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir a la División Analítica 3 ml como mínimo de sangre periférica con EDTA.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Polymerase Chain Reaction) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
14.05.2026 |
BACLI |
HEMOCULTIVO PARA MICOBACTERIAS |
Plazos |
42 Días |
Indicaciones para el laboratorio |
Son solicitados expresamente en la orden médica ya que las muestras se obtienen en número y frecuencia establecidos por el médico. Se obtiene la muestra de acuerdo a las instrucciones generales para toma de muestras de hemocultivo. Se inoculan para cada muestra 1- 5 ml de sangre en frasco MICOLYTIC . Se envían de inmediato al laboratorio
|
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
Hemocultivo automatizado |
Valores de referencia |
#N/A
|
Modificado/Vigencia |
28.02.2018 |
BACU |
CULTIVO DE MICOBACTERIAS |
Plazos |
33 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE).
ESPUTO: Remitir al laboratorio por separado cada muestra de esputo solicitada, en sendos envases estériles, cada muestra rotulada con la fecha de obtención. Las muestras seriadas deben ser obtenidas en días sucesivos (usualmente 3) y conservadas refrigeradas (4°C a 8°C), excepto la última, que debe quedar a temperatura ambiente (18°C a 25°C) hasta su procesado. Cuidar que no se observe contaminación con restos de alimentos, etc, dentro del envase. Adjuntar la planilla de datos clínicos.
ORINA: Remitir al laboratorio las muestras solicitadas, en sus respectivos envases estériles, cada muestra rotulada con la fecha de obtención. Las muestras seriadas deben ser obtenidas en días sucesivos (usualmente 3) y conservadas refrigeradas (4°C a 8°C), dentro del envase. Adjuntar la planilla de datos clínicos. En el caso de solicitarse la determinación BDIR con el BACU, se respetan las indicaciones de BACU ya que la determinación se realiza con la misma muestra. |
Instrucciones al paciente |
Para llevar a cabo este estudio debe proveerse de un envase estéril por cada muestra a obtener, según lo haya prescripto su médico. Suspender todo tratamiento antibiótico 72 horas antes de la obtención de las muestras, excepto expresa indicación de su médico. INSTRUCCIONES:
ESPUTO: 1. Retirar las prótesis dentales, si las utiliza 2. Expectorar lo más profundamente que le sea posible y recolectar la expectoración muestra en el envase estéril. Es necesario cuidar al envase estéril no lleguen restos de alimentos o saliva.Tapar perfectamente el recipiente y rotularlo con su nombre y el día que obtuvo la muestra. 3. Si su médico ha solicitado una sola muestra, llevar inmediatamente al laboratorio. Si en cambio le ha solicitado varias, conservar la muestra de cada día en la heladera, excepto la última, que debe quedar a temperatura ambiente y el último día llevar todas las muestras juntas al laboratorio, dentro de las dos horas de haber recogido la última muestra.
ORINA: Recolectar la primera orina de la mañana, todo el volumen, en el recipiente estéril. Rotular debidamente. Repetir este procedimiento durante tres días seguidos (estudio seriado). Conservar la muestra de cada día en la heladera y el último día llevar todas las muestras juntas al laboratorio.
|
| Método |
Cultivo en medio líquido con lectura automatizada |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
06.02.2025 |
BARBI |
BARBITURICOS, ORINA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
“MEDICINA LABORAL: Instrucciones para la obtención de muestras de alcohol y drogas de abuso: Solicitar al laboratorio de referencia el formulario (triplicado) para recolección de datos. 1. Cortar el agua del toilette o encintar las canillas. 2. Identificar fehacientemente a la persona con DNI o CI. 3. Anotar los datos personales en el formulario e identificar a la persona con un código. 4. Entregar a la persona un recipiente para la recolección de orina y solicitarle que recoja una muestra en el toilette. 5. Tomar inmediatamente la temperatura de la muestra y consignarla en el formulario: sin este dato la muestra quedará invalidada. 6. Fraccionar la muestra en un tubo de Kahn y refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C). 7. Identificar las muestras con el código de identificación (NO con el nombre). 8. Indicar en el formulario que determinaciones se solicitan. 9. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad, refrigerada (4°C-8°C) en envase térmico con refrigerante. la tercera hoja del formulario (que no tiene el nombre del paciente) . Retener otra alícuota en el laboratorio. SEDES AMBULATORIAS: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad (ver instrucciones para el paciente). |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio con una retención urinaria de 3 hs, como mínimo. La muestra de orina se obtendrá en el Laboratorio. |
| Método |
Kinetic interaction of microparticles in solution (KIMS) |
Valores de referencia |
Negativo. Valor de corte: 200 ng/mL |
Modificado/Vigencia |
22.05.2018 |
BARTG |
BARTONELLA HENSELAE, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI |
Valores de referencia |
Valor de Corte: 1/10 |
Modificado/Vigencia |
11.12.2025 |
BARTM |
BARTONELLA HENSELAE, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI |
Valores de referencia |
Negativo: Valor de corte 1/16 |
Modificado/Vigencia |
06.11.2025 |
BCARO |
BETACAROTENOS, SUERO |
Plazos |
12 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero en tubo protegido de la luz. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotometria |
Valores de referencia |
50 a 250 ug/dl |
Modificado/Vigencia |
30.03.2019 |
BDIR |
BACILOS ÁCIDO - ALCOHOL RESISTENTES (BAAR), COLORACIÓN DE ZIEHL NEELSEN, ESPUTO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una muestra de esputo en envase estéril. |
Instrucciones al paciente |
Para la obtención de la muestra proveerse de un envase estéril del tipo de urocultivo. Procedimiento para obtener la muestra: 1. Retirar las prótesis dentales, si las utiliza 2. Efectuar una profunda higiene bucal con cepillo de dientes y enjuagar haciendo varios buches con agua 3. Recoger una muestra de expectoración profunda en el envase estéril cuidando de no recoger saliva 4. Tapar perfectamente el recipiente y rotularlo con su nombre y el día que obtuvo la muestra. Remitir al laboratorio a temperatura ambiente (18°C a 25°C) dentro de las 2 horas |
| Método |
Coloración de Ziehl Neelson y Microscopía de fluorescencia. |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
05.02.2025 |
BENZO |
BENZODIAZEPINAS, ORINA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
“MEDICINA LABORAL: Instrucciones para la obtención de muestras de alcohol y drogas de abuso: Solicitar al laboratorio de referencia el formulario (triplicado) para recolección de datos. 1. Cortar el agua del toilette o encintar las canillas. 2. Identificar fehacientemente a la persona con DNI o CI. 3. Anotar los datos personales en el formulario e identificar a la persona con un código. 4. Entregar a la persona un recipiente para la recolección de orina y solicitarle que recoja una muestra en el toilette. 5. Tomar inmediatamente la temperatura de la muestra y consignarla en el formulario: sin este dato la muestra quedará invalidada. 6. Fraccionar la muestra en un tubo de Kahn y refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C). 7. Identificar las muestras con el código de identificación (NO con el nombre). 8. Indicar en el formulario que determinaciones se solicitan. 9. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad, refrigerada (4°C-8°C) en envase térmico con refrigerante. la tercera hoja del formulario (que no tiene el nombre del paciente) . Retener otra alícuota en el laboratorio. SEDES AMBULATORIAS: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad (ver instrucciones para el paciente). |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio con una retención urinaria de 3 hs, como mínimo. La muestra de orina se obtendrá en el Laboratorio. |
| Método |
Kinetic interaction of microparticles in solution (KIMS) |
Valores de referencia |
Negativo.Valor de corte 300 ng/mL |
Modificado/Vigencia |
22.05.2018 |
BETAC |
GONADOTROFINA CORIÓNICA HUMANA (SUBUNIDAD BETA), EMBARAZO, SUERO |
Plazos |
En el día |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Embarazo (semanas después de la FUM): 3 a 4: 5,8 a 750 mUI/ml 5 a 6: 160 a 31.800 mUI/ml 7 a 8: 3.700 a 170.000 mUI/ml 9 a 10:46000 a 187.000 mUI/mL 12 a 14: 13.900 a 210.000 mUI/ml 15 a 16: 9.000 a 70.900 mUI/ml 17 a 18: 8.000 a 58.000 mUI/ml Post menopausia: 6.4 a 10.4 mUI/l |
Modificado/Vigencia |
05.02.2025 |
BETAM |
GONADOTROFINA CORIONICA HUMANA (SUBUNIDAD BETA), MARCADOR TUMORAL, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
• Mujeres adultas: hasta 5.0 mUI/ml • Varones adultos: hasta 2.0 mUI/ml |
Modificado/Vigencia |
05.02.2025 |
BHIBU |
ÁCIDO BETA - HIDROXIBUTIRICO, SUERO |
Plazos |
8 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero o de plasma heparinizado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimatico cinetico UV |
Valores de referencia |
0,03 a 0,30 mmol/l
|
Modificado/Vigencia |
16.10.2025 |
BIL |
BILIRRUBINA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Bilirrubina directa: Jendrassik y Grof. Bilirrubina total: Jendrassik y Grof |
Valores de referencia |
Bilirrubina directa: Hasta 0,30 mg/dl Bilirrubina total: 0-1 día: 1,4-8,7 mg/dl 1-2 días: 3,4-11,5 mg/dl 3-5 días: 1,5-12 mg/dl Adulto: 0,3-1,2 mg/dl
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Modificado/Vigencia |
17.02.2025 |
BIOTN |
BIOTINIDASA NEONATAL, GOTA DE SANGRE SECA |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras deben ser obtenidas desde las 48 horas del nacimiento hasta los 7 días de vida, como máximo.Solicitar al laboratorio el soporte de papel apropiado para la obtención y transporte de la muestra.
Método de obtención de las muestras: 1. Entibiar el talón del bebé con una compresa tibia, punzarlo con una lanceta desechable, formar con el pulgar y el índice un pliegue de la piel en lugar de la punción y oprimir para obtener las gotas de sangre 2. Embeber con la sangre cada uno de los círculos marcados en el papel hasta que la sangre se distribuya homogéneamente por toda la superficie del círculo en ambas caras del mismo. 3. Completar cuidadosamente todos los datos solicitados en el soporte y colocarlo en un envase tipo Ziploc para proteger de la humedad. Si es necesario adjuntar planilla de datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Fluoroinmunoensayo con tecnología DELFIA ® |
Valores de referencia |
Normal: Mayor de 50 U |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
BKUR |
POLYOMAVIRUS BK, ADN, CUALITATIVO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenidos, en tubo estéril 200 ul de líquido cefalorraquídeo. También se puede procesar en orina y en plasma con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Real Time PCR |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
13.05.2024 |
BNPU |
PEPTIDO NATRIURETICO TIPO B, PLASMA |
Plazos |
2 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Extraer 3,0 ml de sangre periférica con EDTA. Separar el plasma, congelarlo a -18°C a -20°C y transportado en esas condiciones.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 100 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
24.04.2025 |
BOLIG |
BANDAS OLIGOCLONALES, LIQUIDOCEFALORRAQUIDEO |
Plazos |
32 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico:
Líquido cefalorraquídeo: Como mínimo 1.0 ml, se debe colocar la muestra en un tubo de Khan con tapones de goma ó plástico, lo importante es que tengan cierre hermético para evitar derrames. No enviar LCR en frascos estériles para orinas ni en recipientes de mayor tamaño que el indicado.
Enviar además 1.0 ml de suero.
Para procesar la muestra son necesarios los siguientes datos: Sexo-Edad-Diagnóstico presuntivo del paciente.
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Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Isoelectroenfoque |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
16.09.2026 |
BORBM |
BORRELIA BURGDORFERI, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo Valor de corte 1/16 |
Modificado/Vigencia |
26.12.2024 |
BORBU |
BORRELIA BURGDORFERI, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo Valor de corte: 1/80 |
Modificado/Vigencia |
26.12.2024 |
BORIF |
BORDETELLA PERTUSSIS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
01.07.2026 |
BORIM |
BORDETELLA PERTUSSIS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. NOTA : el paciente debe completar la ficha epidemiológica, que se adjunta en descargas de archivo
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
30.06.2026 |
BORU |
BORDETELLA PERTUSSIS Y PARAPERTUSSIS, ADN, SECRECIONES RESPIRATORIAS |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N 95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con: • Hisopos estériles con punta de poliéster o dacron, nunca de madera con punta de algodón. • Tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0,5 mL (mínimo) y 1,0 mL (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras no se hayan conservado refrigeradas, las que haya sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias. Instrucciones: SECRECIONES NASALES O FARÍNGEAS • Obtener las muestras de los orificios nasales profundos (hisopado nasal) o de la faringe (hisopado faríngeo).Por cada tipo de muestra (nasal o faríngea) recolectar dos hisopos. • Colocar ambos hisopos en el tubo con solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente y rotular. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos (S6). ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARÍNGEOS O BRONQUIALES • Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Real Time PCR |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
26.06.2024 |
BP3 |
PROTEINA LIGADORA 3 DE FACTOR DE CRECIMIENTO INSULINICO TIPO 1 (IGF1 - BP3) |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
1-2 años: 0.7-3.9 ug/ml 3-4 años: 0.9-4.7 ug/ml 5-6 años: 1.1-5.6 ug/ml
7-8 años:1.4-6.5 ug/ml 9-10 años: 1.8-7.7 ug/ml 11-12: años 2.4-8.9 ug/ml 13-14 años: 3.1-10.0 ug/ml 15-16: años 3.5-9.5 ug/ml: 17-18 años 3.2-7.9 ug/ml 19-20 años: 2.9-7.2 ug/ml 21-50: años 3.3-7.8 ug/ml: 51-85 años 2.2-6.8 ug/ml |
Modificado/Vigencia |
07.01.2025 |
BROMA |
BROMAZEPAM, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 50 a 200 ng/mL Nivel tóxico: Mayor de 300 ng/mL. |
Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
BROSE |
BROMURO EN SANGRE |
Plazos |
12 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio como mínimo 1 ml de suero refrigerado libre de hemólisis. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electrodo Ion Selectivo |
Valores de referencia |
Rango Teraméutico: 100-1500 mg/l |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
BRUGI |
BRUCELOSIS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 9.0 |
Modificado/Vigencia |
26.07.2024 |
BRUMI |
BRUCELOSIS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 9.0 |
Modificado/Vigencia |
26.07.2024 |
BUF24 |
BUFOTENINA, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
12 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina de 24 horas refrigerada (4°C-8°C) en envase plástico (polipropileno o similares). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua.
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
TMS (Espectrometría de Masas en Tándem) |
Valores de referencia |
1,8 a 8,9 mcg/24 hs. |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
C1Q |
COMPLEMENTO, FRACCIÓN C1Q, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero refrigerado.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Turbidimetría |
Valores de referencia |
120 a 196 mg/l
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Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
C1QIN |
COMPLEMENTO, FRACCION C1Q, INHIBIDOR (FUNCIONAL) |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de plasma citratado congelado (-18°C a -20°C).
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cromogénico |
Valores de referencia |
70-130% |
Modificado/Vigencia |
05.06.2025 |
C2AD2 |
PRECIVITY ENFERMEDAD DE ALZHEIMER 2 (COMBINA BETA AMILOIDE Y TAU-217) |
Plazos |
21 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio de proceso 2 tubos con 1.5 ml de plasma con EDTA congelado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno |
| Método |
Combinación de pruebas |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
08.09.2026 |
C2NAD |
PRECIVITY ENFERMEDAD DE ALZHEIMER (COMBINA BETA AMILOIDE Y APO-E) |
Plazos |
21 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio de proceso 1.5 ml de plasma con EDTA congelado. |
Instrucciones al paciente |
No necesita ayuno |
| Método |
Combinación de pruebas |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
08.09.2026 |
C3 |
COMPLEMENTO, FRACCIÓN C3, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico |
Valores de referencia |
90 a 180 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
18.09.2026 |
C4 |
COMPLEMENTO, FRACCIÓN C4, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico |
Valores de referencia |
10 a 40 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
18.09.2026 |
CA |
CALCIO, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico Arsenazo III |
Valores de referencia |
0-10 días: 7.6 - 10.4 mg/dl 11 días a 1 año: 9.0 - 11.0 mg/dl 2 a 11 años: 8.8 - 10.8 mg/dl 12 a 17 años: 8.4 - 10.2 mg/dl 18 a 60 años: 8.6 - 10.0 mg/dl 61 a 90 años: 8.8 - 10.2 mg/dl Mas de 90 años: 8.2 - 9.6 mg/dl
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Modificado/Vigencia |
20.01.2025 |
CA125 |
ANTIGENO OVARICO (CA125), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 30.2 U/ml |
Modificado/Vigencia |
28.08.2023 |
CA153 |
ANTIGENO MAMARIO (CA 15-3), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 32.4 U/mL |
Modificado/Vigencia |
13.09.2023 |
CA199 |
ANTIGENO DE TUBO DIGESTIVO (CA19-9), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 37,0 U/ml |
Modificado/Vigencia |
28.08.2023 |
CA24 |
CALCIO, ORINA 24 HORAS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 ml de orina de 24 horas en tubo de Kahn, acidificada con una gota de ácido clorhídrico 6 N, a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua.
Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible.
Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Colorimétrico Arsenazo III |
Valores de referencia |
100 a 300 mg/24 hs |
Modificado/Vigencia |
10.02.2026 |
CA724 |
ANTIGENO DE ESTOMAGO (CA 72-4), SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 4.0 U/ml |
Modificado/Vigencia |
26.10.2023 |
CACR |
CALCIO / CREATININA, RELACIÓN, ORINA 24 HORAS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico dos tubos de Kahn, uno con una alícuota de 5 ml de orina de 24 horas, y otro tubo igual volumen pero acidificada con una gota de ácido clorhídrico 6N , a temperatura ambiente (18°C a 20°C).
|
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua.
Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible.
Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Calcio: Colorimétrico Arsenazo III Creatinina: método de Jaffe. Cinético. |
Valores de referencia |
Hasta 0.3
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Modificado/Vigencia |
10.02.2026 |
CACR2 |
CALCIO / CREATININA, RELACIÓN, ORINA 2 HORAS |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico dos tubos de Kahn, uno con una alícuota de 5 ml de orina de 2 horas, y otro tubo igual volumen pero acidificada con una gota de ácido clorhídrico 6N , a temperatura ambiente (18°C a 20°C).
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Instrucciones al paciente |
Para la realización de la prueba: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de ½ a 1 litro de capacidad. Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Obtener en la farmacia 250 ml de agua destilada. Es conveniente, no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua, antes de recoger la orina.
Instrucciones para la recolección de la orina: Al levantarse, en ayunas, vaciar la vejiga y desechar esa orina. Inmediatamente beber los 25O ml de agua destilada (dos vasos), y continuar en ayunas, sin realizar actividad física y absteniéndose de orinar. Al cabo de 2 horas exactas desde que se orinó la primera vez, orinar y recoger esa orina en el envase plástico. Si no le es posible retener la micción, puede recoger todas las micciones en el envase hasta que se cumplan las 2 horas. Llevar la muestra al Laboratorio tan pronto como le sea posible.
Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario respetar estrictamente los horarios y que la recolección de la orina sea completa. |
| Método |
Calcio: Colorimétrico Arsenazo III Creatinina: método de Jaffe. Cinético. |
Valores de referencia |
Orina obtenida en ayunas: Menor de 0,12. Con sobrecarga de calcio: (1,0 g / 1,73 m2 de superficie corporal): Hasta 0,21 |
Modificado/Vigencia |
10.02.2026 |
CAD |
CADMIO, SANGRE |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 5,0 mL de sangre con heparina, refrigerada a temperatura de heladera (4°C-8°C). |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotometría de absorción atómica |
Valores de referencia |
Indice de Exposición Biológico: Menor de 5 ug/l |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
CADUR |
CADMIO, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina espontánea en 2 tubos plásticos mas una alícuola de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
Recolectar la orina al final del turno o de la semana laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio. |
| Método |
Absorción Atómica |
Valores de referencia |
Indice de Exposición Biológica: Hasta 5 ug/g creatinina
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Modificado/Vigencia |
19.08.2025 |
CAFEI |
CAFEINA, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 5,0 a 11.0 ug/mL Pediátrico: 8.0 a 20.0 ug/ml
|
Modificado/Vigencia |
26.12.2024 |
CAH2 |
CALCIO, ORINA 2 HS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 ml de orina de 2 horas en tubo de Kahn, acidificada con una gota de ácido clorhídrico 6 N, a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización de la prueba: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de ½ a 1 litro de capacidad. Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Obtener en la farmacia 250 ml de agua destilada. Es conveniente, no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua, antes de recoger la orina.
Instrucciones para la recolección de la orina: Al levantarse, en ayunas, vaciar la vejiga y desechar esa orina. Inmediatamente beber los 25O ml de agua destilada (dos vasos), y continuar en ayunas, sin realizar actividad física y absteniéndose de orinar. Al cabo de 2 horas exactas desde que se orinó la primera vez, orinar y recoger esa orina en el envase plástico. Si no le es posible retener la micción, puede recoger todas las micciones en el envase hasta que se cumplan las 2 horas. Llevar la muestra al Laboratorio tan pronto como le sea posible.
Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario respetar estrictamente los horarios y que la recolección de la orina sea completa.
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| Método |
Colorimétrico Arsenazo III |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
10.02.2026 |
CAION |
CALCIO IÓNICO, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Obtener sangre venosa sin utilización de lazo. El tubo de elección es el de heparina con gel, exclusivo para esta determinación. Centrifugar rápidamente y remitir la muestra refrigerada el día de su obtención. En caso de remitirse suero, llenar completamente el tubo evitando la formación de una cámara de aire (condición de anaerobiosis) y remitir la muestra refrigerada el día de su obtención, sin abrir el tubo en ningún momento. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electrodo ion selectivo |
Valores de referencia |
1.08 a 1.38 mmol/l 4.33 a 5.53 mg/l |
Modificado/Vigencia |
26.02.2026 |
CALC |
CÁLCULO URINARIO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio el material biológico en un tubo seco de 10 mL de capacidad |
Instrucciones al paciente |
Recoger el material (cálculo o arenilla) en un recipiente limpio y seco o en una gasa o papel tissue y colocarlo en un envase limpio y seco. |
| Método |
Colorimétrico |
Valores de referencia |
N.A.. |
Modificado/Vigencia |
07.03.2018 |
CALCI |
CALCITONINA |
Plazos |
3 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0.5 ml de suero congelado (-18°C a -20°C).
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
• Varones adultos: Hasta 12,69 pg/ml • Mujeres adultas: hasta 5,89 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
16.10.2025 |
CALPR |
CALPROTECTINA |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir a DA la materia fecal refrigerada.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario proveerse de un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo), un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc.), lavado con agua y jabón, una cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco, nunca hisopos. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera.
Instrucciones para obtener las muestras: Obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado y seco (no en el inodoro), evitando que se contamine con orina. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril esto será lo que entregue en el laboratorio).
Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas.
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| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Normal: Menor de 50 ug/g Ligeramente elevado: 50 a 200 ug/g Considerablemente elevado: Mayor de 200 ug/g |
Modificado/Vigencia |
03.06.2026 |
CALR |
SECUENCIACION EXON 9 DEL GEN CALRETICULINA |
Plazos |
20 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio como mínimo 3.0 ml de sangre entera con EDTA o médola osea con EDTA.
Para procesar la muestra son necesarios los siguientes datos: Sexo-Edad-Diagnóstico presuntivo o motivo del pedido -Antecedentes familiares. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno |
| Método |
PCR-Secuenciación |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
14.05.2026 |
CAMPY |
CAMPYLOBACTER SP, CULTIVO, MATERIA FECAL |
Plazos |
5 día hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
•Materiales necesarios: Envase estéril. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico en envase estéril. • Mantener a temperatura ambiente (18°C a 25°C). • No se aceptarán pañales con materia fecal. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario: 1)Proveerse de un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo). 2) Proveerse de un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc.), lavado con agua y jabón. 3) Proveerse de una cuchara de plástico descartable nueva para trasvasar materia fecal al frasco. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera.Instrucciones para obtener las muestras: Si se trata de pañal, raspar y pasar al envase estéril. No llevar el pañal al laboratorio: no será aceptado. Remitir el frasco, a temperatura ambiente, inmediatamente al Laboratorio |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
20.08.2025 |
CANAC |
CANDIDAS ALBICANS, AC. IGG "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA" |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA" |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
11.11.2025 |
CANMF |
CANDIDA SP, CULTIVO, MATERIA FECAL |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). No se reciben muestras los dîas viernes, sábados, domingos, feriados y vísperas de feriados. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario proveerse de un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo), un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc.), lavado con agua y jabón, una cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco, nunca hisopos. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera.
Instrucciones para obtener las muestras: Obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril. Seleccionar preferentemente una porción de la materia fecal de aspecto sanguinolento o mucoso. Si se trata de pañal, raspar y pasar al envase estéril, no llevar el pañal al laboratorio, “no será aceptado”.
Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas."
No se reciben muestras los dîas viernes, sábados, domingos, feriados y vísperas de feriados.
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| Método |
Observación microscópica y cultivo. |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
03.06.2026 |
CANNA |
CANNABINOIDES, ORINA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
“MEDICINA LABORAL: Instrucciones para la obtención de muestras de alcohol y drogas de abuso: Solicitar al laboratorio de referencia el formulario (triplicado) para recolección de datos. 1. Cortar el agua del toilette o encintar las canillas. 2. Identificar fehacientemente a la persona con DNI o CI. 3. Anotar los datos personales en el formulario e identificar a la persona con un código. 4. Entregar a la persona un recipiente para la recolección de orina y solicitarle que recoja una muestra en el toilette. 5. Tomar inmediatamente la temperatura de la muestra y consignarla en el formulario: sin este dato la muestra quedará invalidada. 6. Fraccionar la muestra en un tubo de Kahn y refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C). 7. Identificar las muestras con el código de identificación (NO con el nombre). 8. Indicar en el formulario que determinaciones se solicitan. 9. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad, refrigerada (4°C-8°C) en envase térmico con refrigerante. la tercera hoja del formulario (que no tiene el nombre del paciente) . Retener otra alícuota en el laboratorio. SEDES AMBULATORIAS: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad (ver instrucciones para el paciente). |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio con una retención urinaria de 3 hs, como mínimo. La muestra de orina se obtendrá en el Laboratorio. |
| Método |
Kinetic interaction of microparticles in solution (KIMS) |
Valores de referencia |
Negativo: Valor de corte 25 ng/mL |
Modificado/Vigencia |
22.05.2018 |
CAPSP |
TRANSFERRINA, CAPACIDAD DE SATURACION |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Se sugiere no ingerir carnes rojas las 8 hs previas a la extracción. |
| Método |
Homogéneo.Colorimétrico |
Valores de referencia |
Capacidad libre (UIBC):155 - 355 ug/dl Capacidad total (TIBC): 228 a 428 mcg/dl Indice de saturación: 0,2 a 0,4 |
Modificado/Vigencia |
28.09.2026 |
CARAC |
HEPATITIS C, ARN, CUANTITATIVO, PLASMA |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma con EDTA refrigerado (2 a 8 °C) en tubo nuevo , obtenido por centrifugacion a 800-1600 g x 20 minutos. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
Rango lineal: 15 UI/mL (1,2 log) hasta 100.000.000 UI/mL (8.0 log). |
Modificado/Vigencia |
08.05.2026 |
CARAR |
CARIOTIPO CON BANDEO DE ALTA RESOLUCION |
Plazos |
45 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Solo puede tomarse de lunes a jueves. No recibir muestras en vísperas de feriados. Remitir al laboratorio 3.0 ml de sangre con Heparina de Sodio. Mantener refrigerado (2ºC a 8ºC). Es indispensable enviar copia de la orden médica con el diagnóstico. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio de Lunes a Jueves. Víspera de feriado consultar |
| Método |
Estudio cromosómico |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
CARBA |
CARBAMACEPINA, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero. Solicitar al paciente dosis y hora de toma del medicamento e informarlas al laboratorio de proceso junto a la hora de extracción. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
Inmunoensayo homogéneo con micropartículas |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 4,0 a 12,0 mcg/ml |
Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
CARDA |
ANTICUERPOS ANTI - CARDIOLIPINA, IgA, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Elisa |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 10 APL-U/ml Positivo: Mayor o igual de 10 APL-U/ml |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
CARDG |
ANTICUERPOS ANTI - CARDIOLIPINA, IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día al laboratorio 0,5 ml de suero. Si no es posible enviarlo en el día, congelar el tubo (-18°C a -20°C) y transportarlo en esta condición. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Se consideran relevantes valores superiores a 40 GPL-U/ml en por lo menos dos determinaciones separadas por 12 semanas |
Modificado/Vigencia |
21.01.2026 |
CARDM |
ANTICUERPOS ANTI - CARDIOLIPINA, IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día al laboratorio 0,5 ml de suero. Si no es posible enviarlo en el día, congelar el tubo (-18°C a -20°C) y transportarlo en esta condición. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Se consideran relevantes valores superiores a 40 MPL-U/ml en por lo menos dos determinaciones separadas por 12 semanas. |
Modificado/Vigencia |
21.01.2026 |
CARHB |
HEPATITIS B VIRUS, ADN, CUANTITATIVO, PLASMA |
Plazos |
9 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma con EDTA refrigerado (2 a 8 °C) en tubo nuevo , obtenido por centrifugacion a 800-1600 g x 20 minutos.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
Rango lineal: 10 copias/mL (1.0 log) a 1.000.000.000 (9.0 log) copias/ml
|
Modificado/Vigencia |
08.05.2026 |
CARHI |
HIV, ARN. CUANTITATIVO, PLASMA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma con EDTA refrigerado (2 a 8 °C) en tubo nuevo , obtenido por centrifugacion a 800-1600 g x 20 minutos |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
Rango lineal: 20 copias/ml (1,3 log) a 10.000.000 (7,0 log) copias/ml |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
CARIC |
CARIOTIPO CON BANDEO |
Plazos |
30 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Solo puede tomarse de lunes a jueves. No recibir muestras en vísperas de feriados. Remitir al laboratorio 3.0 ml de sangre con Heparina de Sodio. Mantener refrigerado (2ºC a 8ºC). Es indispensable enviar copia de la orden médica con el diagnóstico. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio de Lunes a Jueves. Víspera de feriado consultar |
| Método |
Estudio cromosómico |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
CARNI |
CARNITINA, SANGRE |
Plazos |
18 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Recién nacidos: remitir al laboratorio analítico suero obtenido de sangre de cordón Otros: remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Es necesario adjuntar planilla de datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
TMS (Espectrometría de masas en tándem) |
Valores de referencia |
Sangre de cordón: Carnitina libre: 10 a 35 mcmol/l Carnitina total: 13 a 39 mcmol/l Indice L/T: 0.75 a 0.90.
Sangre venosa: Nacimiento a 7 días: Carnitina libre: 22 a 35 mcmol/l Carnitina total: 31 a 39 mcmol/l Indice L/T: 0.70 a 0.90. 8 días a 1 mes: Carnitina libre: 30 a 48 mcmol/l Carnitina total: 42 a 53mcmol/l Indice L/T:0,70 a 0,90. 2 meses a1 año: Carnitina libre: 37 a 58 mcmol/l Carnitina total: 46 a 64mcmol/l Indice L/T: 0.80 a 0.90. Mayores de 1 año: Carnitina libre: 41 a 58 mcmol/l Carnitina total: 46 a 70 mcmol/l Indice L/T:0.80 a 0.90. |
Modificado/Vigencia |
01.10.2026 |
CD19 |
CD19 (Cluster of differentiation 19), LINFOCITOS B TOTALES |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre con EDTA. DOMINGOS Y FERIADOS remitir muestra en tubo con conservante Vacutainer ACD Solution. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
|
| Método |
Citometría de flujo |
Valores de referencia |
1 a 11 meses: 19 a 31 % 1 a 6 años: 21 a 28 % 7 a 17 años: 27 a 35 % 18 a 70 años: 11 a 16 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
CD20 |
CD20 (Cluster of differentiation 20), LINFOCITOS B TOTALES |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre con EDTA. DOMINGOS Y FERIADOS remitir muestra en tubo con conservante Vacutainer ACD Solution. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
|
| Método |
Citometría de flujo |
Valores de referencia |
1 a 11 meses: 19 a 31 % 1 a 6 años: 21 a 28 % 7 a 17 años: 27 a 35 % 18 a 70 años: 11 a 16 %
|
Modificado/Vigencia |
12.08.2026 |
CD3 |
CD3 (Cluster of differentiation 3), LINFOCITOS T TOTALES |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre con EDTA. DOMINGOS Y FERIADOS remitir muestra en tubo con conservante Vacutainer ACD Solution. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Citometría de flujo |
Valores de referencia |
Adultos de razas caucásicas: 56 a 86%. Consultar por valores de referencia pediátricos. |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
CD4 |
CD4 (Cluster of differentiation 4), LINFOCITOS T HELPER |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre con EDTA. DOMINGOS Y FERIADOS remitir muestra en tubo con conservante Vacutainer ACD Solution. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Citometría de flujo |
Valores de referencia |
Adultos de razas caucásicas: 33 a 58%. Consultar por valores de referencia pediátricos |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
CD56 |
CD56/16 LINFOCITOS NATURAL KILLER (NK) |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre con EDTA. DOMINGOS Y FERIADOS remitir muestra en tubo con conservante Vacutainer ACD Solution. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Citometría de flujo |
Valores de referencia |
1 a 11 meses: 8 a 17 % 1 a 6 años: 8 a 15 % 7 a 17 años: 9 a 16 % 18 a 70 años: 10 a 19 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
CD8 |
CD8 (Cluster of differentiation 8), LINFOCITOS T SUPRESORES |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre con EDTA. DOMINGOS Y FERIADOS remitir muestra en tubo con conservante Vacutainer ACD Solution. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Citometría de flujo |
Valores de referencia |
Adultos de razas caucásicas: 13 a 39%. Consultar por valores de referencia pediátricos. |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
CEA |
ANTIGENO CARCINOEMBRIONARIO (CEA); SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
No fumadores: Menor de 3,0 ng/ml Fumadores: Hasta 5.0 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
28.08.2023 |
CENTR |
ANTICUERPOS ANTI - CENTROMERO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
CERUL |
CERULOPLASMINA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico |
Valores de referencia |
Hombre: 15 a 30 mg/dl Mujer: 16 a 45 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
19.08.2025 |
CHAEL |
CHAGAS, ANTICUERPOS, SUERO (ELISA) |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimoinmunoensayo |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
31.01.2018 |
CHAH |
CHAGAS, ANTICUERPOS, SUERO (HEMAGLUTINACION) |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0,5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Hemaglutinación |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
CHAIF |
CHAGAS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
CHAIM |
CHAGAS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratoriocomo mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
31.07.2012 |
CHAUR |
TRYPANOSOMA CRUZI, ADN |
Plazos |
22 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre periférica con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
CHE |
COLINESTERASA, ACTIVIDAD, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimático - Colorimétrico |
Valores de referencia |
Hombres: 5320 - 12920 UI/l Mujeres: De 0 a 16 años: 5320 - 12920 UI/l De 17 a 41 años: 4260 - 11250 Mayores de 41 años: 5320 - 12920
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Modificado/Vigencia |
14.08.2026 |
CHIKU |
VIRUS DE CHIKUNGUYA, ARN |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma con EDTA refrigerado (2 a 8 °C). Adjuntar obligatoriamente ficha epidemiológica completa
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
CHINA |
TINCION DE AURAMINA-RODAMINA |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Envase estéril. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico en envase estéril. • Conservar y transportar la muestra a Temperatura Ambiente |
Instrucciones al paciente |
La muestra es obtenida por el médico bajo condiciones de rigurosa asepsia • Se remite al laboratorio en recipiente estéril a Temperatura ambiente. |
| Método |
Microscópico |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
28.02.2018 |
CHLAM |
CHLAMYDIA TRACHOMATIS, ANTÍGENO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba según la localización a analizar (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Importante: La Chlamydia trachomatis es una bacteria de desarrollo intracelular obligatorio que vive dentro de las células epiteliales de la uretra y cérvix, por lo que es necesario frotar el hisopo contra la superficie de los canales uretrales o cervicales a fin de tomar la muestra celular adecuada. Se debe extremar los cuidados en la toma de muestras, para poder obtener resultados confiables. Utilizar siempre hisopos con punta de fibras de rayón o dacron (NO utilizar hisopos con punta de algodón o alginato de calcio o medios de transporte tipo agar o gelatina). Las muestras pueden conservarse hasta 48 hs a temperaturas entre 2 y 25 ºC.
Instrucciones: Las instrucciones para la obtención de muestras y su remisión al laboratorio varían según la localización a investigar.
SECRECIÓN ENDOCERVICAL: Limpiar cuidadosamente la mucosidad excesiva del orificio cervical con un hisopo, gasa o algodón. Introducir un hisopo en el canal endocervical, haciéndolo rotar unos 15 a 30 segundos en ambas direcciones, para favorecer la secreción de glándulas y criptas. Colocar el hisopo en un tubo plástico seco y taparlo. No se deben tomar muestras que presenten contaminación evidente con sangre, ya que interfiere en la interpretación de resultado.La muestra debe tomarse 48 -72 hs horas después de finalizado el sangrado.
SECRECIÓN URETRAL: Introducir un hisopo en la uretra, haciéndolo rotar de 3 a 5 segundos. Colocar el hisopo en un tubo plástico seco y taparlo.
ORINA PRIMER CHORRO: Controlar que el paciente haya recolectamo la muestra segun las indicaciones (especialmente que el volumen de orina no supere los 10 ml).
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Instrucciones al paciente |
Instrucciones: Cualquiera sea el caso, es necesario interrumpir cualquier tratamiento antibiótico 72 horas antes de la obtención de las muestras, excepto expresa indicación del médico. Las instrucciones específicas son diferentes según el tipo de cultivo a realizar: PRIMER CHORRO DE ORINA: Con el prepucio retraído, realizar una meticulosa higiene genital con agua y jabón, enjuagar con abundante agua y secar con una toalla de papel, recoger en uno de los envases estériles la primera parte de la orina (primer chorro miccional); el volumen a recoger sólo debe cubrir el fondo del envase (aproximadamente 10 cm3), desechar la orina restante. SECRECIÓN ENDOCERVICAL No concurrir a la toma de muestra durante el período mensutrual o si presenta sangrado vaginal. La muestra debe tomarse 72 hs horas después de finalizado el sangrado. Si está embarazada la muestra debe ser obtenida por su médico. Observar una abstinencia sexual de 72 hs, antes del estudio. La noche previa al estudio realizar higiene vulvar (externa) con agua y jabón siempre de adelante hacia atrás, nunca en sentido inverso para evitar la contaminación. Desde la noche anterior no utilizar duchas vaginales, ni aplicarse desodorantes, cremas vaginales o talco. SECRECIÓN URETRAL Varones: Observar una retención urinaria de toda la noche o si no es posible, de 3 horas como mínimo. Antes de concurrir al laboratorio efectuar una meticulosa higiene genital con el prepucio retraído, tres veces, con agua y jabón. Enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel.
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| Método |
Inmunocromatografia |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
18.09.2026 |
CHLAU |
CHLAMYDIA PNEUMONIAE , ADN, SECRECIONES RESPIRATORIAS |
Plazos |
7 Dias hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N 95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con: • Hisopos estériles con punta de poliéster o dacron, nunca de madera con punta de algodón. • Tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0,5 mL (mínimo) y 1,0 mL (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras no se hayan conservado refrigeradas, las que haya sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias. Instrucciones: SECRECIONES NASALES O FARÍNGEAS • Obtener las muestras de los orificios nasales profundos (hisopado nasal) o de la faringe (hisopado faríngeo).Por cada tipo de muestra (nasal o faríngea) recolectar dos hisopos. • Colocar ambos hisopos en el tubo con solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente y rotular. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos (S6). ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARÍNGEOS O BRONQUIALES • Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Real Time PCR |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
17.05.2024 |
CI24 |
CITRATO, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
5 dia habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio en tubo plástico (polipropileno o similares) una alícuota de 5 ml de orina de 24 horas refrigerada.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Enzimático con citrato-liasa |
Valores de referencia |
140 a 900 mg/24hs |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
CIF21 |
ANTIGENO DE PULMON CYFRA 21.1, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 3,3 ng/mL |
Modificado/Vigencia |
26.12.2024 |
CIM |
CONCENTRACION INHIBITORIA MINIMA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Cepa aislada |
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
Tiras de gradiente de concentración |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
28.02.2018 |
CISTC |
CISTATINA C, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
0.61 - 0.95 mg/l |
Modificado/Vigencia |
05.09.2025 |
CITRU |
ANTICUERPOS ANTI - PEPTIDOS CITRULINADOS (CITRULINA) |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 5 U/ml Positivo: Mayor o igual a 5 U/ml |
Modificado/Vigencia |
27.12.2024 |
CKMBDA |
CREATINQUINASA, FRACCIÓN MB (CPK MB), ACTIVIDAD |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir como mínimo 1,0 ml de suero libre de hemólisis. No es posible realizar el análisis con sueros hemolizados. Si es una urgencia, remitir al laboratorio de Proceso (Medicus)) Si la muestra no es URGENTE, remitir a División Analítica. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
UV Inmunológico |
Valores de referencia |
Hasta 24 UI/L |
Modificado/Vigencia |
28.04.2023 |
CLCAT |
4 - CLOROCATECOL, ORINA |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 20 mL de orina espontánea en envase plástico a temperatura ambiente (18°C-25°C). Instrucciones: Recolectar la orina al final del turno o de la semana laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
•Indice de exposición biológica: hasta 150 mg/g creatinina. •Límite de cuantificación: 5,0 mg/g creatinina. |
Modificado/Vigencia |
05.02.2025 |
CLIFG |
CHLAMYDIA TRACHOMATIS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Elisa |
Valores de referencia |
Negativo: menor de 9.0
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Modificado/Vigencia |
23.05.2019 |
CLIFM |
CHLAMYDIA TRACHOMATIS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Elisa |
Valores de referencia |
Negativo: menor de 9.0
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Modificado/Vigencia |
23.05.2019 |
CLOBA |
CLOBAZAM, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 2,0 ml de suero refrigerado |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 100 a 400 ng/ml Nivel tóxico: Mayor de 500 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
CLONA |
CLONAZEPAM, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 2,0 ml de suero refrigerado |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: Anticonvulsivante: 25 a 70 ng/ml Ansiolítico: 4 a 80 ng/ml Nivel tóxico: Mayor de 100 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
CLORA |
PESTICIDAS ORGANOCLORADOS, SANGRE |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 5,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cromatografía gaseosa acoplada con detector por captura electrónica y a espectrometria |
Valores de referencia |
Límite de detección: 10 mcg/L |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
CLORI |
CLORIMIPRAMINA, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 100 a 250 ng/mL |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
CLORO |
CLORO, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electrodo Ion selectivo |
Valores de referencia |
Hasta 19 años: 98 a 107 mEq/l Mayores de 19 años: 94 a 111 mEq/l |
Modificado/Vigencia |
12.08.2026 |
CLOUR |
CLORO, ORINA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de Kahn. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario que se provea de un envase plástico (polipropileno o similaressSin necesidad de mantener retención urinaria, recoger orina de cualquier emisión espontánea en el envase estéril. Tapar el envase, rotularlo con su nombre y llevarlo al laboratorio tan pronto como sea posible. |
| Método |
Electrodo Ion selectivo |
Valores de referencia |
46 a 168 mEq/l |
Modificado/Vigencia |
11.10.2016 |
CLOZA |
CLOZAPINA, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 3,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Rangos Terapéuticos: Clozapina: De 350 a 600 ng/ml Clozapina + N-desmetilclozapina: Mayor de 450 ng/ml Niveles tóxicos: Mayor de 1000 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
15.04.2026 |
CLU1H |
CORTISOL LIBRE, ORINA DE 1 HORA (22:00 a 23:00) |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio una alícuota de orina de 1 hora en un tubo de Kahn. |
Instrucciones al paciente |
• Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. • Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de ½ a 1 litro de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. • Proveerse en la farmacia de 250 cm3 de agua destilada. • Es conveniente no realizarejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. • Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de recoger orina. Instrucciones para la recolección de orina: • No ingerir alimentos durante el tiempo de recolección de la muestra. • A las 22:00 orinar y descartar esa orina. Inmediatamente beber los 250 mL de agua destilada. • Retener las micciones hasta las 23:00 y a esa hora recoger la orina en el envase. Si no le es posible retener la micción, puede recoger todas las micciones en el envase hasta las 23:00. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario respetar estrictamente los horarios y que la recolección de la orina sea completa. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Indice de cortisol libre urinario (CLU) / Creatinina en orina: hasta 28 ng/mg |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
CLU1M |
CORTISOL LIBRE, ORINA DE 1 HORA (8.00 A 9.00 HS) |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio una alícuota de orina de 1 hora en un tubo de Kahn. |
Instrucciones al paciente |
• Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. • Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de ½ a 1 litro de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. • Proveerse en la farmacia de 250 cm3 de agua destilada. • Es conveniente no realizarejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. • Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de recoger orina. Instrucciones para la recolección de orina: • No ingerir alimentos durante el tiempo de recolección de la muestra. • A las 08:00 de la mañana orinar y descartar esa orina. Inmediatamente beber los 250 mL de agua destilada. • Retener las micciones hasta las 09:00 y a esa hora recoger la orina en el envase. Si no le es posible retener la micción, puede recoger todas las micciones en el envase hasta las 09:00. Llevar al laboratorio, tan pronto como sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario respetar estrictamente los horarios y que la recolección de la orina sea completa. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Indice de cortisol libre urinario (CLU) / Creatinina en orina: 80 a 200 ng/mg |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
CLU24 |
CORTISOL LIBRE, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
1Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE).Remitir al laboratorio una alícuota de orina en un tubo de Kahn. Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
20.9 a 292.3 ug/24 hs |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
CLU2H |
CORTISOL LIBRE, ORINA de 2 HS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE.Remitir al laboratorio una alícuota de orina de 1 hora en un tubo cónico de Kahn. |
Instrucciones al paciente |
• Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. • Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de ½ a 1 litro de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. • Proveerse en la farmacia de 250 cm3 de agua destilada. • Es conveniente no realizarejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. • Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). • Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de recoger orina. • No ingerir alimentos durante el tiempo de recolección de la muestra. Instrucciones para la recolección de orina: • En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Inmediatamente de beber los 250 mL de agua destilada, anotar la hora en que se hizo. • Retener las micciones y al cabo de 2 horas exactas desde que orinó la primera vez, orinar y recoger esa orina en el envase plástico. Si no le es posible retener la micción, puede recoger todas las micciones en el envase hasta que se cumplan las dos horas. Llevar al laboratorio, tan pronto como sea posible Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario respetar estrictamente los horarios y que la recolección de la orina sea completa. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
CMVAV |
TEST DE AVIDEZ PARA CITOMEGALOVIRUS |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELFA |
Valores de referencia |
Mayor a 0.60 :Infección de más de 4 meses (Alta avidez).
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Modificado/Vigencia |
25.09.2025 |
CMVCL |
CITOMEGALOVIRUS, ADN, CUALITATIVO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenido al laboratorio líquido cefalorraquideo en tubo esteril. También se aceptan materiales de secreción respiratorio, biopsias, líquidos de punción y orinas. Por otro tipo de materiales, consultar |
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
No detectable |
Modificado/Vigencia |
10.06.2024 |
CMVG |
CITOMEGALOVIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: menor a 6.0 UA/ml Positivo: mayor o igual 6.0 UA/ml |
Modificado/Vigencia |
31.01.2024 |
CMVM |
CITOMEGALOVIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
1 Día hábile |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.85 |
Modificado/Vigencia |
31.01.2024 |
CMVQU |
CITOMEGALOVIRUS, ADN, CUANTITATIVO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenidos al laboratorio analítico 2.0 ml de plasma con EDTA congelado |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
Rango dinámico: 34.5 -10.000.000 UI/ml.
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Modificado/Vigencia |
12.08.2026 |
CNHDL |
COLESTEROL NO HDL |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
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| Método |
#N/A |
Valores de referencia |
Valores de referencia en términos de riesgo cardiovascular según NCEP
Optimo: menor de 130 mg/dl Cercano al óptimo: 130 a 160 mg/dl Border line alto: 160 a 190 mg/dl Alto: 190 a 220 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
16.06.2014 |
COAG |
COAGULOGRAMA BÁSICO (Perfil: Recuento de plaquetas, Tiempo de protrombina, Tiempo de trombopl |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico las siguientes muestras: • 3.0 ml de sangre con EDTA, • 1 extendido de sangre periférica en un portaobjeto desengrasado, y • 2,5 ml de sangre citratada. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Recuento de plaquetas: Coulter®; Tiempo de protrombina: Coagulométrico; Tiempo de trombop |
Valores de referencia |
• Recuento de plaquetas: 150 a 440 millones/mm3. • Tiempo de protrombina:sexo masculino-femenino: 70 a 100 %. • Tiempo de Tromboplastina parcial activada (KPTT): 25 a 37 segundos. • RIN(Razón Internacional Normatizada): 1,0 a 1,30. • |
Modificado/Vigencia |
21.08.2025 |
COBAL |
COBALTO, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotometría de Absorción Atómica (atomización en horno de grafito |
Valores de referencia |
Menor de 1,0 mcg/L Nivel tóxico: Mayor de 5 mcg/L |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
COBUR |
COBALTO, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 50 mL de orina espontánea a temperatura ambiente (18°C-25°C). Instrucciones: Recolectar la orina al final del turno o de la semana laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Espectrofotometría de Absorción Atómica (atomización en horno de grafito |
Valores de referencia |
Indice Biológico de Exposición: Menor de 15 ug/l |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
COCA |
COCAINA, ORINA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
“MEDICINA LABORAL: Instrucciones para la obtención de muestras de alcohol y drogas de abuso: Solicitar al laboratorio de referencia el formulario (triplicado) para recolección de datos. 1. Cortar el agua del toilette o encintar las canillas. 2. Identificar fehacientemente a la persona con DNI o CI. 3. Anotar los datos personales en el formulario e identificar a la persona con un código. 4. Entregar a la persona un recipiente para la recolección de orina y solicitarle que recoja una muestra en el toilette. 5. Tomar inmediatamente la temperatura de la muestra y consignarla en el formulario: sin este dato la muestra quedará invalidada. 6. Fraccionar la muestra en un tubo de Kahn y refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C). 7. Identificar las muestras con el código de identificación (NO con el nombre). 8. Indicar en el formulario que determinaciones se solicitan. 9. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad, refrigerada (4°C-8°C) en envase térmico con refrigerante. la tercera hoja del formulario (que no tiene el nombre del paciente) . Retener otra alícuota en el laboratorio. SEDES AMBULATORIAS: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad (ver instrucciones para el paciente). |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio con una retención urinaria de 3 hs, como mínimo. La muestra de orina se obtendrá en el Laboratorio. |
| Método |
Kinetic interaction of microparticles in solution (KIMS) |
Valores de referencia |
Negativo (valor de corte 300 ng/ml) |
Modificado/Vigencia |
22.05.2018 |
COCCI |
COCCIDIOIDES INMITIS, ANTICUERPOS, SUERO |
Plazos |
16 Días hábiles. |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Ouchterlony (doble difusión) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
12.03.2026 |
COCL |
ANTICUERPOS ANTI - CÓCLEA, SUERO |
Plazos |
24 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1.0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
LIA |
Valores de referencia |
No reactivo |
Modificado/Vigencia |
14.08.2026 |
COL |
COLESTEROL TOTAL, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimático colorimétrico |
Valores de referencia |
Hasta 19 años: 0-170 mg/dl Mayores de 19 años: 0-200 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
13.08.2026 |
COLKIN |
COLORACIÓN DE KINJOUN |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Envase estéril. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico en envase estéril. • Conservar y transportar la muestra a Temperatura Ambiente |
Instrucciones al paciente |
La muestra es obtenida por el médico bajo condiciones de rigurosa asepsia • Se remite al laboratorio en recipiente estéril a Temperatura ambiente. |
| Método |
Microscópico |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
28.02.2018 |
COODI |
PRUEBA DE ANTIGLOBULINA DIRECTA (Coombs directa) |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de sangre periférica con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coombs directa |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
17.01.2025 |
COOIN |
PRUEBA DE ANTIGLOBULINA INDIRECTA ( Coombs Indirecta) |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Aglutinación en gel |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
02.03.2025 |
COPEP |
COPEPTINA BIOMARCADOR DE SECRECION DE VASOPRESINA-ADH |
Plazos |
16 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio de proceso 1.0 ml de plasma con EDTA congelado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno |
| Método |
TRACE-Inmunofluorométrico |
Valores de referencia |
Adultos sin restricción de líquidos: Menos de 12.0 pmol/l Adultos con restricción de líquidos: Menos de 15.2 pmol/l
Copeptina menor de 4.9 pmol/l se sugiere evaluiar posible Diabetes Insípida Central. Copeptina mayor o igual a 4.9 pmol/l se sugiere evaluar Polidipsia Primaria. |
Modificado/Vigencia |
18.08.2026 |
COPRO |
COPROCULTIVO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Mantener a temperatura ambiente (18°C a 25°C). No se aceptarán pañales con materia fecal. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario proveerse de un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo), un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc.), lavado con agua y jabón, una cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco, nunca hisopos. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera.
Instrucciones para obtener las muestras: Obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril. Seleccionar preferentemente una porción de la materia fecal de aspecto sanguinolento o mucoso. Si se trata de pañal, raspar y pasar al envase estéril, no llevar el pañal al laboratorio, “no será aceptado”.
Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas. |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
03.06.2026 |
COPUR |
COPROPORFIRINAS, ORINA |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 50 mL de orina de 24 horas obtenida y conservada al abrigo de la luz. Enviar refrigerado. Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: • Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. • Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros), si es posible de color caramelo o verde oscuro.. Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Si no es posible encontrar recipientes oscuros, envolverlos en papel de aluminio o papel negro, para evitar el contacto de la muestra con la luz. • Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. • Recolectar orina de 24 horas. Recolección de orina de 24 horas: 1. En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2. A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada al abrigo de la luz y en lugar fresco, preservándola del calor. 3. Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4. En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5. Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible, siempre al abrigo de la luz. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas. |
| Método |
Espectofotométrico |
Valores de referencia |
Hasta 160 ug/24 hs
|
Modificado/Vigencia |
13.01.2020 |
CORMF |
CORTISOL MATINAL, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Instrucciones: Para evitar variaciones debidas al ritmo circadiano es necesario obtener la muestra a las 08:00 de la mañana. La muestra debe ser obtenida luego de un reposo de 20 minutos, sentado (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno La obtención de la muestra para este estudio debe realizarse a más tardar a las 09:00 de la mañana, salvo expresa indicación médica. Esto es debido a que la concentración de cortisol en la circulación cambia a lo largo del día. El día de la prueba concurrir al laboratorio antes de las 08:30, ya que es necesario un reposo de 20 minutos antes de la obtención de la muestra. Se recomienda observar cuidadosamente los horarios para evitar resultados incorrectos o necesitar postergar el estudio hasta el día siguiente. Informar a la recepcionista del laboratorio la medicación que toma habitualmente, especialmente corticoides, cualquiera sea la vía de administración, oral, inyectable, crema, spray, rectal. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
4.3 a 22.4 ug/dl. |
Modificado/Vigencia |
13.08.2026 |
CORTS |
CORTISOL MATUTINO EN SALIVA |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Trasvasar la saliva a un tubo de Khan plástico, mínimo 0.5 ml. Centrifugar 2 veces y enviar al Laboratorio. La muestra debe recolectarse a las 08:00 hs.
|
Instrucciones al paciente |
La recolección de saliva se hará a las 8:00 hs. Es necesario respetar las indicaciones siguientes para obtener la muestra:
1. No realizar actividad física de esfuerzo en las 12 horas previas 2. Desde 8 horas antes no tomar mate, té, café o alcohol y desde 3 horas antes no ingerir ningún alimento sólido o líquido. Cepillarse los dientes como lo hace habitualmente después de la última ingesta de alimentos. 3. Antes de recoger la saliva enjuagar la boca con buches de agua, sin cepillarse nuevamente. No realice la recolección si tiene heridas bucales sangrantes (encías, etc). 4. A la hora correspondiente salivar en un frasco estéril de manera de cubrir el fondo del mismo, aproximadamente 2 ml de saliva. Mantener refrigerado hasta entregarlo en el laboratorio. 5. Informar al laboratorio si recibe medicación para disminuir los niveles de colesterol y/o triglicéridos (lípidos).
|
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 0.87 ug/dl
|
Modificado/Vigencia |
30.06.2026 |
CORTSN |
CORTISOL NOCTURNO EN SALIVA |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Trasvasar la saliva a un tubo de Khan plástico, mínimo 0.5 ml. Centrifugar 2 veces y enviar al Laboratorio. La muestra debe recolectarse a las 23:00 hs.
|
Instrucciones al paciente |
La recolección de saliva se hará a las 23:00 hs.Es necesario respetar las indicaciones siguientes para obtener la muestra:
1. No realizar actividad física de esfuerzo en las 12 horas previas 2. Desde 8 horas antes no tomar mate, té, café o alcohol y desde 3 horas antes no ingerir ningún alimento sólido o líquido. Cepillarse los dientes como lo hace habitualmente después de la última ingesta de alimentos. 3. Antes de recoger la saliva enjuagar la boca con buches de agua, sin cepillarse nuevamente. No realice la recolección si tiene heridas bucales sangrantes (encías, etc). 4. A la hora correspondiente salivar en un frasco estéril de manera de cubrir el fondo del mismo, aproximadamente 2 ml de saliva. Mantener refrigerado hasta entregarlo en el laboratorio. 5. Informar al laboratorio si recibe medicación para disminuir los niveles de colesterol y/o triglicéridos (lípidos).
|
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 0.41 ug/dl |
Modificado/Vigencia |
30.06.2026 |
CORTSV |
CORTISOL VESPERTINO EN SALIVA |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Trasvasar la saliva a un tubo de Khan plástico, mínimo 0.5 ml. Centrifugar 2 veces y enviar al Laboratorio. La muestra debe recolectarse a las 16:00 hs
|
Instrucciones al paciente |
La recolección de saliva se hará a las 16:00 hs.Es necesario respetar las indicaciones siguientes para obtener la muestra: 1. No realizar actividad física de esfuerzo en las 12 horas previas 2. Desde 8 horas antes no tomar mate, té, café o alcohol y desde 3 horas antes no ingerir ningún alimento sólido o líquido. Cepillarse los dientes como lo hace habitualmente después de la última ingesta de alimentos. 3. Antes de recoger la saliva enjuagar la boca con buches de agua, sin cepillarse nuevamente. No realice la recolección si tiene heridas bucales sangrantes (encías, etc). 4. A la hora correspondiente salivar en un frasco estéril de manera de cubrir el fondo del mismo, aproximadamente 2 ml de saliva. Mantener refrigerado hasta entregarlo en el laboratorio. 5. Informar al laboratorio si recibe medicación para disminuir los niveles de colesterol y/o triglicéridos (lípidos).
|
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 0.35 ug/dl |
Modificado/Vigencia |
02.07.2026 |
CORVF |
CORTISOL VESPERTINO, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Instrucciones: Instruir al paciente para que tome un almuerzo liviano, sin grasas, y concurra al laboratorio 20 minutos antes las 16:00 para la obtención de la muestra. |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al laboratorio 20 minutos antes de las 16:00 (salvo indicación horaria específica del médico), habiendo incorporado un almuerzo liviano sin grasas. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Aproximadamente el 50% del valor matutino |
Modificado/Vigencia |
13.08.2026 |
COTIA |
COTININA, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 20 mL de orina espontánea en envase plástico a temperatura ambiente (18°C-25°C). |
Instrucciones al paciente |
Recolectar orina emitida espontáneamente en un envase limpio, nuevo, que no haya contenido alimentos, detergentes o lavandina. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance). Sensibilidad: 10 ng/mL |
Valores de referencia |
No fumadores: Hasta 500 ng/mL |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
COTIS |
COTININA , SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance). Sensibilidad: 10 ng/mL |
Valores de referencia |
No fumadores: Hasta 25 ng/ml. |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
COVIDG |
ANTICUERPOS ANTI SARS-COVID2 (ANTI SPIKE) IGG |
Plazos |
7 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
|
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Positivo: Mayor o igual a 50 AU/ml
|
Modificado/Vigencia |
25.06.2026 |
COVIDM |
ANTICUERPOS ANTI SARS-COV2 IGM "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA" |
Plazos |
7 Dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero refrigerado. "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA" |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
|
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 1.0 |
Modificado/Vigencia |
04.05.2026 |
COXBG |
COXIELLA BURNETTI, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.9 |
Modificado/Vigencia |
25.01.2024 |
COXBM |
COXIELLA BURNETTI, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.9 |
Modificado/Vigencia |
31.07.2024 |
CPK |
CREATINQUINASA (CPK), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Evitar inyecciones intramusculares y ejercicio físico intenso en las últimas 48 hs. |
| Método |
Cinético UV IFCC |
Valores de referencia |
Hasta 14 días: 90 a650 UI/l De 15 días a 1 año: 60 a 420 UI/l De 1 a 3 años: 55 a 300 UI/l De 4 a 6 años: 50 a 260 UI/l De 7 a 12 años: 45 a 230 UI/l De 13 a 18 años: Hombres: 60 a 400 UI/l Mujeres: De 40 a 210 UI/l Mayores de 19 años: Hombres: Hasta 190 UI/l Mujeres: Hasta 170 UI/l |
Modificado/Vigencia |
12.08.2026 |
CRE24 |
CREATININA, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina de 24 horas en tubo de kahn a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
|
| Método |
Cinético.Reacción de Jaffe |
Valores de referencia |
Hombre 1040 a 2350 mg/24 hs Mujer: 740 a 1570 mg/24hs
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Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
CRE2H |
CREATININA, ORINA DE 2 HORAS |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proveer las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Muestras: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina de 2 horas, obtenida en ayunas, en tubo de Kahn. Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización de la prueba: • Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de ½ a 1 litro de capacidad . Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. • Obtener en la farmacia 250 mL de agua destilada. • Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de recoger orina. • No ingerir alimentos durante el tiempo de recolección de la muestra de orina. Instrucciones para la recolección de orina: 1. Al levantarse, en ayunas, vaciar la vejiga y desechar esa orina. Inmediatamente de beber los 250 mL de agua destilada, anotar la hora en que se hizo. Continuar en ayunas, sin realizar ninguna actividad física y absteniéndose de orinar. 2. Al cabo de 2 horas exactas desde que orinó la primera vez, orinar y recoger esa orina en el envase plástico. Si no le es posible retener la micción durante ese tiempo, puede recoger todas las micciones en el envase hasta que se cumplan las dos horas. 3. Llevar la muestra al laboratorio tan pronto como le sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario respetar estrictamente los horarios y que la recolección de la orina sea completa. |
| Método |
Cinético.Reacción de Jaffe |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
22.09.2022 |
CREA |
CREATININA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cinético.Reacción de Jaffe |
Valores de referencia |
Recién nacido a 7 días: 0.29 – 0.85 mg/dl 8 días a 12 meses: 0.17 – 0.42 mg/dl 1 a 2 años: 0.24 - 0.41 mg/dl 3 a 4 años: 0.31 - 0.47 mg/dl 5 a 6 años: 0.32 - 0.59 mg/dl 7 a 8 años: 0.40 - 0.60 mg/dl 9 a 10 años: 0.39 - 0.73 mg/dl 11 a 12 años: 0.53 - 0.79 mg/dl 13 a 14 años: 0.56 - 0.87 mg/dl Mas de 15 años: Hombres: 0.70 - 1.20 mg/dl Mujeres: 0.50 – 0.90 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
20.01.2025 |
CRECL |
CREATININA, ACLARAMIENTO, 24 HORAS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proveer las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Muestras: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero, junto con una alícuota de 5 ml de orina de 24 horas en tubo de Kahn. Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin esta información no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario analizar conjuntamente una muestra de suero y otra de orina de 24 horas. Para esto, debe recoger primero la orina de 24 horas, y al día siguiente concurra al laboratorio con esta muestra para la extracciôn de sangre, no se necesita ayuno. La obtención de sangre debe realizarse el día la recolección de orina, no pudiendo realizarse en días posteriores. Instrucciones para la prueba: • Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros), con tapa a rosca. Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. • No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. • Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. • Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). • Recolección de orina de 24 horas: 1. En la mañana del día de la recolección al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que lo hizo. 2. A partir de ese momento juntar en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Es conveniente mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3. Si el recipiente no es suficiente, puede continuar recolectando en otro de las mismas características que el anterior. 4. En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente. Tapar el recipiente cuidadosamente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5. Concurrir al laboratorio con el recipiente con la orina No requiere ayuno.para realizar la obtención del suero. En el laboratorio se le solicitará información de peso y altura. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de la orina sea completa sin que se pierda ninguna porción. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las horas indicadas. |
| Método |
Cinético.Reacción de Jaffe |
Valores de referencia |
Aclaramiento endógeno relativo: 70 a 190 ml/minuto. |
Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
CRESU |
ORTOCRESOL, ORINA |
Plazos |
12 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina espontánea en 2 tubos plásticos. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral.
|
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica: Menor de 0,5 mg/l |
Modificado/Vigencia |
25.09.2025 |
CRO |
CROMO, SUERO |
Plazos |
10 Dias hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotometría de Absorción Atómica (atomización en horno de grafito |
Valores de referencia |
0 a 5 ug/l |
Modificado/Vigencia |
05.11.2019 |
CROMA |
CROMOGRANINA - A, SUERO |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoensayo Enzimático |
Valores de referencia |
Intervalo de referencia: Menor de 100 ug/l |
Modificado/Vigencia |
20.02.2020 |
CROUR |
CROMO, ORINA |
Plazos |
10 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina espontánea en 2 tubos plásticos . Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Absorción Atómica |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica: hasta 30 ug/g CREATININA. |
Modificado/Vigencia |
12.09.2025 |
CRYPL |
CRYPTOCOCCUS NEOFORMANS, ANTÍGENO, LIQUIDO CEFALORRAQUÍDEO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir la laboratorio analítico una muestra de líquido cefalorraquídeo en envase estéril de plástico (polipropileno o similares).
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Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Inmunocromatografía |
Valores de referencia |
Negativo
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Modificado/Vigencia |
04.09.2024 |
CRYPT |
CRYPTOCOCCUS NEOFORMANS, ANTÍGENO, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir la laboratorio analítico una muestra de suero en envase estéril de plástico (polipropileno o similares). |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
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| Método |
Inmunocromatografía |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
CU |
COBRE, SUERO |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero, libre de hemólisis.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ICP-MS (Espectroscopía de masa) |
Valores de referencia |
Hasta 2 meses: 40-140 ug/dl De 3 a 6 meses: 40-160 ug/dl De 7 a 9 meses: 80-170 ug/dl de 13 meses a 10 años: 80-180 ug/dl De 11 a 17 años: 75-145 ug/dl Hombres: 73-129ug/dl Mujeres: 77-206 ug/dl
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Modificado/Vigencia |
20.05.2026 |
CU24 |
COBRE, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). : Remitir 30 ml de orina de 24 hs en tres alícuotas de 10 ml previamente bien homogeneizado. Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Absorción Atómica |
Valores de referencia |
Hasta 60 mcg/24 horas.
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Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
CULT |
CULTIVO BACTERIOLOGICO MATERIALES VARIOS |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Envase estéril. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico en envase estéril o medio de transporte. • Conservar y transportar la muestra a Temperatura Ambiente |
Instrucciones al paciente |
La muestra es obtenida por el médico bajo condiciones de rigurosa asepsia • Se remite al laboratorio en recipiente estéril a Temperatura ambiente. |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
04.09.2024 |
CY24 |
CISTINA, ORINA 24 HS |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 10 ml de orina de 24 horas (sin acidificar) en tubos de plástico (polipropileno o similares) a temperatura ambiente (18°C a 25°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Shinogara y Padis mod. |
Valores de referencia |
Hasta 150.0 mg / 24 horas |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
CYS |
CICLOSPORINA , SANGRE |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2,0 mL de sangre periférica con EDTA sin separar el plasma. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
No hay rango terapeutico fijo descripto para la ciclosporina. Los niveles optimos se determinan teniendo en cuenta una serie de factores, según criterio medico. Rango sugerido por bibliografía: 100 a 400 ng/ml (muestra obtenida antes de la siguiente dosis) |
Modificado/Vigencia |
25.01.2024 |
DALUR |
ÁCIDO DELTA - AMINOLEVULINICO, ORINA |
Plazos |
8 Días hábiles - |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos mas una alícuola de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada y protegida de la luz. |
Instrucciones al paciente |
Recolectar la orina al final del turno o semana laboral, utilizar envase plástico comercial (del tipo para urocultivo) |
| Método |
Espectrofotométrico |
Valores de referencia |
Valor Normal: Menor de 4,5 mg/g creatinina.
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Modificado/Vigencia |
07.10.2025 |
DAO |
DIAMINOOXIDASA, SUERO |
Plazos |
32 Días Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
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| Método |
Enzimático |
Valores de referencia |
Menor de 3 U/ml: Alta incidencia de intolerancia a la Histamina De 3 a 10 U/ml: Probable intolerancia a la Histamina Mayor de 10 U/ml: Baja probabilidad de intolerancia a la Histamina
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Modificado/Vigencia |
13.11.2025 |
DENAG |
DENGUE VIRUS, ANTIGENO NS1 |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir 1.0 ml de suero refrigerado.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
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| Método |
Elisa |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.9
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Modificado/Vigencia |
01.10.2024 |
DENG |
DENGUE VIRUS, ANTICUERPOS IgG , SUERO |
Plazos |
7 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA(Enzyme Linked Inmunosorbent Assay) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0,9
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Modificado/Vigencia |
16.12.2024 |
DENM |
DENGUE VIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
7 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzyme Linked Inmunosorbent Assay) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0,9 |
Modificado/Vigencia |
16.12.2024 |
DENUR |
DENGUE VIRUS, RNA |
Plazos |
2 Día hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma con EDTA refrigerado (2 a 8 °C)
Completar ficha epidemiológica |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
RT-PCR, Real Time |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
05.11.2024 |
DHEAF |
DEHIDROEPIANDROSTERONA SULFATO (DHEA-S), SUERO |
Plazos |
1 Dia hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hombres: 80 ug/dl-560 ug/dl Mujeres: 35 ug/dl-430 ug/dl Prepuberes hasta 61 ug/dl |
Modificado/Vigencia |
06.09.2023 |
DIAZE |
DIAZEPAM, SUERO |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 2,0 ml de suero refrigerado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra.
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| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
Concentración Terapéutica: |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
DIFFI |
CLOSTRIDIUM DIFFICILE,TOXINAS A Y B, MATERIA FECAL |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir a DAA la materia fecal refrigerada de LUNES A SABADOS |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario proveerse de un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo), un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc.), lavado con agua y jabón, una cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco, nunca hisopos. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera.
Instrucciones para obtener las muestras: Obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril. Si se trata de heces liquidas la cantidad a tomar será no más de 1 cm del recipiente estéril. Si se trata de pañal, raspar y pasar al envase estéril. No llevar al laboratorio el pañal, “no será aceptado”
Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas.
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| Método |
ELISA rapido de membrana |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
03.06.2026 |
DIGOX |
DIGOXINA |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico, en el día de obtenida la muestra, 1,0 ml de plasma refrigerado. Instrucciones: obtener sangre periférica con EDTA, centrifugar y separar el sobrenadante. Refrigerar. Consignar el horario de la última toma del medicamento.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 0,8 a 2,0 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
DIMED |
DIMERO D CUANTITATIVO |
Plazos |
2 Día hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de plasma congelado (-18°C a -20°C). Instrucciones: 1. Obtener sangre en tubo con citrato 2. Inmediatamente después de la extracción centrifugar a 3000 rpm durante 10 min y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares) pasándolo a un tubo de centrífuga plástico (polipropileno similares) 3. Volver a centrifugar el plasma que se separó otros 10 min a 3000 rpm y con pipeta de plástico (polipropileno similares) transferir el sobrenadante a un tubo plástico (polipropileno similares). 4. Congelar (-18°C a -20°C) y remitir al laboratorio en esta condición |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
Hasta 0.5 mg/l FEU |
Modificado/Vigencia |
05.06.2025 |
DMFEA |
3,4 - DIMETOXIFENILETILAMINA, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina de 24 horas refrigerada (4°C-8°C) en envase plástico (polipropileno o similares). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua.
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
TMS (Espectrometría de Masas en Tándem) |
Valores de referencia |
Hasta 0,5 mcg/24 hs. |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
DNAC |
ANTICUERPOS ANTI - ADN, CUANTITATIVO, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
25.09.2018 |
DNF |
2,4 - DINITROFENOL (2,4-DNP), ORINA |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 30 mL de orina espontánea en envase plástico a temperatura ambiente (18°C-25°C). Instrucciones: Recolectar la orina al final del turno o de la semana laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Electroforesis capilar |
Valores de referencia |
Hasta 0,5 mg/g creatinina. |
Modificado/Vigencia |
23.09.2021 |
DOLPL |
DOPAMINA LIBRE, PLASMA |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Muestra: Remitir al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma congelado a -20°C en tubo plástico tapón azul exclusivo para catecolaminas. Instrucciones: Antes de la obtención de la muestra, mantener a la persona en reposo, sentado, durante 30 minutos. Obtener sangre periférica con HEPARINA y centrifugar inmediatamente después. Separar el plasma en tubo plástico tubo plástico tapón azul exclusivo para catecolaminas y congelar a -20°C. NOTA: remitir plasma libre de hemólisis. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Durante 3 días antes de concurrir al laboratorio no ingerir banana, tomate, chocolate, cacao, cremas, tortas, helados o cualquier alimento que pueda contener vainilla. No ingerir aspirinas. No tomar bebidas alchólicas. Se debe evitar la ingesta de té, café y mate durante el día anterior. No realizar grandes ingestas ni fumar durante la noche anterior. Al cuarto día, continuando con el régimen concurrir al laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas, a las 8:00 de la mañana. En el laboratorio deberá permanecer 30 minutos en reposo, sentado, antes de obtener la muestra. |
| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
Hasta 94 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
09.02.2026 |
DOP24 |
DOPAMINA, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 ml de orina de 24 horas con el conservante,congelada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
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| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
0 a 1 año: 0 a 85 ug/24hs 1 a 2 años: 10 a 140 ug/24 hs 2 a 4 años: 40 a 260 ug/24 hs Mayor de 4 años: 65 a 400 ug/24 hs
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Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
DPIRA |
DEOXIPIRIDINOLINA, ORINA |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 ml de orina, de la primer orina de la mañana, en tubo de Khan. Enviar refrigerada. |
Instrucciones al paciente |
Recolectar la primer orina de la mañana en un recipiente de plástico rígido de boca ancha, con tapa hermética de rosca.
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| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Mujer adulta: 3.0 a 7.4 nM/mM creat Hombre adulto: 2.3 a 5.4 nM/mM creat |
Modificado/Vigencia |
10.11.2022 |
E1 |
ESTRONA, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
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| Método |
ELISA |
Valores de referencia |
Hombres: 10 a 60 pg/ml Mujer: Fase folicular: 50 a 100 pg/ml Fase lútea: 100 a 300 pg/ml Postmenopausia: 10 a 60 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
24.07.2026 |
E2 |
ESTRADIOL, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. Recomendaciones: Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo, contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hombre: Hasta 40 pg/ml Mujer: Fase Folicular: 20 a 144 pg/ml Mitad de ciclo: 64 a 357 pg/ml Fase Lutea: 56 a 214 pg/ml Post Menopausia: Hasta 32 pg/ml
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Modificado/Vigencia |
10.02.2026 |
E2R |
ESTRADIOL RAPIDO, SUERO |
Plazos |
En el día |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero..La muestra debe remitirse en el día. Resultado: disponible a las 18:00 |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hombre: Hasta 40 pg/ml Mujer: Fase Folicular: 20 a 144 pg/ml Mitad de ciclo: 64 a 357 pg/ml Fase Lutea: 56 a 214 pg/ml Post Menopausia: Hasta 32 pg/ml
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Modificado/Vigencia |
23.08.2023 |
EBAMB |
EPSTEIN BARR VIRUS, ADN, CUALITATIVO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenido al laboratorio analítico 2.0 a 3.0 ml de líquido cefalorraquídeo en tubo estéril. Consultar por otro tipo de material |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
No detectable |
Modificado/Vigencia |
30.12.2024 |
EBEA |
EPSTEIN BARR VIRUS, ANTÍGENO TEMPRANO (EA), ANTICUERPOS, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0,5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 10 U/ml |
Modificado/Vigencia |
16.12.2025 |
EBNA |
EPSTEIN BARR VIRUS, ANTÍGENO NUCLEAR (EBNA), ANTICUERPOS, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 9
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Modificado/Vigencia |
29.06.2016 |
EBQU |
EPSTEIN BARR VIRUS, ADN, CUANTITATIVO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenidos al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma con EDTA |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
Rango lineal : 200 - 40.000.000 copias/ml.
|
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
ECAD |
ENZIMA CONVERTIDORA DE ANGIOTENSINA (ECA), ACTIVIDAD, SUERO |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero refrigerado
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimático-cinético UV |
Valores de referencia |
13.0 a 64.0 U/l |
Modificado/Vigencia |
16.04.2026 |
ECHOG |
ECHOVIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
8 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo (valor de corte 1/10) |
Modificado/Vigencia |
30.12.2024 |
ECHOM |
ECHOVIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
8 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo (valor de corte 1/16) |
Modificado/Vigencia |
30.12.2024 |
EHLADP |
FENOTIPO, HLA-DP EXTENDIDO , SANGRE |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico en el día 3.0 ml como mínimo de sangre periférica con EDTA.
No se reciben muestras los días viernes, sábados ni vísperas de feriado.
“Consultar con derivaciones y GBG antes de ingresar”
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
Concurrir al Laboratorio de lunes a jueves. No se toman muestras días feriados ni vísperas de feriados
|
| Método |
PCR (Polymerase Chain Reaction) |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
14.05.2026 |
EHLADQ |
FENOTIPO, HLA-DQ EXTENDIDO, SANGRE |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico en el día 3.0 ml como mínimo de sangre periférica con EDTA.
No se reciben muestras los días viernes, sábados ni vísperas de feriado.
“Consultar con derivaciones y GBG antes de ingresar”
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
Concurrir al Laboratorio de lunes a jueves. No se toman muestras días feriados ni vísperas de feriados
|
| Método |
PCR (Polymerase Chain Reaction) |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
14.05.2026 |
EIF |
SUERO, ELECTROINMUNOFIJACION |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero libre de hemólisis. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroinmunofijación |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
16.12.2024 |
EIFU |
ORINA, ELECTROINMUNOFIJACION |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 2 tubos de 10 ml de orina de 24 horas a temperatura ambiente (18°C a 25°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio lo antes posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
|
| Método |
Electroinmunofijación |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
17.09.2026 |
ELPMF |
ELASTASA PANCREATICA, MATERIA FECAL |
Plazos |
4 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al Laboratorio la materia fecal refrigerada.
|
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario proveerse de un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo), un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc.), lavado con agua y jabón, una cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco, nunca hisopos. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera.
Instrucciones para obtener las muestras: Obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado y seco (no en el inodoro), evitando que se contamine con orina. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril esto será lo que entregue en el laboratorio).
Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas.
|
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Normal: mas de 200 ug elastasa / g materia fecal Insuficiencia pancreática exócrina moderada: 100 a 200 ug elastasa / g materia fecal Insuficiencia pancreática exócrina severa: Menor de 100 ug elastasa / g materia fecal. |
Modificado/Vigencia |
03.06.2026 |
ENDO |
EXUDADO ENDOCERVICAL, CULTIVO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE).
La obtención de muestras endocervicales en embarazadas sólo puede ser efectuada por su médico; en este caso se debe proveerle de los medios de transporte adecuados. Solicitar al laboratorio analítico el tubo con medio de transporte de Stuart el tubo con solución fisiológica estéril. Si la prescripción solicita además cultivo de Mycoplasma o Ureaplasma, solicitar el medio de transporte específico. Antes de la obtención de muestras debe proveerse además de portaobjetos desengrasados. Utilizar hisopos estériles de dacron. Conservar y transportar las muestras a temperatura ambiente (18°C-20°C).
Muestra: Remitir al Laboratorio un hisopo en medio de transporte Stuart y un extendido efectuado en portaobjeto desengrasado.
Instrucciones: Limpiar el exocervix con gasa hasta eliminar el exceso de flujo vaginal. Introducir un hisopo de dacron en el canal endocervical, rotándolo en ambas direcciones, para favorecer la secreción de glándulas y criptas y efectuar un extendido. Repetir la operación con otro hisopo e introducirlo en el tubo con medio de transporte de Stuart.
No se deben tomar muestras que presenten contaminación evidente con sangre, ya que interfiere en la interpretación de resultado. En caso de sangrado activo, diferir la toma de muestra entre 48 y 72 hs posteriores a la finalización del mismo, salvo indicación médica. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización de este estudio es necesario:
No concurrir a la toma de muestra durante el período mensutrual o si presenta sangrado vaginal. La muestra debe tomarse 72 hs horas después de finalizado el sangrado. Si está embarazada la muestra debe ser obtenida por su médico. Solicitar al laboratorio el medio de transporte adecuado, antes de que su médico obtenga la muestra. Suspender todo tratamiento antibiótico (oral,cremas u óvulos) 72 horas antes de la toma de la muestra, excepto expresa indicación médica. Observar una abstinencia sexual de 72 hs, antes del estudio. Desde la noche anterior no utilizar duchas vaginales, ni aplicarse desodorantes, cremas vaginales o talco. Antes de concurrir al laboratorio realizar higiene vulvar (externa) con agua y jabón siempre de adelante hacia atrás, nunca en sentido inverso para evitar la contaminación. |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
18.09.2026 |
ENDOA |
ANTICUERPOS ANTI - ENDOMISIO, IGA, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) . |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
25.09.2018 |
ENDOG |
ANTICUERPOS ANTI - ENDOMISIO, IgG, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
25.09.2018 |
ENTUR |
ENTEROVIRUS, ARN |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1.0 ml de líquido cefalorraquídeo en tubo NUEVO, Remitir en el día de obtenidos al laboratorio analítico 2.0 ml de plasma con EDTA en tubo estéril.
|
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
30.12.2024 |
EO157 |
ESCHERICHIA COLI 0157, CULTIVO, MATERIA FECAL |
Plazos |
5 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
• El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Mantener la muestra a temperatura ambiente (18°C a 25°C). • No se aceptarán pañales con materia fecal.
|
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario proveerse de un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo), un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc.), lavado con agua y jabón, una cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco, nunca hisopos. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera. Instrucciones para obtener las muestras: Obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril. Seleccionar preferentemente una porción de la materia fecal de aspecto sanguinolento o mucoso. Si se trata de pañal, raspar y pasar al envase estéril, no llevar el pañal al laboratorio, “no será aceptado”.
Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas. |
| Método |
Cultivo (Método de screening) en agar chromogénico específico |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
03.06.2026 |
EOSMO |
LEUCOCITOS EOSINOFILOS, MOCO NASAL |
Plazos |
2 día hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Frotis con extendido de moco nasal. Instrucciones: Obtener una muestra de secreción nasal con hisopo, extender sobre un portaobjetos desengrasado y dejarlo secar. Colocar el portaobjeto en una placa de Petri y encintar para evitar su apertura. Adosar la placa encintada a la gradilla de hemogramas con dos bandas elásticas. Rotular la placa con el nombre de la Sede. Remitir al laboratorio de proceso. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Coloración y microscopía |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
13.08.2020 |
ERFOY |
ERITROPOYETINA, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
3.7 a 31.5 mU/ml |
Modificado/Vigencia |
15.09.2023 |
ERSDA |
ERITROSEDIMENTACION |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2,0 ml de sangre con EDTA. Es indispensable que el tubo tenga tapón de goma. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Fotométrico |
Valores de referencia |
Mujeres hasta 15 mm Hombres hasta 12 mm |
Modificado/Vigencia |
21.08.2025 |
ESPU |
ESPUTO, CULTIVO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Un Envase esteril. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio la muestra de esputo en envase estéril, a temperatura ambiente (18°C a 25°C), inmediatamente luego de obtenida. Cuidar que no se observe contaminación con restos de alimentos, etc, dentro del envase. |
Instrucciones al paciente |
Suspender todo tratamiento antibiótico 72 horas antes de la obtención de las muestras, excepto expresa indicación de su médico. Para la obtención de la muestra proveerse de un envase estéril del tipo de urocultivo. Procedimiento para obtener la muestra: 1. Retirar las prótesis dentales, si las utiliza 2. Efectuar una profunda higiene bucal con cepillo de dientes y enjuagar haciendo varios buches con agua 3. Recoger una muestra de expectoración profunda en el envase estéril cuidando de no recoger saliva 4. Tapar perfectamente el recipiente y rotularlo con su nombre y el día que obtuvo la muestra. Remitir al laboratorio a temperatura ambiente (18°C a 25°C) dentro de las 2 horas de obtenido.
|
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
05.02.2025 |
ETHO |
ETOSUCCIMIDA, SUERO |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 40 a 100 ug/ml |
Modificado/Vigencia |
13.10.2026 |
EVERO |
EVEROLIMUS, SANGRE |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día al laboratorio analítico 1,0 ml de sangre periférica con EDTA.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
El médico debe establecer los intervalos individuales de los pacientes basándose en evaluaciones clínicas.
|
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
EVR |
BUSQUEDA DE EVR |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
• Solicitar al laboratorio medio de transporte de Stuart. • Con un hisopo estéril, tomar muestra de la zona perianal y colocarlo en un tubo con el medio de transporte. |
Instrucciones al paciente |
La muestra es obtenida por el médico bajo condiciones de rigurosa asepsia • Se remite al laboratorio en recipiente estéril a Temperatura ambiente ambiente |
| Método |
Cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
FAC |
FOSFATASA ACIDA TOTAL, ACTIVIDAD, SUERO |
Plazos |
1 Dia hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Agregar al suero una gota de Ac. Acético 0.8M y homogeneizar previo al envió del laboratorio de proceso.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico Hillman modificado |
Valores de referencia |
• Varones: hasta 6,6 UI/l • Mujer: hasta 6,5 UI/l |
Modificado/Vigencia |
12.12.2022 |
FAIO |
FOSFATASA ALCALINA OSEA, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Masculino Femenino 0 - 3 años: 43.4 - 104.8 ug/l 41.9 – 107.0 ug/l 3 - 4 años: 29.7 - 84.8 ug/l 29.5 - 108.5 ug/l 5 - 6 años: 48.8 - 109.0 ug/l 21.9 - 115.4 ug/l 7 - 8 años: 52.6 - 123.0 ug/l 37.1 - 147.9 ug/l 9 - 10 años: 52.3 - 105.4 ug/l 42.0 - 107.6 ug/l 11 - 12 años: 55.7 - 152.3 ug/l 38.6 - 111.2 ug/l 13 - 14 años: 15.5 - 134.0 ug/l 13.7 - 109.8 ug/l 15 - 16 años: 16.6 - 127.9 ug/l 10.2 - 72.6 ug/l 17 - 18 años; 11.0 - 77.6 ug/l 5.9 - 20.0 ug/l Mas de 18 años: 5.5 - 24.6 ug/ml 5.5 – 24.6 ug/l |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
FAL |
FOSFATASA ALCALINA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico cinético IFCC |
Valores de referencia |
Adulto: 30-120 UI/L 1 a 30 días: hombre 75 a 316 UI/l / mujer 48 a 406 UI/l 30 días-1 año: hombre 82 a 383 UI/l / mujer 124 a 341 UI/l 1 a 3 años: hombre 104 a 345 UI/l / mujer 108 a 317 UI/l 4 a 6 años: hombre 93 a 309 UI/l / mujer 96-197 UI/l 7 a 9 años: hombre 86 a 315 UI/l / mujer 69 a 325 10 a 12 años: hombre 42 a 362 UI/l / mujer 51 a 332 UI 13 a 15 años: hombre 74 a 390 UI/l /mujer 50 a 162 UI/l 16 a 18 años: hombre 52 a 171 UI/l / mujer 47 a 119 UI/l
|
Modificado/Vigencia |
11.10.2016 |
FALA |
L- FENILALANINA , SUERO |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Hasta 182 umol/l |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
FANC |
ANTICUERPOS ANTI-NUCLEOCITOPLASMATICOS (FANC), SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI-Sustrato HEP2. |
Valores de referencia |
Valor de corte: 1/80 |
Modificado/Vigencia |
29.08.2024 |
FAP |
FOSFATASA ACIDA PROSTATICA, ACTIVIDAD, SUERO |
Plazos |
1 Dia hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.Agregar al suero una gota de Ac. Acético 0.8M y homogeneizar previo al envió del laboratorio de proceso. Procesar en el día. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Hillman modificado a 37°C. |
Valores de referencia |
0 a 3.5 UI/l |
Modificado/Vigencia |
12.12.2022 |
FAUCE |
FAUCES, EXUDADO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios para la recolección de la muestra: Medio de transporte stuart, bajalenguas estéril, hisopo de madera estéril • Instrucciones: Para la obtención de la muestra indicar al paciente que incline la cabeza hacia atrás y utilizando el bajalenguas, tomar una muestra por raspado de las amígdalas con el hisopo de madera y colocarlo en el medio stuart. • Conservar y transportar las muestras a temperatura ambiente (18°C a 20°C). |
Instrucciones al paciente |
Suspender todo tratamiento antibiótico 72 hs antes del estudio, excepto expresa indicación médica. Concurrir al laboratorio en condición de ayuno de 2 o más horas, con la higiene dental habitual. |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
04.09.2024 |
FE |
HIERRO, SANGRE |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Se sugiere no ingerir carnes rojas las 8 hs previas a la extracción
|
| Método |
Colorimétrico |
Valores de referencia |
0 a 10 días: 100 - 250 ug/dl 11 días a 1 año: 40 - 100 ug/dl 2 a 11 años: 50 - 120 ug/dl Mayor de 12 años: 33 - 193 ug/dl
|
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
FEA24 |
FENILETILAMINA, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina de 24 horas refrigerada (4°C-8°C) en envase plástico (polipropileno o similares). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua.
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Cromatografia gaseosa |
Valores de referencia |
20 a 40 ug/24hs |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
FENCI |
FENCICLIDINA (FENIL CICLOHEXILPIPERIDINA, PCP), ORINA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
“MEDICINA LABORAL: Instrucciones para la obtención de muestras de alcohol y drogas de abuso: Solicitar al laboratorio de referencia el formulario (triplicado) para recolección de datos. 1. Cortar el agua del toilette o encintar las canillas. 2. Identificar fehacientemente a la persona con DNI o CI. 3. Anotar los datos personales en el formulario e identificar a la persona con un código. 4. Entregar a la persona un recipiente para la recolección de orina y solicitarle que recoja una muestra en el toilette. 5. Tomar inmediatamente la temperatura de la muestra y consignarla en el formulario: sin este dato la muestra quedará invalidada. 6. Fraccionar la muestra en un tubo de Kahn y refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C). 7. Identificar las muestras con el código de identificación (NO con el nombre). 8. Indicar en el formulario que determinaciones se solicitan. 9. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad, refrigerada (4°C-8°C) en envase térmico con refrigerante. la tercera hoja del formulario (que no tiene el nombre del paciente) . Retener otra alícuota en el laboratorio. SEDES AMBULATORIAS: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad (ver instrucciones para el paciente). |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio con una retención urinaria de 3 hs, como mínimo. La muestra de orina se obtendrá en el Laboratorio. |
| Método |
Kims |
Valores de referencia |
Negativo. Valor de corte: 25 ng/mL |
Modificado/Vigencia |
22.05.2018 |
FENI |
FENITOÍNA, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero. Solicitar al paciente dosis y hora de toma del medicamento e informarlas al laboratorio de proceso junto a la hora de extracción. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
Inmunoensayo homogéneo con micropartículas |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 10 a 20 mcg/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
FENO |
FENOBARBITAL, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero. Solicitar al paciente dosis y hora de toma del medicamento e informarlas al laboratorio de proceso junto a la hora de extracción. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
Inmunoensayo homogéneo con micropartículas |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 15 a 40 mcg/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
FENTO |
FENOL TOTAL, ORINA |
Plazos |
12 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos mas una alícuola de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral.
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Instrucciones al paciente |
N.A..
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| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica: hasta 250 mg / g creatinina. |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
FERRI |
FERRITINA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hombre: 20.0 ng/ml a 320.0 ng/ml Mujer: 10.0 ng/ml a 280.0 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
06.09.2023 |
FIBRI |
FIBRINOGENO (FACTOR I DE LA COAGULACION) |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. En caso de no remitir la muestra en el día seguir las siguientes instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • Siempre adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulación-Clauss |
Valores de referencia |
200 a 400 mg/dL |
Modificado/Vigencia |
14.12.2019 |
FII |
FACTOR II DE LA COAGULACION |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 5- Adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
70 A 120 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
FIX |
FACTOR IX DE LA COAGULACION |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 5- Adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
50 a 150 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
FLUOR |
FLUOR, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 50 ml de orina espontánea en 5 tubos plásticos a temperatura ambiente (18°C-25°C). Instrucciones: Recolectar la orina al final del turno o de la semana laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Electrodo Ion selectivo. |
Valores de referencia |
Indices de exposición biológica: Antes de comenzar la jornada laboral: Hasta 2 mg/l Al finalizar la jornada laboral: Hasta 3 mg/l |
Modificado/Vigencia |
27.08.2026 |
FLUSA |
FLUOR, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de suero libre de hemólisis en tubo plástico (polipropileno o similares). Evitar el contacto con materiales de vidrio. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electrodo selectivo |
Valores de referencia |
Valores de referencia: 1 a 4 umol/l Rango terapeutico: 5 a 10 umol/l Nivel tóxico: Mayor de 15 umol/l
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Modificado/Vigencia |
25.09.2024 |
FLV |
EXUDADO VAGINAL, CULTIVO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE).
Solicitar al laboratorio analítico el tubo con medio de transporte de Stuart, el tubo con solución fisiológica estéril . Antes de la obtención de muestras debe proveerse además de portaobjetos desengrasados, una solución de Hidróxido de Potasio al 10 % en agua destilada (p/v) y cinta de pH (Rango 4,0 a 8,0). Utilizar hisopos estériles de algodón y madera para obtener muestras vaginales. Conservar y transportar las muestras a temperatura ambiente (18°C-20°C).
Instrucciones para la obtención de muestras: Adultas: Obtener en lo posible muestras de dos localizaciones, sucesivamente: fondo de saco vaginal (Candida, Trichomonas, Gardnerella, Streptococcus agalactiae, Listeria) Mujeres vírgenes o embarazadas: obtener muestras de exudado vaginal a ciegas, sin utilizar espéculo. Fondo de saco vaginal. Luego de introducir el especulo sin utilización de vaselina, Introducir un hisopo de madera hasta el fondo de saco posterior y efectuar un extendido en portaobjetos desengrasado. Obtener una segunda muestra con otro hisopo y colocarla en el tubo con solución fisiológica estéril. Obtener una tercera muestra y colocarla en el medio de transporte de Stuart. Con un cuarto hisopo, obtener una muestra y medir el pH .Comunicar esta información al laboratorio de microbiología. • Colocar una gota de la solución de KOH sobre un portaobjetos y sumergir en la misma un quinto hisopo con otra muestra para evaluar producción aminas (olor a pescado o fishy odor).
No se deben tomar muestras que presenten contaminación evidente con sangre, ya que interfiere en la interpretación de resultado. En caso de sangrado activo, diferir la toma de muestra entre 4 y 5 días posteriores a la finalización del mismo, salvo indicación médica. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización de este estudio es necesario: No concurrir a la toma de muestra durante el período mensutrual o si presenta sangrado vaginal. La muestra debe tomarse 72 hs horas después de finalizado el sangrado. Suspender todo tratamiento antibiótico (oral,cremas u óvulos) 72 horas antes de la toma de la muestra, excepto expresa indicación médica. Observar una abstinencia sexual de 72 hs, antes del estudio. Desde la noche anterior no utilizar duchas vaginales, ni aplicarse desodorantes, cremas vaginales o talco. Antes de concurrir al laboratorio realizar higiene vulvar (externa) con agua y jabón siempre de adelante hacia atrás, nunca en sentido inverso para evitar la contaminación.
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| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
18.09.2026 |
FMF |
MATERIA FECAL, EXAMEN FUNCIONAL |
Plazos |
15 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio materia fecal espontánea de cualquier deposición del día en envase plástico (polipropileno o similares), obtenida luego de una dieta de 4 días. Enviar en días de semana, no se recibe los sábados. No aceptar pañales con materia fecal.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario: Un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo). Un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc), lavado con agua y jabón. Una cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera.
Observar una dieta de 4 días en el último de los cuales se efectúa la recolección de la muestra de materia fecal. Dieta: Niños: Incluir en la dieta normal carnes rojas y blancas, verduras cocidas o crudas y aceites o grasas, durante los horarios y con las frecuencias normales de alimentación del niño, sin sobrecargar su alimentación ni forzarlo a ingerir alimentos a los que no está habituado o que no estén permitidos por el pediatra. Adultos: Durante tres días previos a la recolección de la muestra, observar la siguiente dieta: Desayuno: Infusión con leche y 1 a 3 tostadas con manteca, queso blanco o fontina, a voluntad, con o sin dulce. Almuerzo: Ensalada de verduras de hojas (lechuga, espinaca, radicheta) con aceite y sal. Si las verduras crudas no son toleradas se las puede reemplazar por verduras cocidas. Carne roja con puré con manteca. Fruta a voluntad. Merienda: Infusión con leche y 1 a 3 tostadas con manteca, queso blanco o fontina, a voluntad, con o sin dulce. Cena: Ensalada de verduras cocidas con trozos de pechuga de pollo fría con aceite, limón o vinagre y sal. Fideos secos con manteca y salsa de tomate liviana con queso rallado. Fruta a voluntad. En cualquier momento del día se pueden agregar si se desea yogur natural, galletitas de agua y mermeladas.
Instrucciones para obtener la muestra: Al cuarto día, continuando con la dieta obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril. Si se trata de pañal, raspar y pasar al envase estéril. No llevar directamente el pañal: no será recibido. Conservar a temperatura ambiente en lugar fresco hasta llevar al laboratorio. Las mustras se reciben de lunes a viernes. Mantener lejos del alcance de los niños. |
| Método |
Examen Químico - Microscópico |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
30.06.2026 |
FO24 |
FOSFORO, ORINA 24 HS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina de 24 horas en tubo de Kahn a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Colorimétrico UV Fosfomolibdato |
Valores de referencia |
400 a 1300 mg/24 hs |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
FOH2 |
FOSFORO, ORINA DE 2 HS |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio una alícuota de 5 ml de orina de 2 horas en tubo de Kahn. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización de la prueba: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de ½ a 1 litro de capacidad. Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Obtener en la farmacia 250 ml de agua destilada. Es conveniente, no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua, antes de recoger la orina.
Instrucciones para la recolección de la orina: Al levantarse, en ayunas, vaciar la vejiga y desechar esa orina. Inmediatamente beber los 25O ml de agua destilada (dos vasos), y continuar en ayunas, sin realizar actividad física y absteniéndose de orinar. Al cabo de 2 horas exactas desde que se orinó la primera vez, orinar y recoger esa orina en el envase plástico. Si no le es posible retener la micción, puede recoger todas las micciones en el envase hasta que se cumplan las 2 horas. Llevar la muestra al Laboratorio tan pronto como le sea posible.
Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario respetar estrictamente los horarios y que la recolección de la orina sea completa.
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| Método |
Colorimétrico UV Fosfomolibdato |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
10.02.2026 |
FOL |
ACIDO FOLICO (VITAMINA B9), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio 1,0 ml de suero libre de hemólisis. La hemólisis genera error por exceso en la cuantificación. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Mayor de 5.3 ng/ml
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Modificado/Vigencia |
06.09.2023 |
FOLE |
ÁCIDO FOLICO ERITROCITARIO, SANGRE PERIFÉRICA |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre periférica con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
257 ng/ml a 800 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
06.09.2023 |
FORMI |
ÁCIDO FORMICO, ORINA |
Plazos |
16 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos mas una alícuola de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Espectrofotométrico |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica: hasta 80 mg/g creatinina |
Modificado/Vigencia |
11.02.2026 |
FOSF |
FOSFORO, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico UV Fosfomolibdato |
Valores de referencia |
Mujeres Hombres 1 a 30 días: 3.9 - 6.9 mg/dl 1 a 30 días: 4.3 - 7.7 mg/dl 1 a 12 meses: 3.5 - 6.6 mg/dl 1 a 12 meses: 3.7 - 6.5 mg/dl 1 a 3 años: 3.1 – 6.0 mg/dl 1 a 3 años: 3.4 - 6.0 mg/dl 4 a 6 años: 3.3 - 5.6 mg/dl 4 a 6 años: 3.2 - 5.5 mg/dl 7 a 9 años: 3.0 - 5.4 mg/dl 7 a 9 años: 3.1 - 5.5 mg/dl 10 a 12 años: 3.2 - 5.7 mg/dl 10 a 12 años: 3.3 - 5.3 mg/dl 13 a 15 años: 2.9 - 5.1 mg/dl 13 a 15 años: 2.8 - 4.8 mg/dl 16 a 18 años: 2.7 - 4.9 mg/dl 16 a 18 años: 2.5 - 4.8 mg/dl Mas de 19 años: 2.5 - 4.5 mg/dl Mas de 19 años: 2.5 - 4.5 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
20.01.2025 |
FQ508 |
GEN CTFR (FIBROSIS QUISTICA), MUTACIÓN DELTA F 508 |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre periférica con EDTA.
No se reciben muestras los días viernes, sábados ni vísperas de feriado.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
Concurrir al Laboratorio de lunes a jueves. No se toman muestras días feriados ni vísperas de feriados.
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| Método |
PCR + Secuenciación |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
07.05.2026 |
FQH2O |
AGUA, ESTUDIO FISICO - QUIMICO (Color, turbidez, olor, pH potenciométrico, sólidos dis |
Plazos |
18 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 500 ml de agua en envase de plástico. |
Instrucciones al paciente |
Recipiente: Botella plástica nueva o de agua mineral de 500 ml. Instrucciones para la toma de muestra: 1. Abra el grifo o la salida de la bomba y deje correr el agua al menos durante cinco (5) minutos. 2. Si utiliza una botella plástica nueva de 500 ml enjuague una vez la misma con la muestra a analizar, agitando varias veces con el envase tapado y descarte ese primer enjuague. 3. Alternativamente, puede utilizar como envase una botella de agua mineral del volumen mencionado. Si opta por este envase debe descartar el contenido original y enjuagar el recipiente tres veces con el agua a analizar. En cada enjuague agite varias veces con el envase tapado y descarte el agua. 4. Llene el envase con la muestra. El llenado del mismo debe hacerse lentamente para evitar la formación de burbujas de aire. 5. Remita como mínimo un volumen de 500 ml de muestra dentro de las 24 horas desde su recolección. |
| Método |
N.A. |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
12.05.2025 |
FQSEC |
FIBROSIS QUISTICA SECUENCIACION COMPLETA |
Plazos |
50 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio de Analítico de lunes a jueves 5 a 10 ml de sangre periférica con EDTA en el día de obtención de la muestra. Consultar vísperas de feriados. Solicitar presupuesto antes de aceptarla. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio de lunes a jueves. Consultar vísperas de feriados.
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| Método |
Secuenciación |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
FRIT |
FACTOR REUMATOIDEO, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico |
Valores de referencia |
Hasta 14 UI/mL |
Modificado/Vigencia |
16.02.2012 |
FRUCT |
FRUCTOSAMINA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
NBT (Nitroblue tetrazolium) |
Valores de referencia |
205 a 285 umol/l |
Modificado/Vigencia |
22.05.2012 |
FSH |
HORMONA FOLICULOESTIMULANTE (FSH), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Recomendaciones: Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hombres: Hasta 2 años: 0.5 a 4.0 mUI/ml De 2 a 12 años: 0.5 a 3.7 mUI/ml
Mayores de 13 años: 1.4 a 18.1 mUI/ml
Hasta 2 años: 0.5 a 25.0 mUI/ml De 2 a 12 años: 0.5 a 3.7 mUI/ml
Fase folicular: 2.5 a 10.2 mUI/ml Fase ovulatoria: 3.4 a 33.4 mUI/ml
Fase lútea: 1.5 a 9.1 mUI/ml Post menopausia: 23.0 a 116.3 mUI/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2026 |
FSHR |
HORMONA FOLICULOESTIMULANTE (FSH), RÁPIDA, SUERO |
Plazos |
En el día |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hombres: Hasta 2 años: 0.5 a 4.0 mUI/ml De 2 a 12 años: 0.5 a 3.7 mUI/ml
Mayores de 13 años: 1.4 a 18.1 mUI/ml
Hasta 2 años: 0.5 a 25.0 mUI/ml De 2 a 12 años: 0.5 a 3.7 mUI/ml
Fase folicular: 2.5 a 10.2 mUI/ml Fase ovulatoria: 3.4 a 33.4 mUI/ml
Fase lútea: 1.5 a 9.1 mUI/ml Post menopausia: 23.0 a 116.3 mUI/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2026 |
FTA |
FTA ABS (Fluorescent Treponemal Antibody Absorbed), SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia indirecta con absorción del suero |
Valores de referencia |
No reactivo |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
FTAM |
TREPONEMA PALLIDUM, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia con absorción |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
FUROI |
ÁCIDO FUROICO, ORINA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 50 mL de orina espontánea en 5 tubos plásticos refrigerada (4°C-8°C). Instrucciones: Recolectar la orina al final del turno o de la semana laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
•No expuestos: hasta 65 mg/g creatinina Indice de exposición biológica: hasta 200 mg/g creatinina. |
Modificado/Vigencia |
06.02.2025 |
FV |
FACTOR V DE LA COAGULACION |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 5- Adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
70 a 140 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
FVII |
FACTOR VII DE LA COAGULACION |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 5- Adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
70 A 120 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
FVIII |
FACTOR VIII DE LA COAGULACION |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 ml de plasma citratado. Instrucciones: • 1-La extracción debe realizarse con un reposo previo de 30 minutos 2- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 3- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 4- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 5- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 6- Adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Se deberán evitar situaciones de estrés, actividad física excesiva, fumar o comer en forma abundante el día anterior al estudio. Dirigirse al laboratorio realizando la menor actividad posible (por ej. no concurrir en bicicleta) al llegar deberá permanecer en reposo, al menos 30 minutos antes de la extracción.
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| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
50 a 150 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
FVLEI |
GEN DEL FACTOR V DE LEIDEN, MUTACION G1691A, SANGRE PERIFÉRICA |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre periférica con EDTA, preferentemente en el día de obtención de la muestra. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Real Time PCR |
Valores de referencia |
La presencia de la mutación de Leyden (G1691A) en el gen del Factor V está asociada a eventos trombóticos. • Genotipo Homocigoto Normal (1691GG): No presenta riesgo. • Genotipo Heterocigoto (1691GA): Riesgo moderado. • Genotipo Homocigoto Mutado (1691AA): Riesgo aumentado. |
Modificado/Vigencia |
15.04.2024 |
FX |
FACTOR X DE LA COAGULACION |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 5- Adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
70 A 120 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
FXI |
FACTOR XI DE LA COAGULACION |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 5- Adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
50 a 150 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
FXII |
FACTOR XII DE LA COAGULACION |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 5- Adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
50 a 150 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
G6PDH |
GLUCOSA - 6 - FOSFATO DEHIDROGENASA |
Plazos |
9 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2 ml de sangre periférica con EDTA.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cinético UV - 37 ºC |
Valores de referencia |
7 a 20.5 U/g Hb |
Modificado/Vigencia |
06.03.2026 |
GAD |
ANTICUERPOS ANTI - GAD, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero refrigerado |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 17.0 UI/ml
|
Modificado/Vigencia |
09.09.2025 |
GALAN |
GALACTOSEMIA NEONATAL, GOTA DE SANGRE SECA |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras deben ser obtenidas desde las 48 horas del nacimiento hasta los 7 días de vida, como máximo.Solicitar al laboratorio el soporte de papel apropiado para la obtención y transporte de la muestra.
Método de obtención de las muestras: 1. Entibiar el talón del bebé con una compresa tibia, punzarlo con una lanceta desechable, formar con el pulgar y el índice un pliegue de la piel en lugar de la punción y oprimir para obtener las gotas de sangre 2. Embeber con la sangre cada uno de los círculos marcados en el papel hasta que la sangre se distribuya homogéneamente por toda la superficie del círculo en ambas caras del mismo. 3. Completar cuidadosamente todos los datos solicitados en el soporte y colocarlo en un envase tipo Ziploc para proteger de la humedad. Si es necesario adjuntar planilla de datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Fluoroinmunoensayo con tecnología DELFIA ® |
Valores de referencia |
Normal (Valor de corte: hasta 8,0 mg/dl). |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
GANGP |
ANTICUERPOS ANTI - GANGLIOSIDOS, PANEL (GM1, GM2, GM3, GM4, PGT1a,PGQ1b,PGD1a,PGD1b,PGD2,PGD3,PGT1b) |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero refrigerado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
INMUNODOT |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
30.08.2016 |
GAST |
GASTRINA, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero congelado (-18°C a -20°C). |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
13 a 115 pg/ml. |
Modificado/Vigencia |
13.01.2024 |
GD1B |
ANTICUERPOS ANTI - GD1B, SUERO |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 mL de suero refrigerado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunodot |
Valores de referencia |
• Negativo |
Modificado/Vigencia |
04.06.2020 |
GEN360 |
TEST GENETICO |
Plazos |
50 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio 3.0 ml de sangre entera con EDTA. No se realiza en transplantados de médula ósea. La toma de muestra se realiza todos los días, incluso sábados, domingos y feriados. Si la muestra se toma sábado, domingo o feriados mantener refrigerada en la sede y enviar el primer día hábil. El paciente debe firmar el consentimiento INFORMADO Este documento firmado debe scanearse y enviar por mail a derivaciones@manlab.com.ar aclarando el número de acceso de CENTRALAB.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio cualquier día, incluso sábados, domingos y feriados. Este estudio no se realiza en transplantados de médula ósea.
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| Método |
Secuenciación |
Valores de referencia |
N/A
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Modificado/Vigencia |
02.06.2026 |
GENOC |
HEPATITIS C VIRUS, GENOTIPOS |
Plazos |
15 Dias Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma con EDTA refrigerado (2 a 8 °C) en tubo nuevo. . |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
18.05.2026 |
GGT |
GAMMA - GLUTAMIL TRANSPEPTIDASA , SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimático-Colorimétrico (Szasz) |
Valores de referencia |
Hasta 14 días: 30 a 250 UI/l De 15 días a 1 año: 10 a 90 UI/l De 1 a 12 años: 8 a 35 UI/l De 13 a 18años: Hombres: 10 a 45 UI/l Mujeres: 8 a 30 UI/l Mayores de 19 años: Hombres: 10 a 71 UI/l Mujeres: 6 a 42 UI/l |
Modificado/Vigencia |
12.08.2026 |
GLAE |
GLOBULINA LIGADORA DE ANDROGENOS Y ESTROGENOS (GLAE), SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
•Hombre adulto: 13.0 a 57.0 nmol/l |
Modificado/Vigencia |
02.01.2025 |
GLH24 |
GLUCOSA, ORINA 24 HS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico dos alícuotas de 10 mL cada una de orina de 24 horas en sendos tubos cónicos de plástico (polipropileno o similares a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin esta información no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Enzimático - UV (Hexoquinasa) |
Valores de referencia |
Hasta 0.5 g/24hs |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
GLIAA |
ANTICUERPOS ANTI - GLIADINA, IgA, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 12 U/ml Positivo: Mayor o igual a 12 U/ml |
Modificado/Vigencia |
06.02.2025 |
GLIAG |
ANTICUERPOS ANTI - GLIADINA, IgG SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 12 U/ml Positivo: Mayor o igual a 12 U/ml |
Modificado/Vigencia |
06.02.2025 |
GLU |
GLUCOSA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método |
Enzimático - UV (Hexoquinasa) |
Valores de referencia |
Adultos: 74-100 mg/dl Niños: 60 - 100 mg/dl El valor de referencia aplica en condiciones de ayuno de 8 hs.
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Modificado/Vigencia |
21.08.2025 |
GONOC |
BUSQUEDA DE NEISSERIA GONORRHOEAE (GONOCOCO) EN HISOPADO D FAUCES Y ANAL |
Plazos |
4 Día hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios para la recolección de la muestra: Medio de transporte stuart, bajalenguas estéril, hisopo de madera estéril. FAUCES: Indicar al paciente que incline la cabeza hacia atrás y utilizando el bajalenguas, tomar una muestra por raspado de las amígdalas con el hisopo de madera y colocarlo en un tubo con medio Stuart. HISOPADO RECTAL: Tomar muestra de la zona perianal, o lesión si hubiera, y colocarlo en un tubo con medio Stuart. Conservar y transportar las muestras a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Remitir inmediatamente al laboratorio. Por otro tipo de muestra consultar. |
Instrucciones al paciente |
Suspender todo tratamiento antibiótico 72 hs antes del estudio, excepto expresa indicación médica. Si la mustra es hisopado de fauces concurrir al laboratorio en condición de ayuno de 2 o más horas, con la higiene dental habitual. |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
04.09.2024 |
GONPCR |
NEISSERIA GONORRHOEAE, ADN CUALITATIVO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba según la localización a analizar (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Se aceptan muestras de : orina (primer chorro) , hisopados endocervical uretral,conjuntival y anal, semen y biopsias . Las muestras de orina deben ser recolectadas en envases de polipropileno con tapa hermética, sin conservantes de ningún tipo. No utilizar orinas con conservantes. Para muestras de tracto genital (femenino o masculino) , conjuntiva y anales enviar la muestra en tubo con medio de transporte exclusivo. Utilizar el hisopos con punta de fibras de rayón o dacrón, con mango de plástico que viene con el kit. Respetar cuidadosamente las instrucciones sobre conservación y transporte de las muestras. La congelación de las muestras o su conservación prolongada pueden afectar la performance del método.
Instrucciones para la obtención de muestras:
ORINA (MUJERES Y VARONES): Controlar el tiempo de retención observado. Obtener una muestra de primer chorro de orina (aproximadamente 5 a 10 ml) en un envase plástico estéril (polipropileno o similares), sin conservantes de ningún tipo, con tapa a rosca. Conservar y transportar las muestras refrigeradas (4°C a 8°C) asegurarse de que el período de conservación a temperatura ambiente no exceda las 24 horas. Si el paciente además tiene solicitado un MICIN, se debe separar una porción de la orina en un tubo de khan para enviar a MANLAB y el frasco con el resto enviar a bacterio.
TRACTO GENITAL (ENDOCERVICAL O URETRAL FEMENINO O MASCULINO): Introducir un hisopo en el canal endocervical, o en la uretra haciéndolo rotar unos 15 a 30 segundos en ambas direcciones, para asegurar la obtención de células cilíndricas y cilíndrico-pavimentosas. Antes de la obtención de muestras endocervicales limpiar cuidadosamente la mucosidad excesiva del orificio cervical con un hisopo, gasa o algodón. Colocar los hisopos en tubo con el medio de transporte. Cortar el hisopo a la altura de la marca de corte, haciendo palanca sobre el tubo. Tapar los tubos herméticamente y rotular. Refrigerar a 4°C - 8°C hasta su envío dentro de las 24 hs.
MUESTRAS CONJUNTIVALES Y ANALES: Limpiar la zona y tomar la muestra con hisopo por rotación. Colocar los hisopos en el tubo con el medio de transporte. Cortar el hisopo a la altura de la marca de corte, haciendo palanca sobre el tubo. Tapar los tubos herméticamente y rotular. Refrigerar a 4°C – 8°C hasta su envío dentro de las 24 hs
SEMEN: Remitir en frasco estéril.
BIOPSIA: Remitir en solución fisiológica.
HISOPADO NASOFARINGEO: Colocar el hisopo en el tubo con el medio de transporte. Cortar el hisopo a la altura de la marca de corte, haciendo palanca sobre el tubo. Tapar los tubos herméticamente y rotular. • Refrigerar a 4°C – 8°C hasta su envío dentro de las 24 hs.
|
Instrucciones al paciente |
Cualquiera sea el caso, es necesario interrumpir cualquier tratamiento antibiótico 72 horas antes de la obtención de las muestras, excepto expresa indicación del médico. Las instrucciones específicas son diferentes según el tipo de investigación solicitado por el médico.
ORINA (MUJERES Y HOMBRES): Obtener una muestra de primer chorro de orina (aproximadamente 5 a 10 ml) en un envase plástico estéril (polipropileno o similares), sin conservantes de ningún tipo, con tapa a rosca. Conservar y transportar la muestra refrigerada (4ºC a 8ºC), asegurarse de que el período de conservación no exceda las 24 hs. En caso que también tenga solicitado un estudio de hisopado uretral debe concurrir al laboratorio con una retención urinaria de toda la noche o de dos horas como mínimo, para obtener la muestra de orina en el laboratorio.
HISOPADOS ENDOCERVICAL O URETRAL (MUJERES O VARONES) Mujeres: Programar la realización en fechas alejadas del período menstrual, excepto indicación del médico. Si está embarazada la muestra debe ser obtenida por su médico. Observar una abstinencia sexual de 72 hs, antes del estudio. Desde la noche anterior no utilizar duchas vaginales, ni aplicarse desodorantes, cremas vaginales o talco. Antes de concurrir al laboratorio realizar una meticulosa higiene vulvar (externa) con agua y jabón siempre de adelante hacia atrás, nunca en sentido inverso para evitar la contaminación. Para muestras uretrales (mujeres) no orinar durante dos horas como mínimo antes de concurrir al laboratorio. Varones: Observar una retención urinaria de toda la noche o si no es posible, de 3 horas como mínimo. Antes de concurrir al laboratorio efectuar una meticulosa higiene genital con el prepucio retraído, tres veces, con agua y jabón. Enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel.
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| Método |
PCR (Polymerase Chain Reaction) |
Valores de referencia |
N/A
|
Modificado/Vigencia |
07.05.2026 |
GOT |
ASPARTATO AMINOTRANSFERASA (ASAT)(GOT), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cinético UV IFCC |
Valores de referencia |
Adulto hombre: hasta 50 UI/l Adulto mujer: hasta 35 UI/l Neonatos: 25 a 75 UI/l Bebés: 15 a 60 UI/l
|
Modificado/Vigencia |
11.10.2016 |
GPERO |
GLUTATION PEROXIDASA, SANGRE "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA" |
Plazos |
13 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0,5 mL de sangre periférica con heparina. "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA"
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotométrico UV a 340 nm |
Valores de referencia |
4171 a 10881 U/L |
Modificado/Vigencia |
22.12.2025 |
GPT |
ALANINA AMINOTRANSFERASA (ALAT) (GPT), ACTIVIDAD, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cinético UV IFCC |
Valores de referencia |
Hasta 12 meses: 9 a 54 UI/l De 1 a 12 años: 8 a 34 UI/l De 13 a 18 años: Hombres: 9 a 42 UI/l Mujeres: 7 a 27 UI/l Mayores de 19 años: Hombres: Hasta 50 UI/l Mujeres: Hasta 35 UI/l
|
Modificado/Vigencia |
11.08.2026 |
GRAH |
GRAHAM, PRUEBA DE |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE) y entregar al paciente un frasco con SAF. |
Instrucciones al paciente |
Solicitar al laboratorio el material para la recolección de las muestras ( frasco con SAF).
Instrucciones para la recolección de las muestras: La prueba se realiza durante 5 días seguidos. Durante ese período no aplicar pomadas, o talco en la región anal ni colocarse supositorios. La recolección de cada muestra se hará por la mañana, temprano, en la cama, antes de levantarse. Usar una gasa estéril por día. Cada día, colocarse en boca abajo (decúbito ventral), separarse las nalgas, pasar una gasa doblada sobre el orificio anal externo y la zona que lo rodea, y luego colocarla en el frasco con SAF. Repetir durante cinco días seguidos. Rotular el frasco con su nombre y apellido y remitir al laboratorio.
|
| Método |
Microscopía. |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
11.02.2026 |
GRU |
GRUPO SANGUÍNEO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de sangre con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Aglutinación. |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
H1AG |
HERPES I VIRUS, ANTIGENO VIRAL "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA" |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Vesícula (Limpiar el área con solución fisiológica. Destechar la vesícula con hisopo flexible, absorber el líquido y con el mismo hisopo raspar para obtener células de la base de la lesión. Evitar el sangrado)- Lesión costrosa (Aflojar y levantar la costra) Colocar el hisopo en solución fisiológico. Conservar a temperatura ambiente. Remitir antes de las 24 hs. "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA"
|
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Inmunofluorescencia directa |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
07.01.2025 |
H2AG |
HERPES II VIRUS, ANTIGENO VIRAL "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA" |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Vesícula (Limpiar el área con solución fisiológica. Destechar la vesícula con hisopo flexible, absorber el líquido y con el mismo hisopo raspar para obtener células de la base de la lesión. Evitar el sangrado)- Lesión costrosa (Aflojar y levantar la costra) Colocar el hisopo en solución fisiológico. Conservar a temperatura ambiente. Remitir antes de las 24 hs. "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA"
|
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Inmunofluorescencia directa |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
07.01.2025 |
HAMU |
HORMONA ANTI - MULLERIANA, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Varones : Menor de 15 dias: 10.6 a 53.4 ng/ml 15 dias – 1 año: 35.2 a 95.1 ng/ml 1 – 4 años: 50.4 a 89.4 ng/ml 4 – 7 años: 43.3 a 79.3 ng/ml 7 – 9 años: 32.8 a 61.3 ng/ml Mayor de 9 años: Tanner I 27.2 a 42.6 ng/ml Tanner II 15.0 a 29.6 ng/ml Tanner III 1.7 a 20.3 ng/ml Tanner IV-V 2.0 a 11.3 ng/ml Mayores de 22 años: 0.6 a 17.8 ng/ml
Mujeres : Prepúberes:Hasta 10ng/ml 12 – 17 años: 0.4 a 11.2 ng/ml 18 – 25 años: 1.0 a 15.6 ng/ml 26 – 30 años: 0.5 a 10.0 ng/ml 31 – 35 años: 0.7 a 10.2 ng/ml 36 – 40 años: 0.1 a 8.7 ng/ml 41 – 45 años: Hasta 4.5 ng/ml 46 – 50 años: Hasta 1.9 ng/ml Mayores de 51: Hasta 0.3 ng/ml
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Modificado/Vigencia |
11.07.2025 |
HAPTO |
HAPTOGLOBINA, SUERO |
Plazos |
3 Días Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico |
Valores de referencia |
Hasta 14 días: 5.0 a 60.0 mg/dl De 15 días a 11 meses: 10.0 a 100.0 mg/dl De 1 a 6 años: 30.0 a 160.0 mg/dl De 7 a 18 años: 50.0 a 180.0 mg/dl Mayores de 19 años: 30.0 a 200.0 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
19.08.2026 |
HAVG |
HEPATITIS A VIRUS, ANTICUERPOS TOTALES, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 20 Positivo: Mayor o igual de 20 |
Modificado/Vigencia |
02.01.2025 |
HAVM |
HEPATITIS A VIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.8 Indeterminado: 0,8 a 1.2 Positivo: Mayor o igual a 1.2 |
Modificado/Vigencia |
02.01.2025 |
HBA1C |
HEMOGLOBINA GLICOSILADA (A1C) POR HPLC , SANGRE |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3 ml de sangre con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
4.8 a 5.9 % (IFCC: 30 a 41 mmol/mol) |
Modificado/Vigencia |
20.07.2023 |
HBA2C |
HEMOGLOBINA A2, CROMATOGRAFIA, SANGRE |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre periférica con EDTA.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroforesis capilar |
Valores de referencia |
2.2 a 3.2 %. |
Modificado/Vigencia |
27.06.2025 |
HBCG |
HEPATITIS B VIRUS, CORE, ANTICUERPOS TOTALES, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 1.0 |
Modificado/Vigencia |
16.07.2024 |
HBCM |
HEPATITIS B VIRUS, CORE, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: <0,8 Indetermindado: >=0,8 y <1,0 Positivo: >1,0 |
Modificado/Vigencia |
13.09.2023 |
HBCYS |
ESTUDIO MOLECULAR DE HEMOGLOBINAS C Y S |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio como mínomo 8.0 ml de sangre con EDTA en tubo estéril.
|
Instrucciones al paciente |
No requiera ayuno |
| Método |
PCR-Secuenciación |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
13.02.2026 |
HBEAC |
HEPATITIS B VIRUS, ANTICUERPOS ANTI E, SUERO |
Plazos |
1 Día hábi |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.8 Indeterminado: De 0.8 a 1.2 Positivo: Mayor o igual de 1.2
|
Modificado/Vigencia |
02.01.2025 |
HBEAG |
HEPATITIS B VIRUS, ANTÍGENO E, SUERO |
Plazos |
1 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 1.0 Positivo: Mayor o igual a 1.0 |
Modificado/Vigencia |
02.01.2025 |
HBELE |
HEMOGLOBINA, ELECTROFORESIS |
Plazos |
5 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroforesis capilar |
Valores de referencia |
•Hemoglobina A1: 96.7 a 97.8 % Hemoglobina A2: 2.2 a 3.2 % Hemoglobina Fetal: 0.0 a 0.5 % |
Modificado/Vigencia |
02.12.2024 |
HBFC |
HEMOGLOBINA FETAL, CUANTIFICACION, SANGRE |
Plazos |
7 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 5,0 mL de sangre periférica con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroforesis capilar |
Valores de referencia |
0 - 0.5 % |
Modificado/Vigencia |
13.02.2014 |
HBSAC |
HEPATITIS B VIRUS, ANTÍGENO DE SUPERFICIE, ANTICUERPOS, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: <10 Positivo: >=10 |
Modificado/Vigencia |
15.08.2023 |
HBSAG |
HEPATITIS B VIRUS, ANTIGENO DE SUPERFICIE, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 1.0 Positivo: Mayor o igual de 1.0 |
Modificado/Vigencia |
02.01.2025 |
HCV |
HEPATITIS C VIRUS, ANTICUERPOS TOTALES, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.99 Positivo: Mayor de 1.00 |
Modificado/Vigencia |
16.08.2023 |
HDL |
COLESTEROL HDL (High Density Lipoprotein Cholesterol), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico Enzimático Homogéneo |
Valores de referencia |
Hasta 19 años: Mayor de 45 mg/dl Mayores de 19 años: Hombres: Mayor a 65 mg/dl Mujeres: Mayor a 55 mg/dl
|
Modificado/Vigencia |
13.08.2026 |
HDVG |
HEPATITIS DELTA VIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.9
|
Modificado/Vigencia |
04.07.2024 |
HE4 |
PROTEINA EPIDIDIMAL HUMANA (HE4) |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Mujeres Premenopáusicas: Hasta 70 pmol/l Mujeres Posmenopáusicas: Hasta 140 pmol/l |
Modificado/Vigencia |
02.05.2025 |
HELIA |
HELICOBACTER PYLORI, ANTICUERPOS IgA, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.90 U/ml Dudoso: 0.90 a 1.10 U/ml Positivo: Mayor a 1.10 U/ml |
Modificado/Vigencia |
12.06.2024 |
HELIG |
HELICOBACTER PYLORI, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.90 U/ml Dudoso :0.90 a 1.10 U/ml Positivo: Mayor a 1.10 U/ml |
Modificado/Vigencia |
12.06.2024 |
HELIM |
HELICOBACTER PYLORI, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 mL de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
HEM |
HEMOGRAMA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2,0 ml de sangre con EDTA. Es indispensable que el tubo tenga tapón de goma. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Analizador Mindray 6800 plus con tecnología SF Cube |
Valores de referencia |
Recuento de Eritrocitos (millones/mm3) 0 a 14 días: 3.60 a 6.60 15 días a 2 años : 2.70 a 5.40 3 a 12 años: 3.90 a 5.20 Mayor de 12 años: Hombre: 4.50 a 5.90, Mujer: 4.00 a 5.20
Hematocrito (%) 0 a 14 días: 39.0 a 65.0 15 días a 2 años: 28.0 a 63.0 3 a 12 años: 34.0 a 45.0 Mayor de 12 años : Hombre: 37.0 a 53.0 , Mujer: 36.0 a 46.0
Hemoglobina (g/dl) 0 a 14 días: 12.5 a 21.8 15 días a 2 años: 9.0 a 14.0 3 a 12 años: 11.5 a 15.5 Mayor de 12 años: Hombre 13.0 a 17.5, Mujer: 11.8 a 14.8
Volumen corpuscular medio (fL) 0 a 14 días: 86.0 a 121.0 15 días a 2 años: 75.0 a 123.0 3 a 12 años: 75.0 a 95.0 Mayor de 12 años: Hombre: 80.0 a 100.0, Mujer: 78.0 a 102.0
Hemoglobina corpuscular media (pg) 0 a 14 días: 28.0 a 40.0 15 días a 2 años: 25.0 a 40.0 3 a 12 años: 24.0 a 33.0 Mayor de 12 años: 25.0 a 35.0
Concentración de Hemoglobina corpuscular media (g/dl) 0 a 2 años: 28.0 a 37.0 Mayor de 2 años: 31.0 a 37.0
Ancho de distribución eritrocitaria (RDW): Hasta 14.0
Plaquetas (miles/mm3 ): 150 a 440
Volumen plaquetario medio (fl): 8.5 a 12.5
Leucocitos totales (miles/mm3 ): 0 a 14 días: 5.0 a 20.0 15 días a 2 años: 5.0 a 19.5 3 a 12 años: 4.5 a 15.5 Mayor de 12 años: Hombre: 3.8 a 10.6, Mujer: 3.6 a 11.0
Fórmula leucocitaria (%) Neutrófilos en cayado: 0 a 12 años: 0 a 2.0 Mayor de 12 años: 0 a 1.0 Neutrófilos segmentados: 0 a 7 días: Hasta 56 8 días a 1 año: 20.0 a 40.0 2 a 5 años: 32.0 a 52.0 6 a 20 años: 40.0 a 60.0 Mayor de 20 años: Hombre: 44.0 a 70.0 Mujer: 43.0 a 71.0 Eosinófilos: 0 a 12 años: 1.0 a 5.0 Mayor de 12 años: 0 a 7.0 Basófilos: Hasta 1,0 Linfocitos: 0 a 1 año: 50.0 a 70.0 2 a 5 años: 40.0 a 60.0 6 a 12 años: 25.0 a 45.0 Mayor de 12 años: Hombre: 20.0 a 44.0 Mujer: 20.0 a 46.0 Monocitos: 0 a 12 años: 2.0 a 8.0 Mayor de 12 años: Hombre: 5.0 a 11.0 Mujer: 4.0 a 10.0
|
Modificado/Vigencia |
31.03.2026 |
HEMOA |
HEMOCULTIVO ADULTO STANDARD |
Plazos |
5 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Jeringas y agujas estériles, guantes, Solución antiséptica, Alcohol 70% o solución de clorexidina, Frascos de hemocultivo STANDARD AEROBIC (Azul). Procedimiento: Se realiza lavado de manos con jabón antiséptico o gel alcohólico Colocarse guantes (estériles, si la institución o el caso particular así lo requiere) Se preparan jeringa y aguja estériles sobre una gasa estéril, cuidando que la aguja tenga el correspondiente capuchón. Se elige la vena de punción. Se desinfecta la piel de la zona de punción con solución de alcohol 70, con un algodón embebido con el desinfectante SIN FROTAR, realizando círculos concéntricos desde adentro hacia fuera Se deja secar 30-60 segundos. Una vez desinfectada la piel no debe palparse nuevamente la vena. De ser necesario, se embebe el dedo del guante en solución desinfectante, se espera a que seque y se palpa la vena a punzar. Se descontamina el tapón de goma de los frascos de hemocultivo con una gasa estéril embebida en alcohol 70. Se extrae sangre por punción venosa, 8 a 10 ml (pacientes adultos) y de 2 a 5 ml (pacientes pediátricos). En pacientes neonatos, es aceptable 0.5 ml. Se inoculan los frascos sin cambiar la aguja y sin invertir el frasco cuidando de no introducir aire ni producir espuma y se homogeneizan suavemente luego de haber extraído la aguja. Se descartan los elementos utilizados, según normas de bioseguridad. Se remueve de la piel el exceso de solución iodada con un algodón con alcohol. Se realiza lavado de manos con jabón antiséptico o gel alcohólico Tiempos de espera para la actividad óptima de los antisépticos: 30 segundos IMPORTANTE: CUANDO LA MUESTRA DE SANGRE OBTENIDA EN ESTAS CONDICIONES REQUIERA LA REALIZACION DE EXAMENES DE LABORATORIO GENERAL, TENER PRESENTE QUE EL FRASCO DE HEMOCULTIVO DEBE SER INOCULADO EN PRIMER LUGAR. Se envían los frascos de inmediato al laboratorio (Hasta su envio conservarlos a Temperatura ambiente). Se rotulan con: NOMBRE y APELLIDO DEL PACIENTE – HABITACION – N° DE MUESTRA |
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
Cultivo Automatizado |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
24.04.2019 |
HEMOANA |
HEMOCULTIVO ANAEROBIO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Jeringas y agujas estériles, guantes, Solución antiséptica, Alcohol 70% o solución de clorexidina, Frascos de hemocultivo PLUS ANAEROBIC (Naranja). Procedimiento: Se realiza lavado de manos con jabón antiséptico o gel alcohólico Colocarse guantes (estériles, si la institución o el caso particular así lo requiere) Se preparan jeringa y aguja estériles sobre una gasa estéril, cuidando que la aguja tenga el correspondiente capuchón. Se elige la vena de punción. Se desinfecta la piel de la zona de punción con solución de alcohol 70, con un algodón embebido con el desinfectante SIN FROTAR, realizando círculos concéntricos desde adentro hacia fuera Se deja secar 30-60 segundos. Una vez desinfectada la piel no debe palparse nuevamente la vena. De ser necesario, se embebe el dedo del guante en solución desinfectante, se espera a que seque y se palpa la vena a punzar. Se descontamina el tapón de goma de los frascos de hemocultivo con una gasa estéril embebida en alcohol 70. Se extrae sangre por punción venosa, 8 a 10 ml (pacientes adultos) y de 2 a 5 ml (pacientes pediátricos). En pacientes neonatos, es aceptable 0.5 ml. Se inoculan los frascos sin cambiar la aguja y sin invertir el frasco cuidando de no introducir aire ni producir espuma y se homogeneizan suavemente luego de haber extraído la aguja. Se descartan los elementos utilizados, según normas de bioseguridad. Se remueve de la piel el exceso de solución iodada con un algodón con alcohol. Se realiza lavado de manos con jabón antiséptico o gel alcohólico Tiempos de espera para la actividad óptima de los antisépticos: 30 segundos IMPORTANTE: CUANDO LA MUESTRA DE SANGRE OBTENIDA EN ESTAS CONDICIONES REQUIERA LA REALIZACION DE EXAMENES DE LABORATORIO GENERAL, TENER PRESENTE QUE EL FRASCO DE HEMOCULTIVO DEBE SER INOCULADO EN PRIMER LUGAR. Se envían los frascos de inmediato al laboratorio (Hasta su envio conservarlos a Temperatura ambiente). Se rotulan con: NOMBRE y APELLIDO DEL PACIENTE – HABITACION – N° DE MUESTRA |
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
Hemocultivo automatizado |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
24.04.2019 |
HEMOL |
HEMOCULTIVO POR LISIS |
Plazos |
42 Días |
Indicaciones para el laboratorio |
Son solicitados expresamente en la orden médica ya que las muestras se obtienen en número y frecuencia establecidos por el médico. Se obtiene la muestra de acuerdo a las instrucciones generales para toma de muestras de hemocultivo. Se inoculan para cada muestra 1- 5 ml de sangre en frasco MICOLYTIC . Se envían de inmediato al laboratorio |
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
Hemocultivo automatizado |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
28.02.2018 |
HEMOR |
HEMOCULTIVO ADULTO CON RESINA |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Jeringas y agujas estériles, guantes, Solución antiséptica, Alcohol 70% o solución de clorexidina, Frascos de hemocultivo PLUS AEROBIC (Gris). Procedimiento: Se realiza lavado de manos con jabón antiséptico o gel alcohólico Colocarse guantes (estériles, si la institución o el caso particular así lo requiere) Se preparan jeringa y aguja estériles sobre una gasa estéril, cuidando que la aguja tenga el correspondiente capuchón. Se elige la vena de punción. Se desinfecta la piel de la zona de punción con solución de alcohol 70, con un algodón embebido con el desinfectante SIN FROTAR, realizando círculos concéntricos desde adentro hacia fuera Se deja secar 30-60 segundos. Una vez desinfectada la piel no debe palparse nuevamente la vena. De ser necesario, se embebe el dedo del guante en solución desinfectante, se espera a que seque y se palpa la vena a punzar. Se descontamina el tapón de goma de los frascos de hemocultivo con una gasa estéril embebida en alcohol 70. Se extrae sangre por punción venosa, 8 a 10 ml (pacientes adultos) y de 2 a 5 ml (pacientes pediátricos). En pacientes neonatos, es aceptable 0.5 ml. Se inoculan los frascos sin cambiar la aguja y sin invertir el frasco cuidando de no introducir aire ni producir espuma y se homogeneizan suavemente luego de haber extraído la aguja. Se descartan los elementos utilizados, según normas de bioseguridad. Se remueve de la piel el exceso de solución iodada con un algodón con alcohol. Se realiza lavado de manos con jabón antiséptico o gel alcohólico Tiempos de espera para la actividad óptima de los antisépticos: 30 segundos IMPORTANTE: CUANDO LA MUESTRA DE SANGRE OBTENIDA EN ESTAS CONDICIONES REQUIERA LA REALIZACION DE EXAMENES DE LABORATORIO GENERAL, TENER PRESENTE QUE EL FRASCO DE HEMOCULTIVO DEBE SER INOCULADO EN PRIMER LUGAR. Se envían los frascos de inmediato al laboratorio (Hasta su envio conservarlos a Temperatura ambiente). Se rotulan con: NOMBRE y APELLIDO DEL PACIENTE – HABITACION – N° DE MUESTRA |
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
Hemocultivo automatizado |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
24.04.2019 |
HEPA |
HEPATOGRAMA, SUERO (Bilirrubina total y directa, Colesterol total, Proteínas totales, Asparta |
Plazos |
1 Dia hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
•Métodos: especificados por separado en cada uno de los componentes del perfil. |
Valores de referencia |
Valores de Referencia: especificados por separado en cada uno de los componentes del perfil. |
Modificado/Vigencia |
11.10.2016 |
HER1G |
HERPES I VIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.9 |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
HER2G |
HERPES II VIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
2 Dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.9 |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
HER6G |
HERPES 6 VIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
13.07.2026 |
HER6M |
HERPES 6 VIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo (Valor de corte 1/16) |
Modificado/Vigencia |
13.07.2026 |
HER6U |
HERPES 6 VIRUS, ADN |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenidos 3.0 ml de plasma con EDTA; o 1.0 ml de líquido cefalorráquideo en tubo estéril.
|
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
13.05.2024 |
HEV |
HEPATITIS E VIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.9
|
Modificado/Vigencia |
18.05.2019 |
HEVM |
HEPATITIS E VIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 1.0
|
Modificado/Vigencia |
18.05.2019 |
HEXAC |
HEXACLOROBENCENO, SANGRE PERIFÉRICA |
Plazos |
9 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 10 ml de sangre periférica con heparina. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cromatografía gaseosa |
Valores de referencia |
•Hasta 0,3 ug/dl •Indice de exposición biológica: Hasta 30 ug/dl |
Modificado/Vigencia |
06.02.2025 |
HEXD |
2,5 - HEXANODIONA, ORINA |
Plazos |
12 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Cromatografía gaseosa |
Valores de referencia |
Indice biológico de exposición: Hasta 0,4 mg/l |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
HIDAG |
HIDATIDOSIS, ANTICUERPOS IGG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 mL de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Hemoaglutinación Indirecta |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
22.11.2019 |
HIDEL |
HIDATIDOSIS, ANTICUERPOS IGG, SUERO (ELISA) |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1 ml de suero congelado (-18°C a -20°C).
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
|
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 9 |
Modificado/Vigencia |
28.04.2025 |
HIDWB |
HIDATIDOSIS, AC, WESTERN BLOT |
Plazos |
30 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero refrigerado. IMPORTANTE: Enviar resumen de historia clínica y datos del paciente. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
|
| Método |
WESTERN BLOT |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
28.04.2025 |
HIP |
ÁCIDO HIPURICO, ORINA |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 2,0 ml de orina espontánea. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno de la semana laboral.
|
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica: Hasta 1.6 g/g creatinina.
|
Modificado/Vigencia |
13.01.2024 |
HISCA |
HISTOPLASMA CAPSULATUM, ANTICUERPOS, SUERO |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero en tubo estéril.¨
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunodifusión radial |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
03.01.2025 |
HIST |
HISTAMINA, PLASMA "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA" |
Plazos |
17 Días Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio 2.0 ml como volumen mínimo de Plasma con EDTA . Enviar datos completos del paciente, nombre, apellido, DNI y fecha de nacimiento. Extraer 3 ml de sangre en uno o más tubos con tapón de lavanda (EDTA). Enfriar inmediatamente en hielo. Centrifugar a 1500 rpm durante 10 minutos a 4 grados C. La centrifugación debe realizarse dentro de los 20 minutos posteriores a la recolección. Retire con cuidado 1 ml de plasma EDTA de la parte superior del tubo. Congelar y enviar congelado en un vial de plástico.
Práctica solicitable solo en Sede Palermo Hollygood
"MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA"
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno |
| Método |
Ensimoinmunoensayo |
Valores de referencia |
Menor de 10 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
19.05.2026 |
HISTO |
ANTICUERPOS ANTI - HISTONA, SUERO |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
HIV |
HIV, ANTICUERPOS, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
No Reactivo |
Modificado/Vigencia |
03.01.2025 |
HIVAG |
HIV, ANTíGENO P24, SUERO |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
No reactivo. |
Modificado/Vigencia |
04.05.2021 |
HIVGE |
HIV, GENOTIPOS, SANGRE PERIFÉRICA |
Plazos |
23 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 5 mL de plasma con EDTA (si dispone de tubo con EDTA gel). Si no dispone del mismo, separar el plasma y enviar congelado (-18°C a -20°C). Consignar información sobre la medicación que recibe el paciente y el resultado de la última carga viral. Es indispensable para el procesamiento de la muestra, que se envie completa la planilla adjunta. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Polymerase Chain Reaction) - SECUENCIACIÓN |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
10.11.2023 |
HIVPC |
HIV, ARN CUALITATIVO, PLASMA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma con EDTA refrigerado (2 a 8 °C) en tubo nuevo , obtenido por centrifugacion a 800-1600 g x 20 minutos.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
No Detectable Límite de detección: 20 copias/ml. |
Modificado/Vigencia |
19.11.2025 |
HIVWB |
HIV, ANTICUERPOS, WESTERN BLOT, SUERO GP160 (Glicoproteína de envoltura); GP120 (Glicoprote&a |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Western Blot |
Valores de referencia |
No reactivo |
Modificado/Vigencia |
24.05.2017 |
HLA2/8 |
HLA-DQ ENFERMEDAD CELIACA |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir a la División Analítica 3 ml de sangre periférica con EDTA. NOTA: Se puede tomar el día sábado siempre y cuando el lunes siguiente no sea feriado.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. NOTA: Se puede tomar el día sábado siempre y cuando el lunes siguiente no sea feriado.
|
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N.A.
|
Modificado/Vigencia |
19.06.2024 |
HLADP |
FENOTIPO, HLA-DP, SANGRE |
Plazos |
25 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico en el día 3 ml como mínimo de sangre periférica con EDTA.
No se reciben muestras los días viernes, sábados ni vísperas de feriado. Importante : de ser posible enviar copia de la orden medica y diagnostico. “Consultar con derivaciones y GBG antes de ingresar”
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
Concurrir al Laboratorio de lunes a jueves. No se toman muestras días feriados ni vísperas de feriados
|
| Método |
PCR (Polymerase Chain Reaction) |
Valores de referencia |
N.A |
Modificado/Vigencia |
14.05.2026 |
HLADQ |
FENOTIPO, HLA-DQ, SANGRE |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir a la División Analítica 3 ml como mínimo de sangre periférica con EDTA.
No se reciben muestras los días viernes, sábados ni vísperas de feriado.
Importante :En caso de transplantes aclarar si llegarán con posterioridad muestras de donantes (si los envian en distintas fechas) y grado de parentesco.
“Consultar con derivaciones y GBG antes de ingresar”
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
Concurrir al Laboratorio de lunes a jueves. No se toman muestras días feriados ni vísperas de feriados
|
| Método |
PCR-SSO (Luminex) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
14.05.2026 |
HLCW6 |
FENOTIPO, HLA-CW6, SANGRE |
Plazos |
25 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico en el día 10 ml de sangre periférica con EDTA.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Polymerase Chain Reaction) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
24.02.2025 |
HNMT |
HISTAMINOSIS. GEN HNMT |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio 3.0 ml de sangre con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno |
| Método |
PCR-Secuenciación |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
03.06.2026 |
HOMAF |
HOMA, ÍNDICE |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero libre de hemólisis |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método |
Glucemia: Glucosa OxidasaInsulina: Inmunométrico por Quimioluminiscencia. |
Valores de referencia |
•Normal: Menor de 1 •Dudoso: 1 a 3.5 •Insulino-resistencia: Mayor de 3.5 |
Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
HOMO |
HOMOCISTEÍNA, PLASMA |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml plasma con EDTA o heparina. Es importante separar el plasma de las células lo antes posible después de la obtención de la muestra debido a que la síntesis de homocisteína puede tener lugar en los GR después de la toma de muestra. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
3.7 a 13.9 umol/l |
Modificado/Vigencia |
04.06.2024 |
HONGO |
MICOLÓGICO, CULTIVO |
Plazos |
20 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios para la obtención de muestras: Muestras de escamas de piel y faneras: Alcohol 96%, 2 Portaobjetos estérilizados, Mango de bisturí, hojas de bisturí descartables. Papel blanco para envolver los portaobjetos. Muestras de pelo: Pinzas de depilar esterilizadas.
Procedimientos para la obtención de muestras: Lesiones de piel (tronco, extremidades, ingle, pliegues cutáneos): Colocar un portaobjetos con la cara estéril hacia arriba inmediatamente por debajo de la lesión;con el bisturi raspar el borde externo de la lesión tratando de desprender la mayor cantidad posible de escamas. Juntar las escamas en el centro del portaobjetos y cubrir con el segundo portaobjetos estéril. Envolver ambos portaobjetos con el papel blanco sin colocar ningún tipo de cinta o etiqueta adhesiva pegada al vidrio Identificar en el papel el tipo de muestra y los datos de la persona. Lesiones en cuero cabelludo en niños (tiñas): Con la pinza de depilar obtener pelos y colocar entre dos portaobjetos estériles. Entre otros dos portaobjetos igualmente estériles se colocan las escamas obtenidas por raspado de la lesión. Envolver por separado cada par de portaobjetos con papel blanco y rotularlos indicando tipo de muestra e identificación de la persona. Lesiones en uñas: En presencia de hiperqueratosis subungueal, con la hoja de bisturí esteril raspar el material acumulado debajo de la uña, entre la uña y el dedo. En las onicomicosis superficiales raspar la tabla externa de la uña (en caso de compromiso de toda la tabla ungueal obtener material de raspado del mayor número posible de capas córneas). Si se observa perionixis, raspar la zona de unión entre la cutícula y la uña, introduciendo cuidadosamente la hoja de bisturí, por debajo de la cutícula y juntar escamas. Colocar los materiales obtenidos entre dos portaobjetos estériles (por separado para cada zona de obtención de materiales), envolverlos con el papel blanco, identificando el tipo de muestra y la persona. No se aceptaran trozos de uñas ni lechos ungueales. |
Instrucciones al paciente |
Preparación para el estudio: Suspender todo medicamento antifúngico local o sistémico 5 días antes de la toma de la muestra, excepto expresa indicación médica. Para lesiones o manchas de la piel: En el día anterior a la obtención de muestra lavar la zona con agua y jabón blanco y hacer 3 baños de la zona afectada con agua tibia y sal. Para lesiones en uñas de las manos: No cortarlas desde la semana anterior y cepillar 3 veces al día durante tres días con agua y jabón blanco; durante esos 3 días no usar esmalte de uñas. En el día anterior a la toma de muestra realizar un baño con agua tibia y sal. Para lesiones en uñas de los pies: No cortarlas desde la semana anterior y cepillar 3 veces al día durante tres días con agua y jabón blanco; durante esos días no usar esmalte de uñas; En el día anterior a la toma de la muestra realizar un baño con agua tibia y sal. Usar medias de algodón limpias y calzado cerrado hasta concurrir al laboratorio. Para lesiones en cuero cabelludo: No utilizar champú con antimicóticos desde 5 días antes del estudio.
|
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
11.02.2026 |
HPIRC |
1 - HIDROXIPIRENO, ORINA |
Plazos |
20 Días Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina espontánea en 2 tubos plásticos. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
BEI (Indice de Exposición Biológica): Hasta 2,0 ug/g creatinina.
|
Modificado/Vigencia |
26.07.2024 |
HPPCR |
HPV (PAPILOMAVIRUS) GENOTIPO POR PCR |
Plazos |
17 dias habies |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras empleadas para la determinación de HPV solo puede ser cepillado endocervical * Se debera solicitar el medio de transporte al laboratorio de referencia. * No utilizar otro medio de transporte ni solución salina * Una vez obtenida la muestra ,refrigerar a temperatura de 4°C a 8°C, antes de ser enviada al laboratorio. * Transportar a temperatura ambiente (18°C a 25°C).
|
Instrucciones al paciente |
Tres días previos a la realización del estudio no se coloque cremas, óvulos ni mantenga relaciones sexuales. Una vez obtenida la muestra por el médico mantener a temperatura de heladera (4°-8°C) y enviarla al Laboratorio lo más rápido posible. La muestra debe ser remitida al laboratorio con el citobrush. |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
13.06.2024 |
HSVUR |
HERPES SIMPLEX VIRUS 1 Y 2, ADN |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir la laboratorio analítico 1.0 de LCR refrigerado en tubo estéril con tapa a rosca. Plasma con EDTA estéril 2.0 ml Hisopados de lesiones en 0.5 1.0 ml solución fisiológica estéril Biopsias: Remitir en tubo seco estéril.
|
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
27.06.2025 |
HTLV1 |
HTLV1 (HUMAN T-CELL LYMPHOTROPHIC VIRUS I Y II), ANTICUERPOS TOTALES, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
07.05.2021 |
HU |
ANTICUERPOS ANTI-NUCLEO NEURONAL (ANTI HU) |
Plazos |
20 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia Indirecta |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
28.03.2023 |
HUD |
HUDDLESON, REACCION DE |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0,5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Aglutinación |
Valores de referencia |
•Sospecha de enfermedad: Títulos 1/40 o 1/80 •Confirmatorios con sintomatología clínica: Títulos mayores de 1/80 •Concluyentes: Títulos mayores de 1/320 |
Modificado/Vigencia |
06.02.2025 |
HV12M |
HERPES I y II VIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor o igual de 0.9 |
Modificado/Vigencia |
24.09.2025 |
IA2 |
ANTICUERPOS ANTI IA2 (ICA- 512), SUERO |
Plazos |
12 Días hábiles. |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 28.0 U/ml |
Modificado/Vigencia |
07.03.2025 |
IBPCR |
INFLUENZA B ARN |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N 95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con: • Hisopos estériles con punta de poliéster o dacron, nunca de madera con punta de algodón. • Tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0,5 mL (mínimo) y 1,0 mL (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras no se hayan conservado refrigeradas, las que haya sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias. Instrucciones: SECRECIONES NASALES O FARÍNGEAS • Obtener las muestras de los orificios nasales profundos (hisopado nasal) o de la faringe (hisopado faríngeo).Por cada tipo de muestra (nasal o faríngea) recolectar dos hisopos. • Colocar ambos hisopos en el tubo con solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente y rotular. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos (S6). ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARÍNGEOS O BRONQUIALES • Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos (S7). |
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
02.05.2024 |
ICA |
ANTICUERPOS ANTI - ISLOTE DE LANGERHANS, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero congelado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 28 U/l |
Modificado/Vigencia |
18.06.2024 |
ICC |
INMUNOCOMPLEJOS CIRCULANTES, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Elisa |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 16 ug-Eq/ml Indeterminado 16-18 ug-Eq/ml Positivo: Mayor a 18 ug-Eq/ml |
Modificado/Vigencia |
01.09.2025 |
IEF |
INMUNOELECTROFORESIS, SUERO |
Plazos |
15 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Microinmunoelectroforesis en acetato de celulosa |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
21.02.2012 |
IEFME |
INMUNOELECTROFORESIS, ANTICUERPOS MONOESPECIFICOS, SUERO |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoelectroforesis con antisueros monoespecíficos, anti cadenas pesadas gamma, alfa y mu. |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
21.02.2012 |
IEFOR |
ORINA, INMUNOELECTROFORESIS |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 10 mL de orina de 24 horas en tubo plástico (polipropileno o similares) a temperatura ambiente (18°C a 25°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
|
| Método |
Microinmunoelectroforesis en acetato de celulosa |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
IGA |
INMUNOGLOBULINA A , SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
Hasta 14 días: 1.3 a 12 mg/dl De 15 días a 1 año: 5 a 62 mg/dl De 1 a 2 años: 14 a 108 mg/dl De 2 a 3 años: 22 a 151 mg/dl De 4 a 6 años: 35 a 216 mg/dl De 7 a 9 años: 49 a 280 mg/dl De 10 a 16 años: 63 a 389 mg/dl Mayores de 17 años: 70 a 400 mg/dl
|
Modificado/Vigencia |
19.08.2026 |
IGASA |
INMUNOGLOBULINA A SECRETORIA, SALIVA |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Trasvasar la saliva a un tubo de Khan plástico (volumen mínimo 0.50 ml) y remitirla al Laboratorio de proceso. |
Instrucciones al paciente |
Salivar en un frasco estéril de manera de cubrir el fondo del mismo, aproximadamente 2 ml de saliva. Mantener refrigerado hasta entregarlo en el laboratorio. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
7.0 a 30.0 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
03.01.2025 |
IGD |
INMUNOGLOBULINA D, SUERO |
Plazos |
10 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmnunodifusión radial cuantitativa |
Valores de referencia |
1.0 a 4.5 mb/dl |
Modificado/Vigencia |
23.09.2026 |
IGE |
INMUNOGLOBULINA E , SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 1 año: Hasta 20 UI/ml 1 a 4 años: Hasta 100 UI/ml 5 a 10 años: Hasta 150 UI/ml 11 a 15 años: Hasta 170 UI/ml Mayores de 16 años: Hasta 158 UI/ml |
Modificado/Vigencia |
15.01.2024 |
IGG |
INMUNOGLOBULINA G, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
Hasta 14 días: 320 a 1210 mg/dl De 15 días a 1 año: 148 a 631 mg/dl De 1 a 3 años: 317 a 994 mg/dl De 4 a 9 años: 501 a 1170 mg/dl De 10 a 18 años: 595 a 1310 mg/dl Mayores de 19 años: 700 a 1600 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
19.08.2026 |
IGG4 |
INMUNOGLOBULINA G SUBCLASE 4, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Turbidimetría |
Valores de referencia |
IGG4: Hasta 2 años: 5 - 784 mg/l De 2 a 4 años: 10 – 537 mg/l De 4 a 6 años: 18 – 1125 mg/l De 6 a 8 años: 4 – 992 mg/l De 8 a 10 años: 19 – 932 mg/l De 10-12 años: 16 – 1150 mg/l De 12 a 14 años: 37 – 1360 mg/l De 14 a 18 años: 110 – 1570 mg/dl Mayores de 18 años: 39 – 864 mg/l |
Modificado/Vigencia |
24.09.2026 |
IGM |
INMUNOGLOBULINA M, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
Hasta 14 días: 3 a 32 mg/dl 15 días a 2 meses: 10 a 67 mg/dl De 3 a 11 meses: 14 a 82 mg/dl De 1 a 18 años: Mujeres: 45 a 178 mg/dl Hombres: 36 a 144 mg/dl Mayores de 19 años: 40 a 230 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
19.08.2026 |
IGSC |
INMUNOGLOBULINA G, SUBCLASES, SUERO (IgG1, IgG2, IgG3, IgG4) |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Turbidimetría |
Valores de referencia |
IGG1: Hasta 2 años: 1940 - 8420 mg/l De 2 a 4 años: 3150 – 9450 mg/l De 4 a 6 años: 3060 – 9450 mg/l De 6 a 8 años: 2880 – 9180 mg/l De 8 a 10 años:4320 – 10200 mg/l De 10-12 años: 4230 – 10600 mg/l De 12 a 14 años: 3420 – 11500 mg/l De 14 a 18 años: 3150 – 8550 mg/l Mayores de 18 años: 3824 – 9286 mg/l IGG2: Hasta 2 años: 225 - 3000 mg/l De 2 a 4 años: 360 – 2250 mg/l De 4 a 6 años: 605 – 3450 mg/l De 6 a 8 años: 440 – 3750 mg/l De 8 a 10 años: 720 – 4300 mg/l De 10-12 años: 760 – 3550 mg/l De 12 a 14 años: 1000 – 4550 mg/l De 14 a 18 años: 640 – 4950 mg/l Mayores de 18 años: 2418 – 7003 mg/l IGG3: Hasta 2 años: 186 - 853 mg/l De 2 a 4 años: 173 – 676 mg/l De 4 a 6 años: 99 – 1221mg/l De 6 a 8 años: 155 – 853 mg/l De 8 a 10 años: 127 – 853 mg/l De 10-12 años: 173 – 1730 mg/l De 12 a 14 años: 283 – 1250 mg/l De 14 a 18 años: 230 – 1960 mg/l Mayores de 18 años: 218 – 1760 mg/l IGG4: Hasta 2 años: 5 - 784 mg/l De 2 a 4 años: 10 – 537 mg/l De 4 a 6 años: 18 – 1125 mg/l De 6 a 8 años: 4 – 992 mg/l De 8 a 10 años: 19 – 932 mg/l De 10-12 años: 16 – 1150 mg/l De 12 a 14 años: 37 – 1360 mg/l De 14 a 18 años: 110 – 1570 mg/l Mayores de 18 años: 39 – 864 mg/l |
Modificado/Vigencia |
24.09.2026 |
INAAG |
INFLUENZA A VIRUS, ANTÍGENO VIRAL |
Plazos |
Al día siguiente. SI LA MUESTRA LLEGA AL LABORATORIO ANTES DE LA 14 HS . |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0.5 ml (mínimo) y 1.0 ml (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras que no se hayan conservado refrigeradas, las que hayan sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias.
Instrucciones: ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARINGEOS O BRONQUIALES:Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. No se recibirán jeringas, ni sondas, ni cánulas con el materia a analizar. Si llega una cánula el Laboratorio se procederá mediante una jeringa y una aguja a lavar la cánula con 0.5 ml de solución fisiológica y recoger este material en el tubo plástico debidamente etiquetado. |
Instrucciones al paciente |
NA |
| Método |
IFD (Inmunofluorescencia directa) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
INBAG |
INFLUENZA B VIRUS, ANTÍGENO VIRAL |
Plazos |
Al día siguiente. SI LA MUESTRA LLEGA AL LABORATORIO ANTES DE LA 14 HS . |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0.5 ml (mínimo) y 1.0 ml (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras que no se hayan conservado refrigeradas, las que hayan sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias.
Instrucciones: ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARINGEOS O BRONQUIALES:Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. No se recibirán jeringas, ni sondas, ni cánulas con el materia a analizar. Si llega una cánula el Laboratorio se procederá mediante una jeringa y una aguja a lavar la cánula con 0.5 ml de solución fisiológica y recoger este material en el tubo plástico debidamente etiquetado. |
Instrucciones al paciente |
NA |
| Método |
IFD (Inmunofluorescencia directa) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
INFAG |
INFLUENZA A VIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo: (Valor de corte: 1/10) |
Modificado/Vigencia |
21.12.2023 |
INFAM |
INFLUENZA A VIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo: (Valor de corte: 1/16) |
Modificado/Vigencia |
06.01.2025 |
INFBG |
INFLUENZA B VIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo: (Valor de corte: 1/10) |
Modificado/Vigencia |
21.12.2023 |
INFBM |
INFLUENZA B VIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo: (Valor de corte: 1/16) |
Modificado/Vigencia |
06.01.2025 |
INHIB |
INHIBINA B, SUERO |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimiolumimiscencia |
Valores de referencia |
Hombres: 12 a 65 años: 20.3 a 272.1 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
24.09.2025 |
INSPF |
INSULINA POST - PRANDIAL, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero libre de hemólisis por cada tiempo. Instrucciones: 1. Entre 8:00 y 9:00 de la mañana con el paciente en ayunas obtener una muestra basal. 2. Se indica al paciente que vaya a desayunar ingiriendo 4 tostadas (o medialunas) con manteca y mermelada acompañadas con una taza de café con leche (o té) con tres cucharadas de azúcar. Al mismo tiempo se le dice que tome la hora en que inicia la ingesta. Esto se indica si el médico no prescribe alguna otra alternativa de desayuno. El paciente deberá regresar al Centro una vez terminado el desayuno, donde permanecerá sentado, en reposo, sin fumar ni comer, hasta completar las 2 horas. 3. A las dos horas de finalizado el desayuno obtener la muestra post prandial.
|
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas entre las 8.00hs y 9.00 hs |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
INSUF |
INSULINA BASAL, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. El suero debe estar libre de hemólisis |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas.
|
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Adultos 2.0 uUI/ml a 14.5 uUI/ml El valor de referencia aplica en condiciones de ayuno de 8 hs.
|
Modificado/Vigencia |
25.08.2025 |
IONO |
IONOGRAMA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. El suero debe estar libre de hemólisis |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electrodo ion selectivo |
Valores de referencia |
Sodio: Hasta 14 días: 133 a 146 mEq/l Mayores de 14 días: 136 a 145 mEq/l Potasio: Hasta 14 días: 3.7 a 6.0 mEq/l De 15 días a 1 año: 3.7 a 5.7 mEq/l De 1 a 2 años: 3.8 a 5.4 mEq/l De 3 a 6 años: 3.5 a 5.1 mEq/l De 7 a 12 años: 3.5 a 5.0 mEq/l De 13 a 18 años: 3.4 a 4.8 mEq/l Mayores de 18 años: 3,5 a 5,1 mEq/l Cloro: Hasta 19 años: 98 a 107 mEq/l Mayores de 19 años: 94 a 111 mEq/l
|
Modificado/Vigencia |
12.08.2026 |
IONUR |
IONOGRAMA, ORINA 24 HORAS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina de 24 horas en tubo de kahn a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
|
| Método |
Electrodo ion selectivo |
Valores de referencia |
Sodio: 40 a 220 mEq/24 hs Potasio: 25 a 125 mEq/24 hs Cloro: 110 a 250 mEq/24 hs |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
ISAGA |
TOXOPLASMOSIS, ANTICUERPOS IgA (ISAGA), SUERO |
Plazos |
11 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ISAGA (Inmuno sorbent agglutination assay) |
Valores de referencia |
Negativo, Valor de Corte 1/16 |
Modificado/Vigencia |
11.07.2023 |
ISAGM |
TOXOPLASMOSIS, ANTICUERPOS IgM (ISAGM), SUERO |
Plazos |
11 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ISAGA (Inmuno sorbent agglutination assay) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
06.01.2025 |
ISOAM |
AMILASA, ISOENZIMAS, SUERO |
Plazos |
2 Días Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero refrigerado a temperatura de heladera (4°C a 8°C). |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cinético, 405 nm, a 37°C. |
Valores de referencia |
Amilasa total: 28-100 U/l Amilasa pancreática: 13 a 53 U/l |
Modificado/Vigencia |
21.08.2025 |
JCUR |
POLYOMAVIRUS JC, ADN, CUALITATIVO, LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO (URGENTE) |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir 1 ml de líquido cefalorraquídeo. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
06.06.2024 |
KETO |
ACETONA, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina espontánea en 2 tubos plásticos. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Cromatografía gaseosa |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica:Hasta 50 mg/l |
Modificado/Vigencia |
01.09.2025 |
KLLSC |
CUANTIFICACION CADENAS LIVIANAS LIBRES (KAPPA Y LAMBDA) SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles. |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Turbidimetría Spa - Freelite (Binding Site) |
Valores de referencia |
Kappa: 3.30 a 19.40 mg/l Lambda: 5.71 a 26.30 mg/l Relación Kappa/Lambda 0.26 a 1.65 |
Modificado/Vigencia |
03.08.2026 |
KPC |
BUSQUEDA DE KPC |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Con un hisopo estéril, tomar muestra de la zona perianal y colocarlo en un tubo con medio de transporte Stuart. |
Instrucciones al paciente |
Solicitar al laboratorio medio de transporte de Stuart. La muestra es obtenida por el médico bajo condiciones de rigurosa asepsia. Se remite al laboratorio a temperatura ambiente. |
| Método |
Cultivo en medio diferencial y selectivo |
Valores de referencia |
N.A |
Modificado/Vigencia |
06.05.2025 |
KPTT |
TIEMPO DE TROMBOPLASTINA PARCIAL ACTIVADA (APTT) |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma con citrato. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
25 a 37 segundos |
Modificado/Vigencia |
23.05.2018 |
KS |
POTASIO, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electrodo ion selectivo |
Valores de referencia |
Hasta 14 días: 3.7 a 6.0 mEq/l De 15 días a 1 año: 3.7 a 5.7 mEq/l De 1 a 2 años: 3.8 a 5.4 mEq/l De 3 a 6 años: 3.5 a 5.1 mEq/l De 7 a 12 años: 3.5 a 5.0 mEq/l De 13 a 18 años: 3.4 a 4.8 mEq/l Mayores de 18 años: 3,5 a 5,1 mEq/l |
Modificado/Vigencia |
12.08.2026 |
KU24 |
POTASIO, ORINA 24 HS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 5 mL de orina de 24 horas en tubo de Kahn a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
|
| Método |
Electrodo ion selectivo |
Valores de referencia |
25 a 125 mEq/24 hs |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
KUR |
POTASIO, ORINA |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de Kahn. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario que se provea de un envase estéril para urocultivo. Sin necesidad de mantener retención urinaria, recoger orina de cualquier emisión espontánea en el envase estéril. Tapar el envase, rotularlo con su nombre y llevarlo al laboratorio tan pronto como sea posible. |
| Método |
Electrodo Ion selectivo |
Valores de referencia |
20 a 80 mEq/L |
Modificado/Vigencia |
11.10.2016 |
KYLSA |
INMUNOGLOBULINAS DE CADENAS LIVIANAS (KAPPA Y LAMBDA), CUALITATIVO, SUERO |
Plazos |
7 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroinmunofijación |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
18.03.2024 |
KYLSC |
CADENAS LIVIANAS KAPPA Y LAMBDA, CUANTIFICACIÓN, SUERO |
Plazos |
20 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunodifusión radial cuantitativa. |
Valores de referencia |
Relación Kappa/Lambda: 1.0 a 2.0• |
Modificado/Vigencia |
22.06.2022 |
KYLUC |
INMUNOGLOBULINAS DE CADENAS LIVIANAS (KAPPA Y LAMBDA), CUANTIFICACIÓN, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
20 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 2 tubos cónicos de orina de 24 horas a temperatura ambiente (18°C a 25°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
|
| Método |
Inmunodifusión radial cuantitativa |
Valores de referencia |
Inmunoglobulinas de cadena liviana Kappa: Menor de 2,5 mg/dl Inmunoglobulinas de cadena liviana Lamda: Menor de 5,0 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
KYLUR |
INMUNOGLOBULINAS DE CADENAS LIVIANAS (KAPPA Y LAMDA), CUALITATIVO, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
8 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 5 ml de orina de 24 horas. Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
|
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
|
| Método |
Inmunoelectroforesis |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
LAMOT |
LAMOTRIGINA, SUERO |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance). |
Valores de referencia |
Rango terapéutico:
|
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
LDH |
LACTATO - DESHIDROGENASA (LDH), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. .El suero debe estar libre de hemólisis |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cinético UV IFCC |
Valores de referencia |
Hasta 3 días: 145 a 765 UI/l De 4 a 19 días: 225 a 600 UI/l De 20 días a 1 año: 226 a 458 UI/l De 1 a 9 años: 167 a 343 UI/l De 10 a 14 años: 155 a 345 UI/l Mayores de 15 años: 94 a 243 UI/l |
Modificado/Vigencia |
12.08.2026 |
LDL |
COLESTEROL LDL (Low Density Lipoprotein Cholesterol), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimático homogeneo (Col esterasa-Col oxidasa) Colorimétrico |
Valores de referencia |
Valores de referencia en términos de riesgo de enfermedad cardiovascular según NCEP (National Cholesterol Education Program). • Óptimo: menor de 100 mg/dl • Cercano al óptimo: 100 a 129 mg/dl • Borderline alto: 130 a 159 mg/dl • Alto: 160 a 189 mg/dl • Muy alto: igual o mayor a 190 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
20.02.2025 |
LEGGI |
LEGIONELLA PNEUMOPHILA, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
NEGATIVO (Valor de corte 1:64) |
Modificado/Vigencia |
06.01.2025 |
LEGMI |
LEGIONELLA PNEUMOPHILA, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia indirecta. |
Valores de referencia |
Negativo (Valor de corte 1/96) |
Modificado/Vigencia |
06.01.2025 |
LEPTG |
LEPTOSPIRA INTERROGANS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles - |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.3 DO Positivo débil: De 0.3 a 1.0 DO Positivo: Mayor de 1.0 DO |
Modificado/Vigencia |
01.10.2026 |
LEPTM |
LEPTOSPIRA INTERROGANS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
25.06.2026 |
LEUMF |
LEUCOCITOS, MATERIA FECAL |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio materia fecal del día en envase estéril; de no hacerlo en el día conservarla y transportarla refrigerada (4°C a 8°C). Consultar con microbiología en caso de pacientes hospitalizados o necesidad de remitir más de una muestra por vez. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario: Un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo). Un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc), lavado con agua y jabón. Una cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera. Instrucciones para obtener la muestra: Obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril. Si se trata de pañal, raspar y pasar al envase estéril. No llevar directamente el pañal: no será recibido. Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas. |
| Método |
Microscopía. Coloración con azul de metileno |
Valores de referencia |
Menor de 5 leucocitos por campo de 1000 x. |
Modificado/Vigencia |
11.02.2026 |
LEVE |
LEVETIRACETAM |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir 2.0 ml de suero refrigerado |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Debe realizar la extracción 11-12 hs después de la última dosis. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Concentración Terapéutica: 6 a 40 ug/ml Rango válido si el dosaje se realiza 11-12 hs después de la última dosis. Concentración Tóxica: mayor a 400 ug/ml. |
Modificado/Vigencia |
26.05.2025 |
LH |
HORMONA LUTEINIZANTE (LH), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Recomendaciones: Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hombres prepúberes: Hasta 1 año: 2.5 - 13.9 mUI/ml De 2 a 10 años: Hasta 4.0 mUI/ml Hombres adultos: 1.5 a 9.3 mUI/ml
Mujeres prepúberes: Hasta 1 año: 0.5 - 25.0 mUI/ml De 2 a 10 años: Hasta 4.0 mUI/ml Mujeres adultas: Fase folicular: 1.9 a 12.5 mUI/ml Fase ovulatoria: 8.7 a 76.3 mUI/ml Fase lútea : 0.5 a 16.9 mUI/ml Postmenopausia: 15.9 a 54.0 mUI/ml |
Modificado/Vigencia |
14.08.2026 |
LHR |
HORMONA LUTEINIZANTE (LH), RÁPIDA, SUERO |
Plazos |
En el día |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hombres prepúberes: Hasta 1 año: 2.5 - 13.9 mUI/ml De 2 a 10 años: Hasta 4.0 mUI/ml Hombres adultos: 1.5 a 9.3 mUI/ml
Mujeres prepúberes: Hasta 1 año: 0.5 - 25.0 mUI/ml De 2 a 10 años: Hasta 4.0 mUI/ml Mujeres adultas: Fase folicular: 1.9 a 12.5 mUI/ml Fase ovulatoria: 8.7 a 76.3 mUI/ml Fase lútea : 0.5 a 16.9 mUI/ml Postmenopausia: 15.9 a 54.0 mUI/ml |
Modificado/Vigencia |
14.08.2026 |
LI |
LITIO, SUERO |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Solicitar al paciente dosis y hora de toma del medicamento e informarlas al laboratorio de proceso junto a la hora de extracción. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
Electrodo Ion Selectivo |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 0,60 a 1,20 mMol/l Niveles tóxicos: Mayor de 2.0 mMol/l Puede causar falla renal sub aguda: Mayor de 1.5 mMol/l |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
LIP |
LIPASA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico-Enzimático |
Valores de referencia |
Adultos: hasta 67 UI/l 0-1 año: hasta 8 UI/l 1-9 años: 5 a 31 UI/l 10-18 años: 7 a 39 UI/l
|
Modificado/Vigencia |
11.10.2016 |
LIPGR |
LIPIDOGRAMA, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método |
Electroforesis en acetato de celulosa |
Valores de referencia |
•#N/A |
Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
LISIF |
LISTERIA MONOCYTOGENES, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia indirecta. |
Valores de referencia |
Valor de corte: 1/256• |
Modificado/Vigencia |
27.01.2025 |
LISIM |
LISTERIA MONOCYTOGENES, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
09.09.2023 |
LKM |
ANTICUERPOS ANTI - LKM, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia indirecta.Sustrato triple (Estómago,Hígado, Riñon). |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
09.09.2019 |
LON5 |
ANTICUERPOS ANTI-IgLON5 |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo: Valor de corte 1/10 |
Modificado/Vigencia |
16.07.2026 |
LORA |
LORAZEPAM, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra.
|
| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 20 a 250 ng/ml Niveles tóxicos: mayor de 300 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
LPA |
LIPOPROTEINA A, SUERO |
Plazos |
4 Día hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
Hasta 75 nmol/l |
Modificado/Vigencia |
02.03.2015 |
LT |
LIPIDOS TOTALES, SUERO |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Calculado a partir de colesterol total y triglicéridos |
Valores de referencia |
350 a 800 mg/dL |
Modificado/Vigencia |
22.05.2018 |
LUPIC |
ANTICUERPOS CON ACTIVIDAD DE INHIBIDOR LUPICO, PLASMA |
Plazos |
2 Dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2,7 ml de plasma congelado (-18°C a -20°C).
Instrucciones: Obtener sangre en tubo con citrato Inmediatamente después de la extracción centrifugar a 3000 rpm durante 15 min y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares) pasándolo a un tubo de centrífuga plástico (polipropileno similares) Volver a centrifugar el plasma que se separó otros 15 min a 3000 rpm y con pipeta de plástico (polipropileno similares) transferir el sobrenadante a un tubo plástico (polipropileno similares). Congelar (-18°C a -20°C) y remitir al laboratorio en esta condición. Adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
•Tiempo de Protrombina: 70-120 % APTT: 28-40 segundos Tiempo de Trombina: h/18 segundos ICA: 0-10% DRVVT Screen: 31-42 segundos Razón DRVVT Screen: 0-1.20 DRVVT Confirmatorio: 28-34 segundos Razón DRVVT Confirmatorio: 0-1.12 Razón DRVVT Screen/Confirmatorio: 0-1.20 |
Modificado/Vigencia |
11.02.2026 |
MAAMI |
MACROAMILASA, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio 1.0 ml de suero refrigerado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico Enzimático |
Valores de referencia |
28 a 100 U/l Interpretación: Recuperación menor de 50 % sugiere la presencia de macroamilasemia |
Modificado/Vigencia |
21.08.2025 |
MAK |
PUNTA DE CATETER, CULTIVO (MAKI) |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico la punta de catéter en un envase estéril. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Cultivo. Método de MAKI |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
04.09.2024 |
MANFENIL |
ACIDO FENILGLIOXILICO Y ACIDO MANDELICO, ORINA |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos mas una alícuola de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral.
|
Instrucciones al paciente |
N/A |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
BEI (Indice de exposición biológica): Suma de Acido Mandélico y Acido Fenilglioxilico: Hasta 400 mg/g de creatinina. |
Modificado/Vigencia |
13.11.2019 |
MEHIP |
ÁCIDO METIL -HIPURICO, ORINA |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 1.5 mL de orina espontánea en tubo plástico. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
BEI (Indice de exposición biológica): hasta 1,5 g/g creatinina |
Modificado/Vigencia |
26.07.2024 |
MEKET |
METILETILCETONA (BUTANONA), ORINA |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A..
|
| Método |
Cromatografía gaseosa |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica: 2,0 mg / L |
Modificado/Vigencia |
24.09.2018 |
MENBU |
MENINGITIS BACTERIANA, ADN DETECCION DE Streptococcus pneumoniae, Neisseria meningitidis |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
LCR 500 ul |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR Hibridización |
Valores de referencia |
- |
Modificado/Vigencia |
26.06.2024 |
MERCU |
MERCURIO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotometría de Absorción Atómica con Generador de Hidruros |
Valores de referencia |
Hasta 9 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
MERUR |
MERCURIO, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 50 ml de orina espontánea en 5 tubos plásticos a temperatura ambiente (18°C-25°C).
Instrucciones: Recolectar la orina al final del turno o de la semana laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio. |
Instrucciones al paciente |
Recolectar una alícuota de 50 ml de orina espontánea al final del turno o de la semana laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio. |
| Método |
HYAAS Espectrofotometría de Absorción Atómica con Generador de Hidruros |
Valores de referencia |
Indice Biológico de Exposición: Menor de 20 ug/g creatinina |
Modificado/Vigencia |
11.02.2026 |
META |
METANEFRINA , ORINA 24 HS |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina de 24 horas con el conservante, refrigerada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
|
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
|
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Intervalo de referencia:
Hombres: 3 a 8 años: 29 a 92 ug/24 hs 9 a 12 años: 59 a 188 ug/24 hs 13 a 17 años: 69 a 221 ug/24 hs Mayor de 18 años: 44 a 261 ug/24 hs Hipertensos: Menor de 400 ug/24 hs Mujeres: 3 a 8 años: 18 a 144 ug/24 hs 9 a 12 años: 43 a 122 ug/24 hs 13 a 17 años: 33 a 185 ug/24 hs Mayor de 18 años: 30 a 180 ug/24hs Hipertensas: menor de 400 ug/24 hs Los intervalos de referencia no están establecidos para menores de 3 años.
|
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
METAD |
METADONA, ORINA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
“MEDICINA LABORAL: Instrucciones para la obtención de muestras de alcohol y drogas de abuso: Solicitar al laboratorio de referencia el formulario (triplicado) para recolección de datos. 1. Cortar el agua del toilette o encintar las canillas. 2. Identificar fehacientemente a la persona con DNI o CI. 3. Anotar los datos personales en el formulario e identificar a la persona con un código. 4. Entregar a la persona un recipiente para la recolección de orina y solicitarle que recoja una muestra en el toilette. 5. Tomar inmediatamente la temperatura de la muestra y consignarla en el formulario: sin este dato la muestra quedará invalidada. 6. Fraccionar la muestra en un tubo de Kahn y refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C). 7. Identificar las muestras con el código de identificación (NO con el nombre). 8. Indicar en el formulario que determinaciones se solicitan. 9. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad, refrigerada (4°C-8°C) en envase térmico con refrigerante. la tercera hoja del formulario (que no tiene el nombre del paciente) . Retener otra alícuota en el laboratorio. SEDES AMBULATORIAS: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad (ver instrucciones para el paciente). |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio con una retención urinaria de 3 hs, como mínimo. La muestra de orina se obtendrá en el Laboratorio. |
| Método |
Kinetic Interaction of Microparticles in solution (KIMS) |
Valores de referencia |
Negativo.Valor de corte: 250 ng/mL |
Modificado/Vigencia |
22.05.2018 |
METAP |
METAPNEUMOVIRUS ARN, secreciones respiratorias |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N 95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con: • Hisopos estériles con punta de poliéster o dacron, nunca de madera con punta de algodón. • Tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0,5 mL (mínimo) y 1,0 mL (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras no se hayan conservado refrigeradas, las que haya sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias. Instrucciones: SECRECIONES NASALES O FARÍNGEAS • Obtener las muestras de los orificios nasales profundos (hisopado nasal) o de la faringe (hisopado faríngeo).Por cada tipo de muestra (nasal o faríngea) recolectar dos hisopos. • Colocar ambos hisopos en el tubo con solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente y rotular. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos (S6). ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARÍNGEOS O BRONQUIALES • Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos (S7). |
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
RT PRC-Real Time |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
METSA |
METANOL, SANGRE |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenidos 5,0 ml de sangre periférica con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cromatografía gaseosa.Head Space |
Valores de referencia |
• Hasta 10 mg/dl. • Límite de detección: 0,05 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
METUR |
METANOL, ORINA |
Plazos |
12 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Espectrofotométrico |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica: 15 mg / L |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
MG |
MAGNESIO, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico - Azul de xilidil |
Valores de referencia |
0 a 4 meses: 1.5 - 2.5 mg/dl 5 meses a 5 años: 1.7 - 2.3 mg/dl 6 a 11 años: 1.7 - 2.1 mg/dl 12 a 19 años: 1.7 - 2.2 mg/dl 20 a 60 años: 1.6 - 2.6 mg/dl Mayores de 60 años: 1.6 - 2.4 mg/dl
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Modificado/Vigencia |
14.08.2026 |
MG24 |
MAGNESIO, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina de 24 horas en tubo de Kahn a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Colorimétrico - Azul de xilidil |
Valores de referencia |
60 a 210 mg/24 horas |
Modificado/Vigencia |
14.08.2026 |
MGH2 |
MAGNESIO, ORINA DE 2 HORAS |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio una alícuota de 5 ml de orina de 2 horas en tubo de Kahn.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización de la prueba: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de ½ a 1 litro de capacidad. Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Obtener en la farmacia 250 ml de agua destilada. Es conveniente, no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua, antes de recoger la orina.
Instrucciones para la recolección de la orina: Al levantarse, en ayunas, vaciar la vejiga y desechar esa orina. Inmediatamente beber los 25O ml de agua destilada (dos vasos), y continuar en ayunas, sin realizar actividad física y absteniéndose de orinar. Al cabo de 2 horas exactas desde que se orinó la primera vez, orinar y recoger esa orina en el envase plástico. Si no le es posible retener la micción, puede recoger todas las micciones en el envase hasta que se cumplan las 2 horas. Llevar la muestra al Laboratorio tan pronto como le sea posible.
Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario respetar estrictamente los horarios y que la recolección de la orina sea completa.
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| Método |
Colorimétrico - Azul de xilidil |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
11.02.2026 |
MICCL |
ALBUMINURIA, ORINA 24 HORAS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE) Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 3 ml en tubo de Kahn (polipropileno o similares) a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis, las muestras remitidas sin estas informaciones no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Inmunoturbidimétrico |
Valores de referencia |
Orina de 24 hs: 0 a 30 mg/24hs |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
MICDI |
MICOLOGICO, OBSERVACION DIRECTA |
Plazos |
2 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios para la obtención de muestras: Muestras de escamas de piel y faneras: Alcohol 96%, 2 Portaobjetos estérilizados, Mango de bisturí, hojas de bisturí descartables. Papel blanco para envolver los portaobjetos. Muestras de pelo: Pinzas de depilar esterilizadas.
Procedimientos para la obtención de muestras: Lesiones de piel (tronco, extremidades, ingle, pliegues cutáneos): Colocar un portaobjetos con la cara estéril hacia arriba inmediatamente por debajo de la lesión;con el bisturi raspar el borde externo de la lesión tratando de desprender la mayor cantidad posible de escamas. Juntar las escamas en el centro del portaobjetos y cubrir con el segundo portaobjetos estéril. Envolver ambos portaobjetos con el papel blanco sin colocar ningún tipo de cinta o etiqueta adhesiva pegada al vidrio Identificar en el papel el tipo de muestra y los datos de la persona. Lesiones en cuero cabelludo en niños (tiñas): Con la pinza de depilar obtener pelos y colocar entre dos portaobjetos estériles. Entre otros dos portaobjetos igualmente estériles se colocan las escamas obtenidas por raspado de la lesión. Envolver por separado cada par de portaobjetos con papel blanco y rotularlos indicando tipo de muestra e identificación de la persona. Lesiones en uñas: En presencia de hiperqueratosis subungueal, con la hoja de bisturí esteril raspar el material acumulado debajo de la uña, entre la uña y el dedo. En las onicomicosis superficiales raspar la tabla externa de la uña (en caso de compromiso de toda la tabla ungueal obtener material de raspado del mayor número posible de capas córneas). Si se observa perionixis, raspar la zona de unión entre la cutícula y la uña, introduciendo cuidadosamente la hoja de bisturí, por debajo de la cutícula y juntar escamas. Colocar los materiales obtenidos entre dos portaobjetos estériles (por separado para cada zona de obtención de materiales), envolverlos con el papel blanco, identificando el tipo de muestra y la persona. No se aceptaran trozos de uñas ni lechos ungueales. |
Instrucciones al paciente |
Preparación para el estudio: Suspender todo medicamento antifúngico local o sistémico 5 días antes de la toma de la muestra, excepto expresa indicación médica. Para lesiones o manchas de la piel: En el día anterior a la obtención de muestra lavar la zona con agua y jabón blanco y hacer 3 baños de la zona afectada con agua tibia y sal. Para lesiones en uñas de las manos: No cortarlas desde la semana anterior y cepillar 3 veces al día durante tres días con agua y jabón blanco; durante esos 3 días no usar esmalte de uñas. En el día anterior a la toma de muestra realizar un baño con agua tibia y sal. Para lesiones en uñas de los pies: No cortarlas desde la semana anterior y cepillar 3 veces al día durante tres días con agua y jabón blanco; durante esos días no usar esmalte de uñas; En el día anterior a la toma de la muestra realizar un baño con agua tibia y sal. Usar medias de algodón limpias y calzado cerrado hasta concurrir al laboratorio. Para lesiones en cuero cabelludo: No utilizar champú con antimicóticos desde 5 días antes del estudio.
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| Método |
Microscopía en fresco |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
11.02.2026 |
MICES |
ALBUMINURIA, ORINA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 3 ml de orina espontánea en tubo de Kahn. |
Instrucciones al paciente |
Recoger orina (preferentemente la primera de la mañana) en un envase estéril de urocultivo. |
| Método |
Inmunoturbidimetría. |
Valores de referencia |
Orina espontanea: 0 a 20 mg/g de creatinina |
Modificado/Vigencia |
12.03.2025 |
MICIN |
UROCULTIVO, MICCION INICIAL |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Envase estéril. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico en envase estéril. Transportar las muestras al Laboratorio inmedidtamente. |
Instrucciones al paciente |
Instrucciones: Recoger la muestra antes de comenzar cualquier tratamiento con antibióticos. Si está recibiendo algún antibiótico, interrumpir el tratamiento 72 horas antes de obtener la muestra, excepto indicación contraria de su médico.
Obtención de la muestra: El estudio se realiza con la primera orina de la mañana, o con una retención urinaria mínima de 3 horas. Antes de obtener la muestra realizar una meticulosa higiene genital con agua y jabón. Mujeres: la misma debe realizarse de adelante hacia atrás (nunca de atrás hacia adelante, para no contaminar) y enjuagar abundantemente con agua y secar con toalla de papel. Las mujeres adultas deben colocarse un tampón vaginal. Varones: Con el prepucio retraído, higienizar tres veces el pene, enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel. -
Muestra: Recolectar la primer porción de orina, aproximadamente 10 ml de orina en frasco estéril. Remitir al laboratorio en recipiente estéril.
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| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
27.03.2026 |
MICLI |
HEMOCULTIVO PARA HONGOS |
Plazos |
42 Días |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Jeringas y agujas estériles, guantes, Solución antiséptica, Alcohol 70% o solución de clorexidina, Frascos de hemocultivo MYCOLITIC (Blanco). Procedimiento: Se realiza lavado de manos con jabón antiséptico o gel alcohólico Colocarse guantes (estériles, si la institución o el caso particular así lo requiere) Se preparan jeringa y aguja estériles sobre una gasa estéril, cuidando que la aguja tenga el correspondiente capuchón. Se elige la vena de punción. Se desinfecta la piel de la zona de punción con solución de alcohol 70, con un algodón embebido con el desinfectante SIN FROTAR, realizando círculos concéntricos desde adentro hacia fuera Se deja secar 30-60 segundos. Una vez desinfectada la piel no debe palparse nuevamente la vena. De ser necesario, se embebe el dedo del guante en solución desinfectante, se espera a que seque y se palpa la vena a punzar. Se descontamina el tapón de goma de los frascos de hemocultivo con una gasa estéril embebida en alcohol 70. Se extrae sangre por punción venosa, 8 a 10 ml (pacientes adultos) y de 2 a 5 ml (pacientes pediátricos). En pacientes neonatos, es aceptable 0.5 ml. Se inoculan los frascos sin cambiar la aguja y sin invertir el frasco cuidando de no introducir aire ni producir espuma y se homogeneizan suavemente luego de haber extraído la aguja. Se descartan los elementos utilizados, según normas de bioseguridad. Se remueve de la piel el exceso de solución iodada con un algodón con alcohol. Se realiza lavado de manos con jabón antiséptico o gel alcohólico Tiempos de espera para la actividad óptima de los antisépticos: 30 segundos IMPORTANTE: CUANDO LA MUESTRA DE SANGRE OBTENIDA EN ESTAS CONDICIONES REQUIERA LA REALIZACION DE EXAMENES DE LABORATORIO GENERAL, TENER PRESENTE QUE EL FRASCO DE HEMOCULTIVO DEBE SER INOCULADO EN PRIMER LUGAR. Se envían los frascos de inmediato al laboratorio (Hasta su envio conservarlos a Temperatura ambiente). Se rotulan con: NOMBRE y APELLIDO DEL PACIENTE – HABITACION – N° DE MUESTRA |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Hemocultivo automatizado |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
24.04.2019 |
MICPCR |
MYCOPLASMA HOMINIS, ADN CUALITATIVO |
Plazos |
9 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Se recibirán muestras recolectadas solamente en TUBO SECO ESTERIL. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba según la localización a analizar (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Se aceptan muestras de : orina (primer chorro) , hisopados endocervical uretral,conjuntival y anal; semen y biopsias . Las muestras de orina deben ser recolectadas en envases de polipropileno con tapa hermética, sin conservantes de ningún tipo. No utilizar orinas con conservantes. Para muestras de tracto genital (femenino o masculino) , conjuntiva y anales enviar la muestra en tubo seco estéril. utilizar siempre hisopos con punta de fibras de rayón o dacron , con mango de plástico: No utilizar hisopos con punta de algodón o mangos de madera o aluminio. Respetar cuidadosamente las instrucciones sobre conservación y transporte de las muestras. La congelación de las muestras o su conservación prolongada pueden afectar la performance del método. Instrucciones para la obtención de muestras:
ORINA (MUJERES Y VARONES): Controlar el tiempo de retención observado. Obtener una muestra de primer chorro de orina (aproximadamente 5 a 10 ml) en un envase plástico estéril (polipropileno o similares), sin conservantes de ningún tipo, con tapa a rosca. Conservar y transportar las muestras refrigeradas (4°C a 8°C) asegurarse de que el período de conservación a temperatura ambiente no exceda las 24 horas. Si el paciente además tiene solicitado un MICIN, se debe separar una porción de la orina en un tubo de khan para enviar a MANLAB y el frasco con el resto enviar a bacterio.
TRACTO GENITAL (ENDOCERVICAL O URETRAL FEMENINO O MASCULINO): Introducir un hisopo en el canal endocervical, o en la uretra haciéndolo rotar unos 15 a 30 segundos en ambas direcciones, para asegurar la obtención de células cilíndricas y cilíndrico-pavimentosas. Antes de la obtención de muestras endocervicales limpiar cuidadosamente la mucosidad excesiva del orificio cervical con un hisopo, gasa o algodón. Colocar los hisopos en tubo seco estéril. Cortar el hisopo a la altura de la marca de corte, haciendo palanca sobre el tubo. Tapar los tubos herméticamente y rotular. Refrigerar a 4°C - 8°C hasta su envío dentro de las 24 hs.
MUESTRAS CONJUNTIVALES Y ANALES: Limpiar la zona y tomar la muestra con hisopo por rotación. Colocar los hisopos tubo seco estéril. Cortar el hisopo a la altura de la marca de corte, haciendo palanca sobre el tubo. Tapar los tubos herméticamente y rotular. Refrigerar a 4°C – 8°C hasta su envío dentro de las 24 hs
SEMEN: Remitir en frasco estéril.
BIOPSIA: Remitir en solución fisiológica.
HISOPADO NASOFARINGEO: Remitir en tubo seco. Conservar el hisopo dentro del tubo seco.Conservar en heladera hasta su envio dentro de las 24h. Remitir en el día al Laboratorio de proceso. Refrigerar a 4°C – 8°C hasta su envío dentro de las 24 hs
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Instrucciones al paciente |
Cualquiera sea el caso, es necesario interrumpir cualquier tratamiento antibiótico 72 horas antes de la obtención de las muestras, excepto expresa indicación del médico. Las instrucciones específicas son diferentes según el tipo de investigación solicitado por el médico.
ORINA (MUJERES Y HOMBRES): Obtener una muestra de primer chorro de orina (aproximadamente 5 a 10 ml) en un envase plástico estéril (polipropileno o similares), sin conservantes de ningún tipo, con tapa a rosca. Conservar y transportar la muestra refrigerada (4ºC a 8ºC), asegurarse de que el período de conservación no exceda las 24 hs. En caso que también tenga solicitado un estudio de hisopado uretral debe concurrir al laboratorio con una retención urinaria de toda la noche o de dos horas como mínimo, para obtener la muestra de orina en el laboratorio.
HISOPADOS ENDOCERVICAL O URETRAL (MUJERES O VARONES) Mujeres: Programar la realización en fechas alejadas del período menstrual, excepto indicación del médico. Si está embarazada la muestra debe ser obtenida por su médico. Observar una abstinencia sexual de 72 hs, antes del estudio. Desde la noche anterior no utilizar duchas vaginales, ni aplicarse desodorantes, cremas vaginales o talco. Antes de concurrir al laboratorio realizar una meticulosa higiene vulvar (externa) con agua y jabón siempre de adelante hacia atrás, nunca en sentido inverso para evitar la contaminación. Para muestras uretrales (mujeres) no orinar durante dos horas como mínimo antes de concurrir al laboratorio. Varones: Observar una retención urinaria de toda la noche o si no es posible, de 3 horas como mínimo. Antes de concurrir al laboratorio efectuar una meticulosa higiene genital con el prepucio retraído, tres veces, con agua y jabón. Enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel.
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| Método |
PCR (Polymerase Chain Reaction) |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
14.04.2026 |
MICUL |
MYCOPLASMA Y UREAPLASMA, CULTIVO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba según la localización a analizar (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Solicitar al laboratorio analítico el tubo con el medio de transporte específico para mycoplasma. SEMEN: Remitir la muestra en envase estéril. SECRECIÓN ENDOCERVICAL: Limpiar el exocervix con gasa hasta eliminar el exceso de flujo vaginal. Introducir un hisopo de dacron estéril en el canal endocervical, rotando en ambas direcciones, para favorecer la secreción de glándulas y criptas. Colocar el hisopo en el medio de transporte para mycoplasma, rotándolo y presionando contra las paredes del tubo para descargar todo el material. Desechar el hisopo y tapar el tubo. Conservar refrigerado (4°C-8°C). No se deben tomar muestras que presenten contaminación evidente con sangre, ya que interfiere en la interpretación de resultado.La muestra debe tomarse 48 -72 hs horas después de finalizado el sangrado. SECRECIÓN URETRAL: Asegurarse de que el paciente haya observado una retención urinaria de 3 horas como mínimo. Para obtener la muestra solicitar al paciente que retraiga el prepucio y que presione hacia delante para observar la presencia de secreción. Introducir en la uretra un hisopo uretral de aluminio estéril, rotándolo suavemente. Colocar el hisopo en el medio de transporte para mycoplasma, rotándolo y presionando contra las paredes del tubo para descargar todo el material. Desechar el hisopo y tapar el tubo. Conservar refrigerado (4°C-8°C). ORINA PRIMER CHORRO: Controlar que el paciente haya recolectamo la muestra segun las indicaciones (especialmente que el volumen de orina no supere los 10 ml).
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Instrucciones al paciente |
Cualquiera sea el caso, es necesario interrumpir cualquier tratamiento antibiótico 72 horas antes de la obtención de las muestras, excepto expresa indicación del médico. Las instrucciones específicas son diferentes según el tipo de cultivo a realizar:
CULTIVO DE SEMEN: Para realizar este análisis debe proveerse de un envase estéril de boca ancha para urocultivo. Observar una abstinencia sexual de 72 hs. Antes de obtener la muestra realizar una meticulosa higiene genital con agua y jabón. Con el prepucio retraído, higienizar tres veces el pene, enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel. Obtener la muestrapor masturbación. Eyacular directamente dentro del envase estéril, cuidando de recolectar todo el volumen emitido. Tapar cuidadosamente el recipiente, rotularlo con su nombre y la fecha y llevarlo cuanto antes al laboratorio, sin refrigerar. No se aceptarán muestras derramadas. Solo en aquellos casos en que la orden médica indica además de semen, cultivo de primer chorro de orina, recolectar primero la orina (primer chorro) y luego el semen. CULTIVO DE PRIMER CHORRO DE ORINA: Con el prepucio retraído, realizar una meticulosa higiene genital con agua y jabón. Enjuagar con abundante agua y secar con una toalla de papel. Recoger en un envase estériles la primera parte de la orina (primer chorro miccional); el volumen a recoger sólo debe cubrir el fondo del envase (aproximadamente 10 cm3), desechar la orina restante. Tapar cuidadosamente el recipiente, rotularlo con su nombre y la fecha y llevarlo cuanto antes al laboratorio, sin refrigerar. No se aceptarán muestras derramadas.
CULTIVO ENDOCERVICAL: No concurrir a la toma de muestra durante el período mensutrual o si presenta sangrado vaginal. La muestra debe tomarse 72 hs horas después de finalizado el sangrado. Si está embarazada la muestra debe ser obtenida por su médico. Observar una abstinencia sexual de 72 hs, antes del estudio. La noche previa al estudio realizar higiene vulvar (externa) con agua y jabón siempre de adelante hacia atrás, nunca en sentido inverso para evitar la contaminación. Desde la noche anterior no utilizar duchas vaginales, ni aplicarse desodorantes, cremas vaginales o talco.
CULTIVO URETRAL: Observar una retención urinaria de toda la noche o si no es posible, de 3 horas como mínimo. Antes de concurrir al laboratorio efectuar una meticulosa higiene genital con el prepucio retraído, tres veces, con agua y jabón. Enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel.
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| Método |
Cultivo en medios especiales. |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
18.09.2026 |
MICUR |
ALBUMINURIA EN ORINA DE 12 HORAS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE), según el tiempo de recolección de orina solicitado por el médico. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 ml de orina de 12 en tubo de Kahn (polipropileno o similares) a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis y el tiempo de extracción empleado (12 horas): las muestras remitidas sin estas informaciones no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario: • Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros), con tapa a rosca. Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. • Recolectar orina de 12 horas. • Es conveniente no realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. • Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). • Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 12 horas: 1. En la mañana del día de la prueba al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que lo hizo. 2. A partir de ese momento juntar en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine hasta que se cumplan las 12 horas desde que desechó la primera orina. En ese momento orinar por última vez, recolectando esa orina en el recipiente. Es conveniente mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3. Llevar el recipiente al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de la orina sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las horas indicadas. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico |
Valores de referencia |
0 a 15 mcg/min |
Modificado/Vigencia |
04.04.2023 |
MIOGS |
MIOGLOBINA, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 110 ng/ml Un valor de mioglobina mayor a 110 ng/ml es altamente sugerente de infarto de miocardio. |
Modificado/Vigencia |
22.05.2026 |
MIORI |
MIOGLOBINA, ORINA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio una alícuota de 15 ml de orina alcalinizada con pH>8. |
Instrucciones al paciente |
Recolectar orina espontánea en cualquier momento del día en un envase nuevo de boca ancha. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
Hasta 50 ug/l |
Modificado/Vigencia |
26.03.2025 |
MN |
MANGANESO |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre heparinizda refrigerada.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotometría de Absorción Atómica (atomización en horno de grafito |
Valores de referencia |
4,7 - 18,3 ug/l |
Modificado/Vigencia |
22.10.2021 |
MNUR |
MANGANESO, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina espontánea en 2 tubos plásticos mas una alícuola de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
Instrucciones: Recolectar la orina al final del turno o de la semana laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio. |
| Método |
Absorción Atómica |
Valores de referencia |
Indice Biológico de Expocición: Hasta 3.0 ug/g creatinina |
Modificado/Vigencia |
17.09.2025 |
MONOT |
MONONUCLEOSIS INFECCIOSA, ANTICUERPOS (MONOTEST ®), SUERO |
Plazos |
2 Día hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Aglutinación en placa |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
06.05.2015 |
MOPEG |
3 - 4 METOXIHIDROXIFENILGLICOL (MOPEG), ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
12 Días Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 ml de orina de 24 horas con el conservante,congelada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
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| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
0.90 a 3.50 mg/24 horas
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Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
MPO |
ANTICUERPOS ANTI - MIELOPEROXIDASA, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 5 U/mL Positivo: Mayor o igual de 5 U/ml |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
MPUR |
MYCOPLASMA PNEUMONIAE, ADN |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenidos, en envase estéril cualquiera de los siguientes materiales biológicos: • Material de biopsia • • Líquidos de lavado broncoalveolar o aspirado bronquial • Líquido cefalorraquídeo (200mcL) • Esputo • Hisopado faríngeo |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
17.05.2024 |
MTH12 |
GEN MTHFR (METILEN TETRAHIDROFOLATO REDUCTASA), MUTACIÓN A1298C, SANGRE PERIFÉRICA |
Plazos |
30 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre periférica con EDTA, preferentemente en el dia de obtencion de la muestra |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
La presencia de las mutaciones C677T y A1298C en el gen de la MTHFR, está asociada al niveles aumentados de homocisteína circulante (hiperhomocisteinemia), lo cual ha sido asociado a un aumento en el riesgo de enfermedad ateroesclerótica prematura en sus formas cardiovascular, neurológica o psiquiátrica independiente del colesterol. Mutación C677T: • Genotipo homocigoto no mutado (677CC): Actividad MTHFR normal. • Genotipo heterocigoto (677CT): Actividad MTHFR normal*. • Genotipo homocigoto mutado (677TT): Hiperhomocisteinemia moderada. Mutación A1298C: • Genotipo homocigoto no mutado (1298AA): . Actividad MTHFR normal. • Genotipo heterocigoto (1298AC): Actividad MTHFR normal*. • Genotipo homocigoto mutado (1298CC): Actividad MTHFR normal* *La combinación del genotipo heterocigoto 677CT con el homocigoto 1298CC o con el heterocigoto 1298AC lleva una disminución de la actividad de la MTHFR y por lo tanto al aumento del riesgo, en forma comparable a la de la presencia del genotipo homocigoto (677TT). |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
MTH67 |
GEN MTHFR (METILEN TETRAHIDROFOLATO REDUCTASA), MUTACIÓN C677T, SANGRE PERIFÉRICA |
Plazos |
30 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre periférica con EDTA,preferentemente en el día de obtención de la muestra. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
La presencia de las mutaciones C677T y A1298C en el gen de la MTHFR, está asociada al niveles aumentados de homocisteína circulante (hiperhomocisteinemia), lo cual ha sido asociado a un aumento en el riesgo de enfermedad ateroesclerótica prematura en sus formas cardiovascular, neurológica o psiquiátrica independiente del colesterol. Mutación C677T: • Genotipo homocigoto no mutado (677CC): Actividad MTHFR normal. • Genotipo heterocigoto (677CT): Actividad MTHFR normal*. • Genotipo homocigoto mutado (677TT): Hiperhomocisteinemia moderada. Mutación A1298C: • Genotipo homocigoto no mutado (1298AA): . Actividad MTHFR normal. • Genotipo heterocigoto (1298AC): Actividad MTHFR normal*. • Genotipo homocigoto mutado (1298CC): Actividad MTHFR normal* *La combinación del genotipo heterocigoto 677CT con el homocigoto 1298CC o con el heterocigoto 1298AC lleva una disminución de la actividad de la MTHFR y por lo tanto al aumento del riesgo, en forma comparable a la de la presencia del genotipo homocigoto (677TT). |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
MUSK |
AC. ANTI MUSK |
Plazos |
40 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Enviar al laboratorio 1 ml de suero refrigerado.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
CBA (Cell Based Assay) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
MYPIG |
MYCOPLASMA PNEUMONIAE, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 mL de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 9 Dudoso: 9 a 11 Positivo: Mayor de 11 |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
MYPIM |
MYCOPLASMA PNEUMONIAE, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 mL de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 9 |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
NA |
SODIO, PLASMA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electrodo ion selectivo |
Valores de referencia |
Hasta 14 días: 133 a 146 mEq/l Mayores de 14 días: 136 a 145 mEq/l |
Modificado/Vigencia |
12.08.2026 |
NA24 |
SODIO, ORINA 24 HORAS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 5 mL de orina de 24 horas en tubo de Kahn a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Electrodo ion selectivo |
Valores de referencia |
40 a 220 mEq/24 hs |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
NAUR |
SODIO, ORINA |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de Kahn. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario que se provea de un envase estéril para urocultivo. Sin necesidad de mantener retención urinaria, recoger orina de cualquier emisión espontánea en el envase estéril. Tapar el envase, rotularlo con su nombre y llevarlo al laboratorio tan pronto como sea posible. |
| Método |
Electrodo Ion selectivo |
Valores de referencia |
54 a 190 mEq/l
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Modificado/Vigencia |
11.10.2016 |
NDHEA |
DEHIDROEPIANDROSTERONA LIBRE, SUERO |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio a las 8:00 de la mañana. |
| Método |
ELISA |
Valores de referencia |
Mujer 1.0 a 10.3 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
NEON |
PERFIL NEONATAL, GOTA DE SANGRE SECA (Incluye la pesquisa neonatal de: 17- hidroxiprogesterona, tir |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras deben ser obtenidas desde las 48 horas del nacimiento hasta los 7 días de vida, como máximo.Solicitar al laboratorio el soporte de papel apropiado para la obtención y transporte de la muestra.
Método de obtención de las muestras: 1. Entibiar el talón del bebé con una compresa tibia, punzarlo con una lanceta desechable, formar con el pulgar y el índice un pliegue de la piel en lugar de la punción y oprimir para obtener las gotas de sangre 2. Embeber con la sangre cada uno de los círculos marcados en el papel hasta que la sangre se distribuya homogéneamente por toda la superficie del círculo en ambas caras del mismo. 3. Completar cuidadosamente todos los datos solicitados en el soporte y colocarlo en un envase tipo Ziploc para proteger de la humedad. Si es necesario adjuntar planilla de datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Fluorométrico |
Valores de referencia |
17 Hidroxiprogesterona neonatal: Hasta 22 ng//ml Tirotrofina neonatal: hasta 9,0 mcUI/ml Tripsina inmunoreactiva neonatal: Hasta 70 ng/ml Fenilalanina neonatal: hasta 3,0 mg/dl Galactosemia neonatal: hasta 8,0 mg/dl Biotinidasa neonatal: Normal mayor de 50 U El presente estudio es de screening, por lo que se recomienda; en los casos de resultados por fuera de los valores de referencia, realizar estudios confirmatorios y/o complementarios y su posterior seguimiento clínico en una Institución Especializada. |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
NEROP |
AC. ANTI AG NEURONALES PANEL (NMDA,AMPA1-2,CASPR2, ILGI1,IGABA B1/B2,DPPX ) |
Plazos |
18 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir 0.5 ml de suero o LCR refrigerado |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 1/10 |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
NEUMB |
NEUMOCOCO, ANTICUERPOS ANTI - POLISACÁRIDO CAPSULAR (PCP), SUERO |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Respuesta protectora Post Vacuncación: Mayor de 113 mg/l Ausencia de Respuesta Post Vacuncación: Menor de 30 mg/l |
Modificado/Vigencia |
03.08.2026 |
NIQ |
NIQUEL, SANGRE |
Plazos |
12 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotometría de Absorción Atómica (Horno de grafito) |
Valores de referencia |
Hasta 0,50 mcg/dl •Nivel Crítico:Mayor de1.00 mcg/dl • Nivel de detección desde 0.01 mcg/dl |
Modificado/Vigencia |
20.02.2025 |
NIQUR |
NIQUEL, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos mas una alícuola de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Absorción Atómica |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica: hasta 5.0 ug / g creatinina |
Modificado/Vigencia |
25.07.2023 |
NITRA |
NITRAZEPAM, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio analîtico 2.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 30 a 100 ng/mL
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Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
NNDMT |
NN - DIMETILTRIPTAMINA, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
13 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina de 24 horas refrigerada (4°C-8°C) en envase plástico (polipropileno o similares). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua.
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
TMS (Espectrometría de masas en tándem) |
Valores de referencia |
Hasta 0,5 ug/24 hs |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
NORAO |
NORADRENALINA, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 3 ml de orina de 24 horas con el conservante,congelada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
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| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Adultos: Hasta 97.0 ug/24 hs |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
NORLI |
NORADRENALINA LIBRE, PLASMA |
Plazos |
7 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Muestra: Remitir al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma congelado a -20°C en tubo plástico tapón azul exclusivo para catecolaminas. Instrucciones: Antes de la obtención de la muestra, mantener a la persona en reposo, sentado, durante 30 minutos. Obtener sangre periférica con HEPARINA y centrifugar inmediatamente después. Separar el plasma en tubo plástico tubo plástico tapón azul exclusivo para catecolaminas y congelar a -20°C. NOTA: remitir plasma libre de hemólisis. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Durante 3 días antes de concurrir al laboratorio no ingerir banana, tomate, chocolate, cacao, cremas, tortas, helados o cualquier alimento que pueda contener vainilla. No ingerir aspirinas. No tomar bebidas alchólicas. Se debe evitar la ingesta de té, café y mate durante el día anterior. No realizar grandes ingestas ni fumar durante la noche anterior. Al cuarto día, continuando con el régimen concurrir al laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas, a las 8:00 de la mañana. En el laboratorio deberá permanecer 30 minutos en reposo, sentado, antes de obtener la muestra. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Normotenso: 30 a 400 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
09.02.2026 |
NORME |
NORMETANEFRINA, ORINA 24 HS |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina de 24 horas con el conservante, refrigerada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
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| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
• Intervalo de referencia: Hombres: 3 a 8 años: 34 a 169 ug/24 hs 9 a 12 años: 84 a 422 ug/24 hs 13 a 17 años: 91 a 456 ug/24 hs 18 a 29 años: 103 a 390 ug/24 hs 30 a 39 años: 111 a 419 ug/24 hs 40 a 49 años: 119 a 451 ug/24 hs 50 a 59 años: 128 a 484 ug/24 hs 60 a 69 años: 138 a 521 ug/24 hs Mayor de 70 años: 148 a 560 ug/24 hs Hipertensos: Menor de 900 ug/24 hs
Mujeres: 3 a 8 años: 29 a 145 ug/24 hs 9 a 12 años: 55 a 277 ug/24 hs 13 a 17 años: 57 a 286 ug/24 hs 18 a 29 años: 103 a 390 ug/24 hs 30 a 39 años: 111 a 419 ug/24 hs 40 a 49 años: 119 a 451 ug/24 hs 50 a 59 años: 128 a 484 ug/24 hs 60 a 69 años: 138 a 521 ug/24 hs Mayor de 70 años: 148 a 560 ug/hs Hipertensas: Menor de 900 ug/24 hs
Los intervalos de referencia no están establecidos para pacientes menores de 3 años.
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Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
OIDOE |
CULTIVO BACT. OIDO EXTERNO (exclusivo INTERLAB ) |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: • 4 Hisopos estériles de madera con punta de algodón. • 2 Tubos con medio de transporte de Stuart (solicitar al laboratorio). • 2 Portaobjetos desengrasados. Sólo para cultivo micológico: • 2 Hisopos estériles de madera con punta de algodón. • 2 Tubos estériles secos. • 2 Tubos con 1,0 mL de Solución Fisiológica estéril. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE).? Procedimiento: Es necesario obtener muestras de ambos oidos y remitirlas por separado al laboratorio.? Introducir el hisopo en el canal auditivo sin contaminarlo con el pabellón auricular. Con el material obtenido efectuar un extendido. ? Con el segundo hisopo obtener otra muestra en el mismo oído y colocar el hisopo en el tubo con medio de transporte.? Repetir el mismo procedimiento con el oído, utilizando un nuevo portaobjeto y medio de transporte. ?Tapar cuidadosamente los tubos e indicar fehacientemente, en tubos y extendidos a cual de los oídos corresponde cada muestra.? Si se solicita además cultivo micológico repetir los mismos procedimientos en ambos oídos y colocar los hisopos en un tubo estéril seco y en la Solución Fisiológica estéril, respectivamente para cada oído.
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Instrucciones al paciente |
Suspender todo tratamiento antibiótico (oral o local) 72 horas antes de la toma de la muestra salvo indicación médica
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| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
01.03.2018 |
OJO |
CULTIVO BACT. H. CONJUNTIVAL (exclusivo INTERLAB) |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: • Hisopos estériles de madera con punta de algodón. • Tubos con medio de transporte de Stuart (solicitar al laboratorio). • Portaobjetos desengrasados. . El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE).• Procedimiento: . Es necesario obtener muestras de ambos ojos y remitirlas por separado al laboratorio Visualizar el fondo de saco conjuntival inferior y con un hisopo estéril obtener material de secreción, tratando de no contaminarlo con zonas adyacentes. Con este material, efectuar un extendido. Con el segundo hisopo obtener otra muestra y colocar el hisopo en el tubo con medio de transporte. Repetir el mismo procedimiento con el ojo contralateral, utilizando un nuevo portaobjeto y medio de transporte. Tapar cuidadosamente los tubos e indicar fehacientemente, en tubos y extendidos a cual de los ojos corresponde cada muestra. Si se solicita además investigar Clamydia trachomatis realizar un tercer hisopado con el hisopo de dacron y colocar en un tubo seco estéril y taparlo. |
Instrucciones al paciente |
Suspender todo tratamiento antibiótico (oral o local) 72 horas antes de la toma de la muestra salvo indicación médica • Concurrir al Laboratorio sin higienizar los ojos, ni usar maquillaje.
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| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
01.03.2018 |
OMBU |
ORTHO-METIL BUFOTENINA, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
12 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina de 24 horas refrigerada (4°C-8°C) en envase plástico (polipropileno o similares). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua.
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
TMS (Espectrometría de masas en tándem) |
Valores de referencia |
Hasta 0,5 ug/24 horas |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
ONCOP |
AC. ANTI AG ONCONEURONALES PANEL (Anfifisina, CV2. PNMA2, Ri, Yo, Hu, Recoverina, SOX1, Titina, Zic4 |
Plazos |
18 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir 0.5 ml de suero refrigerado |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoblot |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
OPIO |
OPIACEOS, ORINA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
“MEDICINA LABORAL: Instrucciones para la obtención de muestras de alcohol y drogas de abuso: Solicitar al laboratorio de referencia el formulario (triplicado) para recolección de datos. 1. Cortar el agua del toilette o encintar las canillas. 2. Identificar fehacientemente a la persona con DNI o CI. 3. Anotar los datos personales en el formulario e identificar a la persona con un código. 4. Entregar a la persona un recipiente para la recolección de orina y solicitarle que recoja una muestra en el toilette. 5. Tomar inmediatamente la temperatura de la muestra y consignarla en el formulario: sin este dato la muestra quedará invalidada. 6. Fraccionar la muestra en un tubo de Kahn y refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C). 7. Identificar las muestras con el código de identificación (NO con el nombre). 8. Indicar en el formulario que determinaciones se solicitan. 9. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad, refrigerada (4°C-8°C) en envase térmico con refrigerante. la tercera hoja del formulario (que no tiene el nombre del paciente) . Retener otra alícuota en el laboratorio. SEDES AMBULATORIAS: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad (ver instrucciones para el paciente). |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio con una retención urinaria de 3 hs, como mínimo. La muestra de orina se obtendrá en el Laboratorio. |
| Método |
Kinetic Interaction of Microparticles in solution (KIMS) |
Valores de referencia |
Negativo. Valor de corte: 200 ng/mL Detecta Morfina y sus metabolitos en orina |
Modificado/Vigencia |
22.05.2018 |
ORIS |
ORINA COMPLETA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio una alícuota de 10 mL de la primera orina de la mañana (mínimo 3 horas de retención), en un tubo de base redonda, con 1 gota de ácido bórico al 5% (p/v). (ver INSTRUCCIONES PARA PACIENTES). |
Instrucciones al paciente |
Para realizar este estudio debe proveerse de un recipiente de plástico estéril: 1. Observar una retención urinaria de toda la noche si le es posible; sino, trate de cumplir una retención de 3 horas como mínimo. 2. Al levantarse recolecte la primer orina de la mañana en el envase plástico. Es conveniente no efectuar la recolección de orina durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de recolectar la muestra. 3. Tape el envase, asegurándose de haber cerrado bien la tapa. Adhiera un rótulo con su nombre y apellido completos y lleve la orina al Laboratorio. Recolección de Orina con Bolsa Colectora (Niños):Lave la zona genital solo con agua y jabón neutro.Secado: Con toalla de papel de adelante hacia atrás. No use talcos, cremas ni toallitas húmedas. Abra el envase sin tocar el interior de la bolsa. Varones: Introduzca el pene en la bolsa y pegue el adhesivo a la piel de alrededor. Mujeres: Pegue el adhesivo rodeando la vulva, desde abajo hacia arriba. Pañal: Colóquelo flojo para no aplastar la bolsa. Luego de orinar retire la bolsa con cuidado y pegue el adhesivo sobre sí mismo para sellarla. Frasco: Coloque la bolsa entera dentro del frasco estéril (no pase el líquido de un envase a otro). |
| Método |
Analisis fisico-quimico y Microscopía |
Valores de referencia |
Color: Amarillo ámbar. Aspecto: Límpido. Densidad: 1.005 a 1.035. pH: 4,8 a 7,4. Proteínas: Negativo. Glucosa: Negativo. Cetonas: Negativo. Hemoglobina: Negativo. Bilirrubina: Negativo. Urobilinógeno: Normal.
Examen Microscópico: Leucocitos: menos de 3 por campo de 40x. Hematíes: Menos de 3 por campo 40x. Cilindros: Negativo Cristales: Negativo. |
Modificado/Vigencia |
01.09.2026 |
OSMOR |
ORINA, OSMOLARIDAD |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir una alícuota de 3 ml de orina espontánea en tubo de kahn.
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Instrucciones al paciente |
Recoger orina espontánea en un envase de boca ancha limpio y seco, que no haya contenido detergentes o mayonesa. |
| Método |
Descenso Crioscópico |
Valores de referencia |
300 a 800 mOsm/Kg
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Modificado/Vigencia |
31.03.2023 |
OSMSA |
SANGRE, OSMOLARIDAD |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir 1,0 ml de suero
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Descenso Crioscópico |
Valores de referencia |
275 a 300 mOsm/Kg
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Modificado/Vigencia |
31.03.2023 |
OSTEC |
OSTEOCALCINA, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero congelado (-18°C a -20°C). Muestras opcionales:: heparina de liltio o EDTA
“ENVIAR TUBO EXCLUSIVO PARA ESTA DETERMINACION” |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Mujer premenopáusica: 11.0 a 43.0 |
Modificado/Vigencia |
17.10.2024 |
OX24 |
ACIDO OXALICO, ORINA 24 HORAS |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio en tubo cónico 15 ml de orina de 24 horas refrigerada.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Electroforesis capilar |
Valores de referencia |
9,7 a 40.5 mg/24 hs |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
OXCA |
OXCARBAZEPINA, SUERO |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC-UV (Cromatografía Líquida de Alta Performance, con detección ultravioleta) |
Valores de referencia |
Rango terapéutico : 10 a 45 ug/ml
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Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
P1433 |
PROTEINA 14-3-3 (ENFERMEDAD DE CREUTZFELDT-JAKOB), LCR |
Plazos |
90 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir 1.0 ml de LCR en trubo de polipropileno (evitar enviar tubos de vidrio). La muestra no debe contener vestigios de sangre. Es condición indispensable para la realización del estudio que se adjunte la Ficha de Datos para PROTEINA 14-3-3 con sello y firma del médico tratante.
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Instrucciones al paciente |
N/A |
| Método |
Western Blot |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
14.05.2026 |
PAFEN |
PARA-AMINOFENOL, ORINA |
Plazos |
7 |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 15 ml de orina post jornada laboral |
Instrucciones al paciente |
N/A |
| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
Indice Biológico de Expocición: Menor de 50 mg/g creatinina |
Modificado/Vigencia |
12.09.2025 |
PAFRE |
PARASITOLOGICO EN FRESCO, MATERIA FECAL |
Plazos |
2 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Solicitar al laboratorio analítico la Solución Acética Formolada (SAF). Remitir al laboratorio analítico materia fecal recién obtenida en el envase con SAF.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio solicitar al laboratorio un envase con la solución de conservación y transporte (SAF). No adquirir este envase en farmacias, puede contener otro conservante. Proveerse de un recipiente para recoger la deposición (chata, palangana, etc).
Instrucciones para obtener las muestras: Obtener material de cualquier deposición del día en el recipiente limpio, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té de la materia fecal y colocarlo en el envase. Conservar a temperatura ambiente, hasta llevar al laboratorio.
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| Método |
Microscópico |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
02.12.2025 |
PAIP |
GEN DEL INHIBIDOR DEL ACTIVADOR DEL PLASMINOGENO (PAI), POLIMORFISMO 4G / 5G, SANGRE PERIFÉRI |
Plazos |
25 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 ml de sangre entera con EDTA, preferentemente en el dia de obtencion de la muestra
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
•Genotipo homocigoto 4G/4G: marcador de riesgo en ambos alelos • Genotipo heterocigoto 4G/5G: marcador de riesgo en un solo alelo •Genotipo Homocigoto 5G/5G: no presenta marcador de riesgo. |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
PARA |
PARACETAMOL |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1.0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra.
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| Método |
Enzimatico |
Valores de referencia |
Rango terapeutico 10-30 ug/ml - Nivel Toxico: mayor a 200 ug/ml
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Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
PARAC |
PARACOCCIDIOIDES BRASILIENSIS, ANTICUERPOS, SUERO |
Plazos |
19 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Ouchterlony (doble difusión) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
06.01.2023 |
PARGI |
PAROTIDITIS HUMANA VIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 9.0 UA/ml Dudoso: 9.0 a 11.0 UA/ml Positivo: Mayor a 11.0 UA/ml |
Modificado/Vigencia |
27.11.2025 |
PARMF |
PARASITOLOGICO, MATERIA FECAL |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Solicitar al laboratorio analítico la Solución Acética Formolada (SAF). Remitir al laboratorio analítico 3 a 5 muestras de materia fecal obtenida en días alternados durante 7 a 10 días, en envase con SAF. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio solicitar al laboratorio un envase con la solución de conservación y transporte (SAF). No adquirir este envase en farmacias, puede contener otro conservante. Proveerse de un recipiente para recoger la deposición (chata, palangana, etc).
Instrucciones para obtener las muestras: Durante 7 a 10 días (no más) obtener material de 3 a 5 deposiciones recogidas en días alternados (por ej,: Lunes, Miércoles y Viernes). Obtener cada deposición en un recipiente limpio, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té de la materia fecal y mezclarla bien con el líquido conservante. Colocar el material de las siguientes deposiciones en el mismo envase. Conservar a temperatura ambiente, hasta llevar al laboratorio. |
| Método |
Observación Microscópica |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
04.09.2025 |
PARMI |
PAROTIDITIS HUMANA VIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.9 |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
PARS |
PARASITOS SUPERIORES |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico materia fecal u otro material recogido en un envase estéril que contenga solución fisiológica o agua
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Instrucciones al paciente |
Remitir al laboratorio el material sospechoso diluido en Solución Fisiológica o en agua corriente, nunca con alcohol. El envase debe ser estéril o bien uno muy limpio asegurándose que no tenga restos de detergentes,lavandina ni alcohol. Cuidar que el recipiente quede bien cerrado.
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| Método |
Microscópico |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
04.09.2024 |
PARVG |
PARVOVIRUS B19, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.90 U/ml Dudoso: 0.90 a 1.10 U/ml Positivo: Mayor a 1.10 U/ml |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
PARVO |
PARVOVIRUS B19, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.90 U/ml Dudoso: 0.90 a 1.10 U/ml Positivo: Mayor a 1.10 U/ml |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
PB |
PLOMO, SANGRE |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3 ml de sangre periférica heparinizada, sin separar el plasma. NO SE ACEPTAN MUESTRAS EN JERINGAS- DEBEN SER ENVIADAS EN TUBOS |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotometría de Absorción Atómica (atomización en horno de grafito |
Valores de referencia |
Indice Biológico de Exposición: hasta 30.0 ug/dl |
Modificado/Vigencia |
14.07.2022 |
PBDAV |
ANTICUERPOS HETERÓFILOS (PAUL - BUNNELL - DAVIDSON), SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Paul-Bunnell-Davidson |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
PBG |
PORFOBILINOGENO, CUANTITATIVO, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 100 mL de orina de 24 horas obtenida y conservada al abrigo de la luz, a temperatura ambiente (18°C a 25°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: • Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. • Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros), si es posible de color caramelo o verde oscuro.. Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Si no es posible encontrar recipientes oscuros, envolverlos en papel de aluminio o papel negro, para evitar el contacto de la muestra con la luz. • Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. • Recolectar orina de 24 horas. Recolección de orina de 24 horas: 1. En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2. A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada al abrigo de la luz y en lugar fresco, preservándola del calor. 3. Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4. En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5. Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible, siempre al abrigo de la luz. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas. |
| Método |
Cromatografía de intercambio iónico. Espectrofotométrico. |
Valores de referencia |
0.5 a 2.1 mg/24 hs |
Modificado/Vigencia |
13.01.2020 |
PBGCL |
PORFOBILINOGENO, CUALITATIVO, ORINA |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio una alícuota de 20 mL de la primera orina de la mañana (mínimo 3 horas de retención), dividida en 3 tubos cónicos de 10 mL cada uno. Las muestra deben ser remitidas al abrigo de la luz. |
Instrucciones al paciente |
Para realizar este estudio debe proveerse de un recipiente de plástico rígido de boca ancha, con tapa hermética de rosca, de alrededor de 0,250 litros de capacidad. El recipiente (envase y tapa) debe estar totalmente limpio, sin restos de mayonesa, champú, etc. -No usar envases que hayan contenido lavandina, detergentes, agua oxigenada o dulces Instrucciones: 1. Observar una retención urinaria, de toda la noche si le es posible; si no, trate de cumplir una retención de 3 horas como mínimo. 2. Al levantarse recolecte la primer orina de la mañana en el envase plástico. 3. Tape el envase, asegurándose de haber cerrado bien la tapa. Adhiera un rótulo con su nombre y apellido completos y lleve la orina en al Laboratorio al abrigo de la luz. No se aceptarán envases con orina derramada.
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| Método |
Colorimétrico de Watson y Schwartz |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
PBUR |
PLOMO, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico dos alícuotas de 15 ml c/u de orina espontánea en tubos plásticos mas una alícuota de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral.
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Instrucciones al paciente |
Instrucciones: Recolectar la orina al final del turno o de la semana laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio.
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| Método |
Absorción Atómica |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica: hasta 150 mcg/g creatinina. |
Modificado/Vigencia |
29.12.2021 |
PCCHT |
CHLAMYDIA TRACHOMATIS, ADN, CUALITATIVO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba según la localización a analizar (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Se aceptan muestras de : orina (primer chorro) , hisopados endocervical uretral,conjuntival y anal, semen y biopsias . Las muestras de orina deben ser recolectadas en envases de polipropileno con tapa hermética, sin conservantes de ningún tipo. No utilizar orinas con conservantes. Para muestras de tracto genital (femenino o masculino) , conjuntiva y anales enviar la muestra en tubo con medio de transporte exclusivo. Utilizar el hisopos con punta de fibras de rayón o dacrón, con mango de plástico que viene con el kit. Respetar cuidadosamente las instrucciones sobre conservación y transporte de las muestras. La congelación de las muestras o su conservación prolongada pueden afectar la performance del método.
Instrucciones para la obtención de muestras:
ORINA (MUJERES Y VARONES): Controlar el tiempo de retención observado. Obtener una muestra de primer chorro de orina (aproximadamente 5 a 10 ml) en un envase plástico estéril (polipropileno o similares), sin conservantes de ningún tipo, con tapa a rosca. Conservar y transportar las muestras refrigeradas (4°C a 8°C) asegurarse de que el período de conservación a temperatura ambiente no exceda las 24 horas. Si el paciente además tiene solicitado un MICIN, se debe separar una porción de la orina en un tubo de khan para enviar a MANLAB y el frasco con el resto enviar a bacterio.
TRACTO GENITAL (ENDOCERVICAL O URETRAL FEMENINO O MASCULINO): Introducir un hisopo en el canal endocervical, o en la uretra haciéndolo rotar unos 15 a 30 segundos en ambas direcciones, para asegurar la obtención de células cilíndricas y cilíndrico-pavimentosas. Antes de la obtención de muestras endocervicales limpiar cuidadosamente la mucosidad excesiva del orificio cervical con un hisopo, gasa o algodón. Colocar los hisopos en tubo con el medio de transporte. Cortar el hisopo a la altura de la marca de corte, haciendo palanca sobre el tubo. Tapar los tubos herméticamente y rotular. Refrigerar a 4°C - 8°C hasta su envío dentro de las 24 hs.
MUESTRAS CONJUNTIVALES Y ANALES: Limpiar la zona y tomar la muestra con hisopo por rotación. Colocar los hisopos en el tubo con el medio de transporte. Cortar el hisopo a la altura de la marca de corte, haciendo palanca sobre el tubo. Tapar los tubos herméticamente y rotular. Refrigerar a 4°C – 8°C hasta su envío dentro de las 24 hs
SEMEN: Remitir en frasco estéril.
BIOPSIA: Remitir en solución fisiológica.
HISOPADO NASOFARINGEO: Colocar el hisopo en el tubo con el medio de transporte. Cortar el hisopo a la altura de la marca de corte, haciendo palanca sobre el tubo. Tapar los tubos herméticamente y rotular. Refrigerar a 4°C – 8°C hasta su envío dentro de las 24 hs.
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Instrucciones al paciente |
Cualquiera sea el caso, es necesario interrumpir cualquier tratamiento antibiótico 72 horas antes de la obtención de las muestras, excepto expresa indicación del médico. Las instrucciones específicas son diferentes según el tipo de investigación solicitado por el médico.
ORINA (MUJERES Y HOMBRES): Obtener una muestra de primer chorro de orina (aproximadamente 5 a 10 ml) en un envase plástico estéril (polipropileno o similares), sin conservantes de ningún tipo, con tapa a rosca. Conservar y transportar la muestra refrigerada (4ºC a 8ºC), asegurarse de que el período de conservación no exceda las 24 hs. En caso que también tenga solicitado un estudio de hisopado uretral debe concurrir al laboratorio con una retención urinaria de toda la noche o de dos horas como mínimo, para obtener la muestra de orina en el laboratorio.
HISOPADOS ENDOCERVICAL O URETRAL (MUJERES O VARONES) Mujeres: Programar la realización en fechas alejadas del período menstrual, excepto indicación del médico. Si está embarazada la muestra debe ser obtenida por su médico. Observar una abstinencia sexual de 72 hs, antes del estudio. Desde la noche anterior no utilizar duchas vaginales, ni aplicarse desodorantes, cremas vaginales o talco. Antes de concurrir al laboratorio realizar una meticulosa higiene vulvar (externa) con agua y jabón siempre de adelante hacia atrás, nunca en sentido inverso para evitar la contaminación. Para muestras uretrales (mujeres) no orinar durante dos horas como mínimo antes de concurrir al laboratorio. Varones: Observar una retención urinaria de toda la noche o si no es posible, de 3 horas como mínimo. Antes de concurrir al laboratorio efectuar una meticulosa higiene genital con el prepucio retraído, tres veces, con agua y jabón. Enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel.
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| Método |
PCR (Polymerase Chain Reaction) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
26.06.2026 |
PCHEM |
GEN HFE (HEMOCROMATOSIS), MUTACIONES C282Y /H63D/S65C, SANGRE PERIFÉRICA |
Plazos |
35 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 5 ml de sangre periférica con EDTA, de lunes a jueves.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio de lunes a jueves No requiere ayuno. |
| Método |
PCR |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
PCRC |
HEPATITIS C ARN CUALITATIVO |
Plazos |
10 Dias hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 3,0 ml de plasma con EDTA |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
No Detectable |
Modificado/Vigencia |
11.07.2025 |
PCRCVC |
CORONA VIRUS 2019-nCov PCR |
Plazos |
2 Día hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras recomendadas son aquellas del tracto respiratorio bajo, incluyendo esputo, lavado broncoalveolar y aspirado traqueal (cuando sea posible según los criterios médicos). Sin embargo, cuando no es posible la toma de estas muestras, las del tracto respiratorio alto también son útiles, como ser hisopado nasofaríngeo combinado con un hisopado orofaríngeo (los hisopos deben colocarse y transportarse en el mismo tubo con medio de transporte viral). Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con: • Hisopos estériles con punta de poliéster o dacron, nunca de madera con punta de algodón. • Tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0,5 mL (mínimo) y 1,0 mL (máximo) de solución fisiológica de uso parenteral estéril. Serán rechazadas las muestras que no se hayan conservado refrigeradas, las que haya sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias. Instrucciones: SECRECIONES NASALES O FARÍNGEAS • Obtener las muestras de los orificios nasales profundos (hisopado nasal) o de la faringe (hisopado faríngeo).Por cada tipo de muestra (nasal o faríngea) recolectar dos hisopos. • Colocar ambos hisopos en el tubo con solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente y rotular. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARÍNGEOS O BRONQUIALES • Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante.
Condiciones de la derivación: 1°- Antes de remitir un caso sospechoso el mismo deberá estar notificado por el médico tratante en el Sistema Nacional de Vigilancia de la Salud (SNVS 2.0) dentro del grupo de las Infecciones respiratorias agudas (IRAS) en el evento Sospecha de Virus Emergente. 2°- Se deberá enviar la Ficha Epidemiológica completada por el médico |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
13.04.2024 |
PCRIT |
PROTEINA C REACTIVA, CUANTITATIVA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimetría |
Valores de referencia |
Hasta 5,0 mg/L |
Modificado/Vigencia |
31.10.2014 |
PCRMA |
MICOBACTERIAS ATIPICAS, ADN |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El test puede realizarse en las siguientes muestras: • Material de biopsia • 5,0 mL de sangre periférica con EDTA • Líquidos de lavado broncoalveolar • Líquido cefalorraquídeo (200 ul), etc. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR (Polymerase Chain Reaction) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
25.07.2024 |
PCRPI |
VIRUS PARAINFLUENZA TIPO 1-2-3 RNA, secreciones respiratorias |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras deben ser recolectadas en tubo nuevo, con rótulo que indique claramente qué tipo de muestra del tracto respiratorio se envía (Hisopados,aspirados, etc). Conservar en heladera hasta el momento de envío. Enviar en recipiente bien cerrado, de tamaño acorde al volumen remitido, dentro de bolsa térmica y con refrigerante. |
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
02.05.2024 |
PCRUS |
PROTEINA C REACTIVA ULTRASENSIBLE, SUERO |
Plazos |
1 Dia hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico |
Valores de referencia |
Hasta 5.00 mg/dl
Evaluación de riesgo relativo de cardiopatía coronaria, según CDC y AHA. Hasta 1.00 mg/dl: Riesgo bajo De 1.00 a 3.00 mg/dl: Riesgo promedio Mas de 3.00 mg /dl: Riesgo alto |
Modificado/Vigencia |
11.08.2026 |
PCRVE |
VEROTOXINAS, GENES STX1 y STX2 |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Requiere un proceso previo, que se realiza en Bacteriologia.
"REMITIR AL LABORATORIO DE BACTERIOLOGIA" |
Instrucciones al paciente |
Recolectar una muestra de materia fecal en frasco estéril de boca ancha.
Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas.
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| Método |
PCR Real Time para secuencias stx/stx2 (USDA) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
31.08.2026 |
PCRVS |
VIRUS SINCICIAL RESPIRATORIO RNA , secreciones respiratorias |
Plazos |
2 Días Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras deben ser recolectadas en tubo nuevo, con rótulo que indique claramente qué tipo de muestra del tracto respiratorio se envía (Hisopados,aspirados, etc). Conservar en heladera hasta el momento de envío. Enviar en recipiente bien cerrado, de tamaño acorde al volumen remitido, dentro de bolsa térmica y con refrigerante. |
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
RT PCR Real Time |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
02.05.2024 |
FIBRINOGENO, PRODUCTOS DE DEGRADACIÓN, PLASMA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día al Laboratorio proceso 1.0 ml de plasma citratado congelado. Mandar a la Suizo domingos y feriados.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Aglutinació de Latex |
Valores de referencia |
Menor de 5 ug/ml
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Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
PENTU |
2,3,4,5,6 - PENTACLOROFENOL, ORINA |
Plazos |
12 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 50 mL de orina espontánea en envase plástico a temperatura ambiente (18°C-25°C). Instrucciones: Recolectar la orina al final del turno o de la semana laboral. Utilizar preferentemente envases de polipropileno o similares. Evitar el uso de envases de vidrio. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Valor máximo permisible: 1,0 mg/g creatinina. |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
PEPC |
PEPTIDO C, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
0.90 a 4.00 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
12.08.2025 |
PEPCU |
PEPTIDO C, ORINA |
Plazos |
3 Día hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 ml de orina de 24 horas en tubo de kahn a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Inmunoensayo por quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 156 mcg/24 hs |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
PI1AG |
PARAINFLUENZA TIPO I, ANTIGENO, SECRECIONES RESPIRATORIAS |
Plazos |
Al día siguiente. SI LA MUESTRA LLEGA AL LABORATORIO ANTES DE LA 14 HS . |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0.5 ml (mínimo) y 1.0 ml (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras que no se hayan conservado refrigeradas, las que hayan sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias.
Instrucciones: ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARINGEOS O BRONQUIALES:Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. No se recibirán jeringas, ni sondas, ni cánulas con el materia a analizar. Si llega una cánula el Laboratorio se procederá mediante una jeringa y una aguja a lavar la cánula con 0.5 ml de solución fisiológica y recoger este material en el tubo plástico debidamente etiquetado. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
IFD (Inmunofluorescencia directa) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
PI2AG |
PARAINFLUENZA TIPO II, ANTIGENO, SECRECIONES RESPIRATORIAS |
Plazos |
Al día siguiente. SI LA MUESTRA LLEGA AL LABORATORIO ANTES DE LA 14 HS . |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0.5 ml (mínimo) y 1.0 ml (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras que no se hayan conservado refrigeradas, las que hayan sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias.
Instrucciones: ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARINGEOS O BRONQUIALES:Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. No se recibirán jeringas, ni sondas, ni cánulas con el materia a analizar. Si llega una cánula el Laboratorio se procederá mediante una jeringa y una aguja a lavar la cánula con 0.5 ml de solución fisiológica y recoger este material en el tubo plástico debidamente etiquetado. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
IFD (Inmunofluorescencia directa) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
PI3AG |
PARAINFLUENZA TIPO III, ANTIGENO, SECRECIONES RESPIRATORIAS |
Plazos |
Al día siguiente. SI LA MUESTRA LLEGA AL LABORATORIO ANTES DE LA 14 HS . |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0.5 ml (mínimo) y 1.0 ml (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras que no se hayan conservado refrigeradas, las que hayan sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias.
Instrucciones: ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARINGEOS O BRONQUIALES:Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. No se recibirán jeringas, ni sondas, ni cánulas con el materia a analizar. Si llega una cánula el Laboratorio se procederá mediante una jeringa y una aguja a lavar la cánula con 0.5 ml de solución fisiológica y recoger este material en el tubo plástico debidamente etiquetado. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
IFD (Inmunofluorescencia directa) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
PLA2R |
RECEPTOR DE FOSFOLIPASA A2, ANTICUERPOS IGG |
Plazos |
21 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1.0 ml de suero |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno |
| Método |
ELISA |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 14 UR/ml Indeterminado: De 14 a 19 UR/ml Positivo: Mayor de 20 UR/ml |
Modificado/Vigencia |
30.07.2026 |
PLASC |
PLASMINOGENO, SANGRE |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Enviar antecedentes clínicos o resumen de historia clínica. Indicar si el paciente recibe anticoagulantes orales o heparina. |
| Método |
Cinético |
Valores de referencia |
70 a 130 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
PLT |
PLAQUETAS, RECUENTO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 2,0 ml de sangre con EDTA. Es indispensable que el tubo tenga tapón de goma. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Analizador Mindray 6800 plus con tecnología SF Cube |
Valores de referencia |
150.000 a 440.000/mm³ |
Modificado/Vigencia |
30.03.2026 |
PLTCI |
PLAQUETAS EN TUBO DE CITRATO |
Plazos |
1 Dia hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio 2.0 ml de sangre entera citratada. Corroborar que la órden tenga solicitado un hemograma. Remitir 2 frotis, uno de sangre con EDTA y otro de sangre con citrato. Enviar ambas muestras (citrato y EDTA) juntas. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Analizador Mindray 6800 plus con tecnología SF Cube |
Valores de referencia |
150.000 a 440.000/mm³ |
Modificado/Vigencia |
30.03.2026 |
PMIOS |
PANEL DE ANTICUERPOS PARA MIOSITIS |
Plazos |
27 Día hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Enviar al Laboratorio 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
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| Método |
Inmunoblott |
Valores de referencia |
Negativo El panel incluye: Mi-2alfa, Mi-2beta, TIF-1, MDA5, NXP2, SAE1, Ku, PM-Scl100, PM-Scl75, Jo-1, SRP, PL-7, PL-12, EJ, OJ, Ro-52, cN-1A, Ha, Ks, Zo |
Modificado/Vigencia |
13.10.2025 |
PNEIG |
CHLAMYDIA PNEUMONIAE, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimoinmunoensayo (ELISA) |
Valores de referencia |
Interpretación del resultado
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Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
PNEIM |
CHLAMYDIA PNEUMONIAE, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimoinmunoensayo (ELISA) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 9
|
Modificado/Vigencia |
15.02.2019 |
PORUR |
UROPORFIRINAS |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 50 mL de orina de 24 horas obtenida y conservada al abrigo de la luz. Enviar refrigerado. Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: • Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. • Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros), si es posible de color caramelo o verde oscuro.. Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Si no es posible encontrar recipientes oscuros, envolverlos en papel de aluminio o papel negro, para evitar el contacto de la muestra con la luz. • Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. • Recolectar orina de 24 horas. Recolección de orina de 24 horas: 1. En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2. A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada al abrigo de la luz y en lugar fresco, preservándola del calor. 3. Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4. En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5. Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible, siempre al abrigo de la luz. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas. |
| Método |
Espectrofotométrico |
Valores de referencia |
0 a 26 ug/24 hs |
Modificado/Vigencia |
13.01.2020 |
PPD |
PPD, INTRADERMOREACCIÓN (CONSULTAR SEDES DISPONIBLES) |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Con jeringa de tuberculina y aguja calibre 27 aplicar 0.1 mL (2 UT) en la cara externa del antebrazo en forma intradérmica, de tal manera que se produzca un habón blanquecino y elevado. Evitar la inyección subcutánea (falsos negativos). Leer la reacción a las 72 horas; ante una prueba positiva medir el tamaño de la induración, sin el eritema. “Programar la aplicación de la PPD de modo que la lectura (72 hs) no coincida con domingos o días feriados.”
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Instrucciones al paciente |
El paciente debe concurrir a alguna de las siguientes sedes: Caballito, Palermo Hollywood, Recoleta, Belgrano I, Once, Liniers, Plaza Italia, a las 72 hs deberá volver a concurrir para la lectura de la reacción. “Planifique el día de la aplicación teniendo en cuenta que el día de control (72 hs posteriores a la aplicación) no coincida con un domingo o feriado". |
| Método |
INTRADERMOREACCION |
Valores de referencia |
Población general:
|
Modificado/Vigencia |
13.10.2026 |
PR3 |
ANTICUERPOS ANTI - PROTEINASA 3, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 5 U/mL Positivo: Mayor o igual de 5 U/ml
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Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
PRH24 |
PROTEINURIA, ORINA 24 HS |
Plazos |
1 dia habil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 5 ml de orina de 24 horas tubos de kahn a temperatura ambiente (18°C a 20°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Turbidimétrico |
Valores de referencia |
Hasta 0.15 g/24 hs |
Modificado/Vigencia |
17.06.2026 |
PRIMI |
PRIMIDONA, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
HPLC-UV (Cromatografía Líquida de Alta Performance, con detección ultravioleta) |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 5 a 12 mcg/mL |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
PRL |
PROLACTINA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Recomendaciones: Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. La extracción debe realizarse entre las 7.30 y 9.00 hs de la mañana,con un reposo previo de 20 min en el Laboratorio. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. La extracción debe realizarse entre las 7.30 y 9.00 hs de la mañana,con un reposo previo de 20 min en el Laboratorio. |
| Método |
Quimiolumiscencia.Este método presenta baja reactividad con las formas macromoleculares de pr |
Valores de referencia |
Hasta 1 mes: 3.7 a 81.0 ng/ml De 1 a 11 meses: 0.7 a 29.0 ng/ml De 1 a 12 años: 2.3 a 13.0 ng/ml Mayores de 12 años: Hombres: 2.1 a 17.7 ng/ml Mujeres: 2.8 a 29.2 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2026 |
PRLSC |
MACROPROLACTINA, SCREENING, SUERO |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. La extracción debe realizarse entre las 7.30 y 9.00 hs de la mañana, con un reposo previo de 20 min en el laboratorio. |
| Método |
Cuantificación de Prolactina post precipitación con PEG |
Valores de referencia |
•Recuperación menor de 40%: Sospecha de macroprolactinemia. • Recuperación 40% a 60%: Zona indefinida, confirmar por cromatografía. • Recuperación mayor de 60%: Descarta macroprolactinemia. |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
PROBNU |
PRECURSOR PEPTIDO NATRIURETICO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir como mínimo 0.5 ml de plasma con heparina o suero. Si es una urgencia, remitir al laboratorio de Proceso (Otamendi) Si la muestra no es URGENTE, remitir a División Analítica. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
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| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 125 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
15.05.2026 |
PROCA |
PROCALCITONINA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir como mínimo 0.5 ml de de suero. Acondicionar la muestra con remito que indique San Lucas y entregarla al chofer. Mandar mail de aviso a recepción y laboratorio San Lucas |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Menor de 0.5 ng/ml: Riesgo bajo de progreción a infección sistémica severa |
Modificado/Vigencia |
21.08.2025 |
PROG |
PROGESTERONA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Recomendaciones: En las personas del sexo femenino realizar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre los días 19 A 21 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre los días 19 a 21 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día.
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| Método |
Quimiolumiscencia |
Valores de referencia |
Sexo masculino, adulto : 0.28 a 1.22 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
10.02.2026 |
PROGR |
PROGESTERONA RÁPIDA, SUERO |
Plazos |
En el día |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimiolumiscencia |
Valores de referencia |
Sexo masculino, adulto : 0.28 a 1.22 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
23.08.2023 |
PROPX |
PROPOXIFENO, ORINA |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
“MEDICINA LABORAL: Instrucciones para la obtención de muestras de alcohol y drogas de abuso: Solicitar al laboratorio de referencia el formulario (triplicado) para recolección de datos. 1. Cortar el agua del toilette o encintar las canillas. 2. Identificar fehacientemente a la persona con DNI o CI. 3. Anotar los datos personales en el formulario e identificar a la persona con un código. 4. Entregar a la persona un recipiente para la recolección de orina y solicitarle que recoja una muestra en el toilette. 5. Tomar inmediatamente la temperatura de la muestra y consignarla en el formulario: sin este dato la muestra quedará invalidada. 6. Fraccionar la muestra en un tubo de Kahn y refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C). 7. Identificar las muestras con el código de identificación (NO con el nombre). 8. Indicar en el formulario que determinaciones se solicitan. 9. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 5 mL de orina espontánea en tubo de kahn, obtenida en condiciones de seguridad, refrigerada (4°C-8°C) en envase térmico con refrigerante. la tercera hoja del formulario (que no tiene el nombre del paciente) . Retener otra alícuota en el laboratorio. SEDES AMBULATORIAS: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina., obtenida en condiciones de seguridad (ver instrucciones para el paciente). |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio con una retención urinaria de 3 hs, como mínimo. La muestra de orina se obtendrá en el Laboratorio. |
| Método |
Kinetic Interaction of Microparticles in solution(KIMS) |
Valores de referencia |
Negativo. Valor de corte: 300 ng/mL |
Modificado/Vigencia |
12.12.2025 |
PROSL |
PROTEINA S LIBRE, FRACCION FUNCIONALMENTE ACTIVA |
Plazos |
2 Dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 5-Adjuntar planilla con datos clínicos |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico. |
Valores de referencia |
Mujeres adultas: 55 a 125 % Hombres adultos: 74 a 145% |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
PROTC |
PROTEINA C, PLASMA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 5- Adjuntar planilla con datos clínicos |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Cromogénico |
Valores de referencia |
70 a 140% |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
PRPOE |
PROTOPORFIRINAS ERITROCITARIA |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 10 ml de sangre con heparina |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotometria |
Valores de referencia |
15 a 100 ug/dl |
Modificado/Vigencia |
22.06.2022 |
PSA |
ANTIGENO PROSTÁTICO ESPECÍFICO (PSA), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Guardar abstinencia sexual, no someterse a tacto ni ecografía rectal las 72 horas previas al estudio, asimismo no es conveniente andar en bicicleta durante la semana previa. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 4.0 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
PSATL |
ANTIGENO PROSTATICO TOTAL Y LIBRE, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Guardar abstinencia sexual, no someterse a tacto ni ecografía rectal las 72 horas previas al estudio, asimismo no es conveniente andar en bicicleta durante la semana previa.
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| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Límite recomendado: Mayor a 0.18 para PSA total entre 4.00 y 10.00 ng/ml (Según Consenso Intersociedades sobre pautas para el Diagnóstico y Tratamiento del Cáncer de Próstata; 2016). |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
PSIGI |
CHLAMYDIA PSITACCI, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo Valor de corte 1/16 |
Modificado/Vigencia |
28.08.2024 |
PSIMI |
CHLAMYDIA PSITACCI, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo Valor de corte: 1/16 |
Modificado/Vigencia |
28.08.2024 |
PTG |
PROTEINOGRAMA, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroforesis en gel de agarosa |
Valores de referencia |
Albúmina: 3.39 a 4.63 g/dl Alfa 1 globulina: 0.18 a 0.44 g/dl Alfa 2 globulina: 0.50 a 0.95 g/dl Beta 1 globulina: 0.32 a 0.56 g/dl Beta 2 globulina: 0.20 a 0.46 g/dl Gamma globulina: 0.61 a 1.66 g/dl
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Modificado/Vigencia |
26.03.2024 |
PTG24 |
PROTEINOGRAMA, ORINA |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 5 ml de orina de 24 horas . Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
|
| Método |
Inmunoelectroforesis en gel de acetato de celulosa |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
PTHIC |
PARATHORMONA, SUERO |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero congelado (-20°C). |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
17.3 a 74.1 pg/ml
|
Modificado/Vigencia |
22.09.2025 |
PTT |
PROTEINAS TOTALES, SUERO |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico - Biuret |
Valores de referencia |
Hasta 12 meses: 4.40-7.60 g/dl 1 a 2 años: 5.6-7.5 g/dl 3 a 17 años: 6.0-8.0 g/dl Mayor de 18 años: 6.4-8.3 g/dl
|
Modificado/Vigencia |
02.12.2025 |
QUICK |
TIEMPO DE PROTROMBINA, QUICK Y RIN |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico en el día de obtenida 1.0 ml de plasma citratada. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
•Tiempo de protrombina: 70 a 120 % •RIN (Razón Internacional Normalizada): 0.90 a 1,20 |
Modificado/Vigencia |
20.02.2025 |
RAABE |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, ABEJA, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAALM |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, ALMENDRA, SUERO |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
|
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
06.01.2024 |
RAALT |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, ALTERNARIA TENUIS, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAAMB |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, AMBROSIA ELATIOR, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAAMO |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, AMOXICILINA, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAAMP |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, AMPICILINA, SUERO |
Plazos |
6 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
06.01.2024 |
RAARB |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, MEZCLA DE ARBOLES(Arce, Abedul, Roble, Olmo, Nogal), SUERO |
Plazos |
5 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
11.12.2023 |
RAASF |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, ASPERGILLUS FUMIGATUS, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
14.10.2026 |
RAASN |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, ASPERGILLUS NIGER, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable Clase 0: 0.1 a 0.34: Muy bajo: Negativo Clase I: 0.35 a 0.69: Bajo: Positivo Clase II: 0.70 a 3.49: Moderado: Positivo Clase III: 3.50 a 17.49: Alto: Positivo Clase IV: 17.5 a 52.49: Muy Alto: Positivo Clase V: 52.5 a 99.99: Muy Alto: Positivo Clase VI: Mayor de 100: Muy Alto: Positivo |
Modificado/Vigencia |
15.10.2026 |
RAAVE |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, AVENA, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
19.02.2025 |
RAAVI |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, AVISPA, SUERO |
Plazos |
6 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
06.01.2024 |
RABAN |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, BANANA, SUERO |
Plazos |
6 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
RABLO |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, BLOMIA TROPICALIS, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RACAC |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CACAO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
19.02.2025 |
RACAM |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CAMARON, SUERO |
Plazos |
6 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L |
Modificado/Vigencia |
06.01.2024 |
RACAN |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CANDIDA ALBICANS, SUERO |
Plazos |
4 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
02.11.2023 |
RACAS |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CASEINA, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 ku/l: Ausencia o indetectable Clase 0: 0.1 a 0.34 ku/l: Muy bajo: Negativo Clase I: 0.35 a 0.69 ku/l: Bajo: Positivo Clase II: 0.70 a 3.49 ku/l: Moderado: Positivo Clase III: 3.50 a 17.49 ku/l: Alto: Positivo Clase IV: 17.5 a 52.49 ku/l: Muy Alto: Positivo Clase V: 52.5 a 99.99 ku/l: Muy Alto: Positivo Clase VI: Mayor de 100 ku/l: Muy Alto: Positivo |
Modificado/Vigencia |
26.10.2023 |
RACEF |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CEFALOSPORINA, SUERO |
Plazos |
9 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
EAST (Enzimo Allegro Sorent Test) |
Valores de referencia |
Clase 0: Menor de 0.10 kU/l: No detectable Clase IV: 3.90 a 14.99 Muy alto |
Modificado/Vigencia |
12.09.2025 |
RACER |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CEREALES (Trigo, Avena, Maiz, Sésamo), SUERO |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No a requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/l Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/l Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/l Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/l Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/l Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/l Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/l Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/Ll
|
Modificado/Vigencia |
05.09.2025 |
RACHE |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CHENOPODIUM ALBUM, SUERO |
Plazos |
6 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
06.01.2024 |
RACHO |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CHOCOLATE, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RACHU |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CLARA DE HUEVO, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RACIT |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CITRICOS, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RACLA |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CLADOSPORIUM HERBARUM, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimiolumimiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 ku/l : Ausencia o indetectable Clase 0: 0.1 a 0.34 ku/l: Muy bajo: Negativo Clase I: 0.35 a 0.69 ku/l: Bajo: Positivo Clase II: 0.70 a 3.49 ku/l: Moderado: Positivo Clase III: 3.50 a 17.49 ku/l: Alto: Positivo Clase IV: 17.5 a 52.49 ku/l: Muy Alto: Positivo Clase V: 52.5 a 99.99 ku/l: Muy Alto: Positivo Clase VI: Mayor de 100 ku/l: Muy Alto: Positivo
|
Modificado/Vigencia |
02.11.2023 |
RACUC |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CUCARACHAS (Blatella germánica), SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RACYN |
ANTICUERPO IGE ESPECIFICO, CYNODON DACTILON |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
09.01.2024 |
RADAC |
ANTICUERPO IGE ESPECIFICO,DACTILIS GLOMERATA |
Plazos |
6 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
27.10.2022 |
RADFA |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, DERMATOFAGOIDES FARINAE, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RADPT |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, DERMATOFAGOIDES PTERONISIMUS, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAFRE |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, FRESNO BLANCO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
|
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
19.02.2025 |
RAFRU |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, FRUTILLA, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAGAT |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, CASPA DE GATO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAGEP |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, EPITELIO DE GATO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAGLU |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, GLUTEN, SUERO |
Plazos |
5 Dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAGRC |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, POOL DE GRAMINEAS Y COMPUESTAS, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAHCO |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, HORMIGA COLORADA, SUERO |
Plazos |
5 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAHIE |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, HIERBAS, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable Clase 0: 0.1 a 0.34: Muy bajo: Negativo Clase I: 0.35 a 0.69: Bajo: Positivo Clase II: 0.70 a 3.49: Moderado: Positivo Clase III: 3.50 a 17.49: Alto: Positivo Clase IV: 17.5 a 52.49: Muy Alto: Positivo Clase V: 52.5 a 99.99: Muy Alto: Positivo Clase VI: Mayor de 100: Muy Alto: Positivo |
Modificado/Vigencia |
14.10.2026 |
RAHOA |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, HONGOS AEROGENOS, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAHOT |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, HONGOS TOTALES, SUERO (Penicillum notatum, Cladosporium herbarum, Asper |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
02.06.2026 |
RAHUE |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, HUEVO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
19.02.2025 |
RALAB |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, LACTOGLOBULINA, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1 ml de suero |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RALAC |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, ALFALACTOALBUMINA, SUERO |
Plazos |
4 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
02.11.2023 |
RALAT |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, LATEX, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RALEV |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, LECHE DE VACA, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RALOL |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, LOLIUM PERENNE (RAYGRASS), SUERO |
Plazos |
6 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
RAMAI |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, MAIZ, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1 ml de suero refrigerado |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAMAN |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, MANI, SUERO |
Plazos |
5 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
22.11.2023 |
RAMOS |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, VENENO DE MOSQUITOS, SUERO |
Plazos |
6 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
24.02.2025 |
RANAR |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, NARANJA, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
|
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
19.02.2025 |
RANUE |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, NUEZ, SUERO |
Plazos |
6 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
09.01.2024 |
RAOVO |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, OVOMUCOIDE, SUERO |
Plazos |
6 días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAPEG |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, PENICILINA G(Vía intramuscular), SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAPEN |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, PENICILLIUM NOTATUM, SUERO |
Plazos |
6 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
|
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/l Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/l Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/l Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/l Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/l Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/l Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/l Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/l
|
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAPEP |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, EPITELIO DE PERRO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAPES |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, PESCADO Y MARISCOS, SUERO (SALMÓN,ATÚN,BACALAO,CAMARÓN Y MEJILLÓN) |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAPEV |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, PENICILINA V(Vía oral), SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAPLA |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, PLATANO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAPLN |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, POLEN (ARCE,ABEDUL,ROBLE,OLMO,NOGAL), SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
Arce, Abedul, Roble, Olmo, Nogal) |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscenciqa |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
18.11.2025 |
RAPLU |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, PLUMAS, SUERO |
Plazos |
6 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero libre de hemólisis. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RAPOA |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, POA PRATENSIS, SUERO |
Plazos |
5 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
13.11.2023 |
RAPOL |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, POLVO CASERO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RARHI |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, RHIZOPUS SP, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
13.10.2026 |
RASAL |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, SALMON, SUERO |
Plazos |
6 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
RASOJ |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, SOJA, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 ku/l : Ausencia o indetectable Clase 0: 0.1 a 0.34 ku/l: Muy bajo: Negativo Clase I: 0.35 a 0.69 ku/l: Bajo: Positivo Clase II: 0.70 a 3.49 ku/l: Moderado: Positivo Clase III: 3.50 a 17.49 ku/l: Alto: Positivo Clase IV: 17.5 a 52.49 ku/l: Muy Alto: Positivo Clase V: 52.5 a 99.99 ku/l : Muy Alto: Positivo Clase VI: Mayor de 100 ku/l: Muy Alto: Positivo |
Modificado/Vigencia |
23.05.2018 |
RASOV |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, OVOALBUMINA, SUERO |
Plazos |
5 Días habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RATOM |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, TOMATE, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RATRI |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, TRIGO, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RATUN |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, ATUN, SUERO |
Plazos |
6 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0 : No detectable: Menor de 0.10 kU/L Clase 0 : Muy bajo : 0.10 a 0.34 kU/L Clase I : Bajo : 0.35 a 0.69 kU/L Clase II : Moderado : 0.70 a 3.49 kU/L Clase III: Alto : 3.50 a 17.49 kU/L Clase IV : Muy Alto : 17.50 a 52.49 kU/L Clase V : Muy Alto : 52.50 a 99.99 kU/L Clase VI : Muy Alto : Mayor de 100 kU/L
|
Modificado/Vigencia |
09.01.2024 |
RAYEM |
ANTICUERPOS IGE ESPECÍFICOS, YEMA DE HUEVO, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Clase 0: hasta 0.1 : Ausencia o indetectable |
Modificado/Vigencia |
28.01.2025 |
RENA |
ACTIVIDAD DE RENINA |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Instrucciones: • De no haber indicación médica obtener la muestra con el paciente acostado luego de un reposo de 30 minutos. La posición erguida es mantener al paciente de pie aproximadamente 30 minutos. Obtener 1.5 ml plasma con EDTA y antes de 30 minutos de obtenida separar en tubo de Kahn. Congelar (-18°C a -20°C) Recomendaciones: No aceptar pacientes medicados con alguno de los siguientes fármacos: eplerenona, espironolactona, triamtireno, amilorida, diuréticos tiazídicos.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Consultar con su médico interrumpir las medicaciones no permitidas para este examen: eplerenona, espironolactona, triamtireno, amilorida, diuréticos tiazídicos. Tener presente que deberá hacer un reposo de 30 min en la sede antes de la extracción.
|
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Ambulatorio (posición erguida): 0.10 - 6.56 ng/ml/hs
|
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
RENI |
RENINA PLASMATICA |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Instrucciones: • De no haber indicación médica obtener la muestra con el paciente acostado luego de un reposo de 30 minutos. La posición erguida es mantener al paciente de pie aproximadamente 30 minutos. Obtener 2.5 ml plasma con EDTA y antes de 30 minutos de obtenida separar en tubo de Kahn. Congelar (-18°C a -20°C) Recomendaciones: No aceptar pacientes medicados con alguno de los siguientes fármacos: eplerenona, espironolactona, triamtireno, amilorida, diuréticos tiazídicos. “ENVIAR TUBO EXCLUSIVO PARA ESTA DETERMINACION” |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Consultar con su médico interrumpir las medicaciones no permitidas para este examen: eplerenona, espironolactona, triamtireno, amilorida, diuréticos tiazídicos . Tener presente que deberá hacer un reposo de 30 min en la sede antes de la extracción. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Posición de pie: 4.4 a 46.1 uUI/ml Posición supina: 2.8 a 39.9 uUI/ml |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
RESP |
CULTIVO BACTERIOLOGICO MATERIAL RESPIRATORIO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Envase estéril. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico en envase estéril. • Conservar y transportar la muestra a Temperatura Ambiente |
Instrucciones al paciente |
La muestra es obtenida por el médico bajo condiciones de rigurosa asepsia • Se remite al laboratorio en recipiente estéril a Temperatura ambiente. |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
04.09.2024 |
RESPC |
RESISTENCIA A LA PROTEINA C ACTIVADA, PLASMA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • 1- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 2- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 3- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 4- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 5- Adjuntar planilla con datos clínicos |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
Mayor de 1.8 |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
RETIC |
RECUENTO DE RETICULOCITOS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 5,0 ml de sangre con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Analizador Mindray 6800 plus con tecnología SF Cube |
Valores de referencia |
Hombre: 0,8 a 2,5 %. Mujer: 0,8 a 4,0 % |
Modificado/Vigencia |
31.03.2026 |
RETRO |
RETROCULTIVO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
SOLO PARA INTERNACION Materiales necesarios: Jeringas y agujas estériles, guantes, solución antiséptica, alcohol 70% o alcohol común, Frascos de hemocultivo STANDAR AEROBIC (Azul). Procedimiento: Se realiza lavado de manos con jabón antiséptico o gel alcohólico, Colocarse guantes estériles, Se prepara un campo estéril que contenga jeringas y agujas estériles , gasa embebida en alcohol 70 , riñonera ( no es necesario que sea estéril), Se decontamina el sitio de punción del catéter con alcohol 70., Se decontamina el tapón de goma del frasco de hemocultivo con una gasa embebida en alcohol 70, Se extrae 3-5 ml. de sangre a través del catéter y los descarta, Con otra jeringa, de la misma rama se obtiene sangre y se inocula en el frasco de hemocultivo sin invertir el frasco ni agitar ,cuidando de no introducir aire ni producir espuma , Se homogeneiza suavemente luego de descartar la aguja.
|
Instrucciones al paciente |
Se envían los frascos de inmediato al laboratorio.
|
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
20.11.2025 |
RETROR |
RETROCULTIVO CON RESINA |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
SOLO PARA INTERNACION Materiales necesarios: Jeringas y agujas estériles, guantes, solución antiséptica, alcohol 70% o alcohol común,Frascos de hemocultivo PLUS AEROBIC (Gris). Procedimiento: Se realiza lavado de manos con jabón antiséptico o gel alcohólico, Colocarse guantes estériles, Se prepara un campo estéril que contenga jeringas y agujas estériles , gasa embebida en alcohol 70 , riñonera ( no es necesario que sea estéril), Se decontamina el sitio de punción del catéter con alcohol 70., Se decontamina el tapón de goma del frasco de hemocultivo con una gasa embebida en alcohol 70, Se extrae 3-5 ml. de sangre a través del catéter y los descarta, Con otra jeringa, de la misma rama se obtiene sangre y se inocula en el frasco de hemocultivo sin invertir el frasco ni agitar ,cuidando de no introducir aire ni producir espuma , Se homogeneiza suavemente luego de descartar la aguja. IMPORTANTE: INFORMAR AL EXTRACCIONISTA EL VOLUMEN DE SANGRE EXTRAIDO, YA QUE EL HEMOCULTIVO PERIFERICO ACOMPAÑANTE ES INOCULADO CON EL MISMO VOLUMEN DE SANGRE QUE SE EXTRAE A TRAVES DEL CATETER INMEDIATAMENTE DESPUES DE REALIZADO DICHO PROCEDIMIENTO) |
Instrucciones al paciente |
Se envían los frascos de inmediato al laboratorio.
|
| Método |
Hemocultivo automatizado |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
20.11.2025 |
RH |
FACTOR Rh |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de sangre con EDTA. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Aglutinación. |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
RHINO |
RHINOVIRUS, ARN, SECRECIONES RESPIRATORIAS |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N 95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con: • Hisopos estériles con punta de poliéster o dacron, nunca de madera con punta de algodón. • Tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0,5 mL (mínimo) y 1,0 mL (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras no se hayan conservado refrigeradas, las que haya sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias. Instrucciones: SECRECIONES NASALES O FARÍNGEAS • Obtener las muestras de los orificios nasales profundos (hisopado nasal) o de la faringe (hisopado faríngeo).Por cada tipo de muestra (nasal o faríngea) recolectar dos hisopos. • Colocar ambos hisopos en el tubo con solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente y rotular. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARÍNGEOS O BRONQUIALES • Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. • Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. |
Instrucciones al paciente |
N/A |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
01.03.2025 |
RICKG |
RICKETTSIA ANTICUERPOS IgG |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia indirecta |
Valores de referencia |
Rickettsia thyphi: Negativa menor de 1/64 Rickettsia rickettsii: Negativa menor de 1/64 |
Modificado/Vigencia |
22.12.2025 |
RICKM |
RICKETTSIA TYPHI IgM |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunofluorescencia indirecta |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
27.11.2018 |
RISTO |
FACTOR DE von WILLEBRAND FUNCIONAL (COFACTOR DE RISTOCETINA) |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
La extracción debe realizarse con un reposo previo de 30 minutos Remitir al laboratorio analítico 5,0 ml de plasma citratado en tubo plástico (polipropileno o similares) a temperatura ambiente (18°C a 25°C) o congelado (-18°C a -20°), según el tiempo de transporte al laboratorio. Instrucciones: • Obtener sangre periférica en tubo con citrato. • Centrifugar y separar el sobrenadante. • Es posible mantener la muestra a temperatura ambiente durante no más de 4 horas, pasado ese lapso debe ser congelada y remitida en hielo seco al lugar de procesado.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Al llegar deberá permanecer en reposo, al menos 30 minutos antes de la extracción. |
| Método |
Turbidimetría |
Valores de referencia |
50 a 150 % |
Modificado/Vigencia |
12.05.2026 |
RNP |
ANTICUERPOS ANTI - RIBONUCLEOPROTEINA (RNP), SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
• Negativo : Menor de 25 U/ml Elevado: Mayor o igual a 25 U/ml |
Modificado/Vigencia |
03.01.2020 |
ROTAG |
ANTIGENO ROTAVIRUS, MATERIA FECAL |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir a DAA la materia fecal refrigerada de LUNES A SABADOS |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario proveerse de un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo), un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc.), lavado con agua y jabón, una cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco, nunca hisopos. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera.
Instrucciones para obtener las muestras: Obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril. Si se trata de heces liquidas la cantidad a tomar será no más de 1 cm del recipiente estéril. Si se trata de pañal, raspar y pasar al envase estéril. No llevar al laboratorio el pañal, “no será aceptado”
Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas.
|
| Método |
Inmunocromatografía |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
03.06.2026 |
RSVAG |
SINCICIAL RESPIRATORIO VIRUS, ANTIGENO, SECRECIONES RESPIRATORIAS |
Plazos |
Al día siguiente. SI LA MUESTRA LLEGA AL LABORATORIO ANTES DE LA 14 HS . |
Indicaciones para el laboratorio |
Las personas que tengan a su cargo la obtención de muestras respiratorias en pacientes con sospecha de infección viral deben utilizar obligatoriamente antiparras, mascarillas con filtro N95 (desechable) y contar además con los elementos y demás dispositivos de seguridad para trabajar con materiales infecciosos. Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0.5 ml (mínimo) y 1.0 ml (máximo) de solución fisiológica estéril. Serán rechazadas las muestras que no se hayan conservado refrigeradas, las que hayan sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias.
Instrucciones: ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARINGEOS O BRONQUIALES:Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo. Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. No se recibirán jeringas, ni sondas, ni cánulas con el materia a analizar. Si llega una cánula el Laboratorio se procederá mediante una jeringa y una aguja a lavar la cánula con 0.5 ml de solución fisiológica y recoger este material en el tubo plástico debidamente etiquetado. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
IFD (Inmunofluorescencia directa) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
04.02.2026 |
RSVGI |
SINCICIAL RESPIRATORIO VIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo (Valor de corte: 1/10)
|
Modificado/Vigencia |
27.12.2023 |
RSVMI |
SINCICIAL RESPIRATORIO VIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
27.12.2023 |
RUBG |
RUBEOLA, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 5.0 UI/ml |
Modificado/Vigencia |
28.08.2023 |
RUBMM |
RUBEOLA, ANTICUERPOS IGM, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.75 |
Modificado/Vigencia |
23.08.2023 |
SALI |
ÁCIDO SALICILICO, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero refrigerado |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico -Trinder |
Valores de referencia |
Rango terapeutico: Menor de 25 mg/dl
|
Modificado/Vigencia |
11.08.2025 |
SAMR |
BUSQUEDA DE SAMR |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Con hisopos estériles, tomar muestra de zona axilar, nasal e inguinal según indique el médico. Colocar cada uno en un tubo con el medio de Stuart. Rotular todo debidamente. |
Instrucciones al paciente |
Realizar higiene como habitual la noche anterior. No colocar cremas ni desodorantes en axila e ingle. Por la mañana concurrir al laboratorio sin previa higiene. |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
12.03.2025 |
SARGI |
SARAMPION, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: menor de 13.5 UA/ml |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
SARMI |
SARAMPION, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: menor de 0.90 |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
SAU |
BUSQUEDA DE STAPHYLOCOCUS AUREUS |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Con hisopos estériles, tomar muestra de zona axilar, nasal e inguinal según indique el médico. Colocar cada uno en un tubo con el medio de Stuart. Rotular todo debidamente.
|
Instrucciones al paciente |
Realizar higiene habitual la noche anterior. No colocar cremas ni desodorantes en axila e ingle. Por la mañana concurrir al laboratorio sin previa higiene.
|
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A.
|
Modificado/Vigencia |
12.03.2025 |
SCL70 |
ANTICUERPOS ANTI - SCL- 70, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 15 U/ml Valor de corte: 15 a 25 U/ml Positivo: Mayor de 25 U/ml |
Modificado/Vigencia |
08.10.2014 |
SED |
SEDIMENTO, ORINA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico orina obtenida en ayunas al levantarse. |
Instrucciones al paciente |
Para realizar este estudio debe proveerse de un recipiente de plástico rígido de boca ancha, con tapa hermética de rosca, de alrededor de 0,250 litros de capacidad. El recipiente (envase y tapa) debe estar totalmente limpio, sin restos de mayonesa, champú, etc. No usar envases que hayan contenido lavandina, detergentes, agua oxigenada o dulces Instrucciones: 1. Observar una retención urinaria, de toda la noche si le es posible; si no, tratar de cumplir una retención de 3 horas como mínimo. 2. Al levantarse recolectar la primer orina de la mañana en el envase plástico. Tapar el envase, asegurándose de haber cerrado bien la tapa. Adherir un rótulo con su nombre y apellido completos y llevar la orina al Laboratorio. No se aceptarán envases con orina derramada. |
| Método |
Observación microscópica. |
Valores de referencia |
Leucocitos: Menor 3 por campo de 40x. • Hematíes: Menor de 3 por campo de 40x. •Cilindros: Negativo. •Cristales: Negativo |
Modificado/Vigencia |
21.08.2025 |
SELE |
SELENIO, SANGRE |
Plazos |
13 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ICP-MS (Espectroscopía de masa) |
Valores de referencia |
Hasta 2 meses: 45-90 ug/l De 3 a 6 meses: 50-120 ug/l De 7 a 9 meses: 60-120 ug/l De 10-12 meses: 70-130 ug/l De 13 meses a 17 años: 70-150 ug/l Mayores de 17 años: 110-165 ug/l - |
Modificado/Vigencia |
08.05.2026 |
SELUR |
SELENIO, ORINA |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos mas una alícuola de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Absorción atómica (Horno de grafito) |
Valores de referencia |
Hasta 25 ug/g creatinina
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Modificado/Vigencia |
14.07.2020 |
SEMEN |
ESPERMOCULTIVO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: envases estériles. Remitir al laboratorio semen en envase estéril. Solo en aquellos casos en que la orden médica indica además de semen, cultivo de primer chorro de orina, confirmar que se haya recolectado primero la orina y luego el semen (ver INDICACIONES AL PACIENTE). Remitirlos lo antes posible al laboratorio, sin refrigerar.
|
Instrucciones al paciente |
Instrucciones: • Suspender todo tratamiento antibiótico 72 horas antes de la obtención de las muestras, excepto expresa indicación de su médico. • Abstinencia sexual de 72 hs. • Antes de obtener la muestra de orina (si esta indicada): retención urinaria de toda la noche, si es posible, o como mínimo de 3 horas. • Obtener primero la muestra de primer chorro de orina e inmediatamente después obtener semen por masturbación. • Tapar cuidadosamente los recipientes, rotularlos con su nombre y la fecha. Remitirlo al laboratorio, sin refrigerar. No se aceptarán muestras derramadas Muestra de Esperma: 1. Obtener por masturbación. 2. Eyacular directamente dentro del segundo envase estéril, cuidando de recolectar todo el volumen emitido. Muestra Semen: Recoger la muestra antes de comenzar cualquier tratamiento con antibióticos. Si está recibiendo algún antibiótico, interrumpir el tratamiento 72 horas antes de obtener la muestra, excepto indicación contraria de su médico• Se requiere una abstinencia sexual de 72 hs. Antes de obtener la muestra realizar una meticulosa higiene genital con agua y jabón. Con el prepucio retraído, higienizar tres veces el pene, enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel. Obtener por masturbación. Eyacular directamente dentro del envase estéril, cuidando de recolectar todo el volumen emitido. Solo en aquellos casos en que la orden médica indica además de semen, cultivo de primer chorro de orina, recolectar primero la orina (primer chorro) y luego el semen. Muestra ORINA: El estudio se realiza con la primera orina de la mañana, o con una retención urinaria mínima de 3 horas. La muestra a obtener consiste en recolectar la primer porción de orina. Se deben recolectar 10 ml de orina en frasco estéril. Tapar cuidadosamente los recipientes, rotularlos con su nombre y la fecha. Remitirlos al laboratorio, sin refrigerar. No se aceptarán muestras derramadas.
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| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
04.09.2024 |
SENHF |
SENSIBILIDAD DE HONGOS FILAMENTOSOS |
Plazos |
14 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Cepa Hongo Filamentoso aislada
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Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
#N/A |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
27.04.2023 |
SENLEV |
SENSIBILIDAD DE LEVADURAS |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Cepa de levadura aislada |
Instrucciones al paciente |
# N/A |
| Método |
Sensititre |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
28.02.2018 |
SER24 |
SEROTONINA (5 - HIDROXITRIPTAMINA), ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 ml de orina de 24 horas con el conservante, refrigerada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
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| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Hasta 210 ug/24 horas |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
SEROT |
SEROTONINA (5-HIDROXITRIPTAMINA) (5-HT), SUERO |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero, libre de hemólisis.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Para la realización del estudio es necesario: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente debe tomar y suspender los demás. No fumar .No realizar ejercicios extremos. |
| Método |
HPLC- EQ (Cromatografía Líquida de Alta Performance, con detección electtroquímica) |
Valores de referencia |
Hasta 230 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
06.10.2025 |
SERPT |
SEROTONINA (5 - HIDROXITRIPTAMINA), PLAQUETAS |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
1.- Hacer la extracción con jeringa plástica colocar la muestra en dos tubos plásticos con EDTA de 10 ml cada uno y en un tubo con EDTA de 2.5 ml. Mezclar suavemente. En el tubo de 2.5 ml pegar la etiqueta LAV-4. Si el pedido tiene Hemograma no es necesario sacar el tubo de 2.5 ml
2.- Centrifugar inmediatamente ambos tubos de 10 ml 10 - 15 minutos a 500 - 800 rpm para obtener plasma rico en plaquetas (PRP).
3.- Separar el PRP obtenido de cada uno de los dos tubos. El PRP debe estar libre de hemólisis.
4.- Contar las plaquetas de los dos tubos. El recuento debe ser superior a 150.000 plq/ mm3 en el PRP.
5.- Previa homogeinización, separar bien medido, aproximadamente 1 ml de PRP en cada uno de 2 tubos Eppendorf.
6.- Centrifugar a 3500 rpm durante 15 minutos.
7.- Decantar los sobrenadantes y escurrir sobre papel absorbente. El pellet de plaquetas, no debe contener hematíes.
8.- Congelar inmediatamente ambos pellets a -20°C.
9.- Enviar congelados ambos tubos y refrigerado el tobo de 2.5 ml con los siguientes datos :
Tomar muestras solo de lunes a viernes SEDES AMBULATORIAS Y SANATORIOS PROPIOS : por favor solo realizar el ítem 1 y enviar las muestras a División Analítica. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. 1.- Quince días antes de la toma de muestra, el paciente debe suspender, si el médico lo consiente, toda medicación con inhibidores de la MAO. En caso contrario deberá informarla medicación que recibe.
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| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
Recién nacido: 0.93 a 2.41 nmol/1000 millones de plaquetas Niños: 3.05 a 5.13 nmol/1000 millones de plaquetas Adultos: 2.94 a 4.68 nmol/1000 millones de plaquetas Ancianos: 1.45 a 3.6 nmol/1000 millones de plaquetas |
Modificado/Vigencia |
28.05.2026 |
SIFIL |
ANTICUERPOS ANTI-TREPONEMA PALLIDUM, SUERO |
Plazos |
5 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA |
Valores de referencia |
No Reactivo: Menor de 1.0
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Modificado/Vigencia |
04.07.2024 |
SM |
ANTICUERPOS ANTI - SMITH (SM), SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,4 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
EIA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 15 U/ml Valor de corte: 15 a 25 U/ml Positivo: Mayor de 25 U/ml |
Modificado/Vigencia |
08.10.2014 |
SOMAC |
SOMATOMEDINA C (IGF1) |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
1 año: 55-327 ng/ml 2-4 años: 50-289 ng/ml 5-6 años: 51-292 ng/ml 7-9 años: 64-345 ng/ml1 10 años: 88-452 ng/ml1 11 años: 111-551 ng/ml1 12 años: 143-693 ng/ml 13 años: 183-850 ng/ml 14-15 años: 220-996 ng/ml 16-17 años: 193-903 ng/ml 18-19 años: 141-584 ng/ml 20 años: 127-424 ng/ml 21-30 años: 116-358 ng/ml 31-40 años: 109-307 ng/ml 41-50 años: 94-267 ng/ml5 1-60 años: 81-238 ng/ml Mayores de 60 años: 55 - 220 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
21.02.2025 |
SOMF |
SANGRE OCULTA, MATERIA FECAL |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir a DA la materia fecal refrigerada.
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Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario: 1) Proveerse de un envase estéril, de boca ancha con tapa hermética (pueden ser de urocultivo). 2) Obtener un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc.), lavado con agua y jabón. 3) Obtener una cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco.
Dieta y preparación antes de tomar la muestra: Durante 3 días previos a la recolección de la muestra: No comer carnes rojas o de aves, embutidos, remolacha, rábano picante, nabo, zapallo, zanahoria, verduras de hoja. Puede comer pescado, papa, batata, tomate, legumbres, pastas, arroz, lácteos, quesos, huevo, frutas, como banana, manzana y peras peladas. Puede beber agua, gaseosas e infusiones. - 48 Hs antes no deberá ingerir NI alcohol, Ni aspirina - Reemplazar el cepillado de encías por un enjuague bucal con antiséptico. -la muestra NO debe ser recolectada durante el periodo menstrual, si tienen hemorroides sangrantes, sangre en orina o si se ha administrado medicación por vía rectal.
Instrucciones para obtener las muestras: Al cuarto día, continuando con la dieta, obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado y seco (no en el inodoro), evitando que se contamine con orina. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril ( esto será lo que entregue en el laboratorio).
Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas."
Observación: si se trata de un estudio seriado deberá mantenerse la dieta hasta obtener la cantidad de muestras requeridas por su médico.Recordar obtener cada muestra diaria en un recipiente diferente. |
| Método |
Oxidación catalítica con tetrametil bencidina. |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
03.06.2026 |
SOMFI |
SANGRE OCULTA, MATERIA FECAL, INMUNOLOGICO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir a DA la materia fecal refrigerada. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario: 1) Proveerse de un envase estéril de boca ancha con tapa hermética (puede ser uno de urocultivo). 2) Proveerse de un recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc), lavado con agua y jabón. 3)Proveerse de una cuchara de plástico descartable nueva para trasvasar materia fecal al frasco.
Instrucciones para obtener las muestras: Obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado y seco (no en el inodoro), evitando que se contamine con orina. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril (esto será lo que entregue en el laboratorio).
Consideraciones importantes: La muestra NO debe ser recolectada durante el periodo menstrual, si tienen hemorroides sangrantes, sangre en orina o si se ha administrado medicación por vía rectal .- 48 Hs antes no deberá ingerir NI alcohol Ni aspirina - No necesita dieta previa –
Llevar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso de no poder hacerlo conservar en heladera por un período no mayor de 12 horas.
Observación: si se trata de un estudio seriado de dos o más muestras se procederá de igual manera en la toma de cada muestra. Recordar obtener cada muestra diaria en un recipiente diferente.
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| Método |
Inmunológico |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
03.06.2026 |
SSA |
ANTICUERPOS ANTI - SSA-RO, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 15 U/ml Valor de corte: 15 a 25 U/ml Positivo: Mayor de 25 U/ml |
Modificado/Vigencia |
08.10.2014 |
SSB |
ANTICUERPOS ANTI - SSB-LA, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
• Negativo: Menor de 15 U/ml Valor de corte: 15 a 25 U/ml Positivo: Mayor de 25 U/ml |
Modificado/Vigencia |
08.10.2014 |
STAT35 |
ENFERMEDADES DEL SISTEMA INMUNE. GENES STAT3, STAT5B Ficha |
Plazos |
60 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio de proceso como mínimo 7.0 ml de sangre con EDTA Remitir copia de la órden médica y datos clínicos del paciente. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno |
| Método |
NGS |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
24.06.2026 |
STH |
SOMATOTROFINA (STH), SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analitico como minimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia. |
Valores de referencia |
• Adultos: Varones: hasta 3,00 ng/ml Mujeres: hasta 8.00 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
02.10.2023 |
SU16F |
PRUEBA DE CORTISOL POST - DEXAMETASONA, VESPERTINO, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero post-dexametasona. Obtener la muestra sin ayuno previo de Lunes a Jueves a las 16:00 hs; asegurarse que la persona la noche anterior a las 23.00 hs haya tomado un comprimido de 1,0 mg de dexametasona. Recordar que el paciente debe efectuar un reposo de 20 min antes de la obtención de la muestra.
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Instrucciones al paciente |
Antes de efectuar el estudio debe proveerse, bajo prescripción médica, de dexametasona comprimidos de 1,0 mg. La prueba consiste en la obtención de una muestra para medir cortisol a las 16:00 hs del día siguiente, post ingestión de 1mg de dexametasona la noche anterior.
Instrucciones para la prueba: A las 23:00 hs debe tomar el comprimido con 1.0 mg de dexametasona. Al día siguiente, de Lunes a Jueves, concurrir al laboratorio a las 15:30 hs del día siguiente para la obtención de la muestra post tratamiento.
La extracción solo se realiza en Niceto Vega 5651 En el laboratorio deberá hacer un reposo de 20 minutos y a las 16:00 hs se obtendrá la muestra de sangre.
Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario respetar estrictamente los horarios. No requiere ayuno.
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| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
08.07.2026 |
SUPDI |
SUPERÓXIDO DISMUTASA, ACTIVIDAD, SANGRE |
Plazos |
8 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 5 ml de sangre periférica con heparina.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
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| Método |
Espectrofotométrico |
Valores de referencia |
164 a 240 U/ml |
Modificado/Vigencia |
18.03.2026 |
T/HDL |
COLESTEROL TOTAL / COLESTEROL HDL, RELACIÓN (INDICE DE CASTELLI) |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colesterol total: Enzimático colorimétrico; Colesterol HDL: Enzimático colorimétrico |
Valores de referencia |
•Riesgo coronario 50%: Varones adultos: relación menor de 3.5 Mujeres adultas: relación menor de 3.4• Riesgo coronario promedio: Varones adultos: relación entre 3.5 y 5.0 Mujeres adultas: relación entre 3.4 y 4.5. • Riesgo coronario 200%: Varones adultos: relación entre 5,1 y 9,6 Mujeres adultas: relación entre 4.5 y 7.1 • Riesgo coronario 300%: Varones adultos: relación entre 9,7 y 24.0 Mujeres adultas: relación entre 7,2 y 11.0 |
Modificado/Vigencia |
21.08.2025 |
T3 |
TRIIODOTIRONINA (T3), SUERO |
Plazos |
1 Días hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. No tomar la medicación con hormonas tiroideas antes del estudio. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
1-11 meses 1.00-2.20 ng/ml 1-5 años 0.90-2.20 ng/ml 6-10 años 0.90-2.10 ng/ml 11-14 años 0.70-1.90 ng/ml 15-18 años 0.60-1.70 ng/ml Adultos: 0.60 a 1.81 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
T3L |
TRIIODOTIRONINA LIBRE (T3 LIBRE), SUERO |
Plazos |
1 Días hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. No tomar la medicación con hormonas tiroideas antes del estudio. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 1 año: 3.3 - 5.2 pg/ml De 2 a 12 años: 3.3 - 4.8 pg/ml De 23 a 20 años: 3.0 - 4.7 pg/ml Mayores de 20 años: 2.3 a 4.2 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
14.08.2026 |
T4 |
TIROXINA TOTAL (T4), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 mL de suero (mínimo 0,25 mL) |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. No tomar la medicación con hormonas tiroideas antes del estudio. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 3 dias 4.9 – 20.4 Hasta 1 mes 4.7 – 20,9 1-11 meses 6.3-13.6 ug/dl 1-5 años 6.0-13.0 ug/dl 6-10 años 5.8-12.0 ug/dl 11-14 años 5.4-12.0 ug/dl 15-18 años 5.0-11.8 ug/dl Adultos: 4.50 a 11.90 µg/dl
|
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
T4L |
TIROXINA LIBRE (T4L), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero (mínimo 0,25 ml) |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. No tomar la medicación con hormonas tiroideas antes del estudio. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
1 mes a 23 meses: 0.94 a 1.44 ng/dl 2 años a 12 años: 0.86 a 1.40 ng/dl 13 años a 20 años: 0.83 a 1.43 ng/dl Mayores de 21 años: 0.89 a 1.76 ng/dl
|
Modificado/Vigencia |
15.10.2025 |
TAU217 |
PROTEINA FOSFORILADA TAU-217 |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al Laboratorio 1.0 ml de plasma con EDTA |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0,185 pg/ml Intermedio: 0,186 a 0,324 pg/ml Positivo: Mayor a 0,325 pg/ml
|
Modificado/Vigencia |
21.04.2026 |
TAVTO |
TOXOPLASMOSIS, PRUEBA DE AVIDEZ, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELFA |
Valores de referencia |
Menor de 0.40: IgG de baja avidez |
Modificado/Vigencia |
27.10.2025 |
TBCQU |
MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS, ADN |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenidos, en envase estéril cualquiera de las siguientes muestras: • Material de biopsia • 5,0 mL de sangre periférica con EDTA • Líquidos de lavado broncoalveolar • Líquido cefalorraquídeo (200 mcL), etc. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
25.07.2024 |
TBG |
PROTEINA TRANSPORTADORA DE TIROXINA (TBG), SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
14 a 31 ug/ml |
Modificado/Vigencia |
27.11.2018 |
TBII |
ANTICUERPOS ANTI - RECEPTOR DE TSH (TBII), SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 1.75 UI/l |
Modificado/Vigencia |
10.02.2026 |
TCA |
ÁCIDO TRICLOROACETICO, ORINA |
Plazos |
15 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Espectrofotométrico |
Valores de referencia |
Indice Biológico de Exposición: < 10 mg/L |
Modificado/Vigencia |
24.09.2018 |
TCARA |
TOXOCARA CANIS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 ml de suero.
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
• Negativo: hasta 0,30 UDO |
Modificado/Vigencia |
30.09.2025 |
TCET |
2,2,2 - TRICLOROETANOL, ORINA |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Espectrofotométrico |
Valores de referencia |
Indice de exposición biológica: hasta 30 mg/l |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
TELOC |
TELOPEPTIDOS, CROSSLAPS, SUERO |
Plazos |
3 Dias hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero refrigerado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
• Varones adultos hasta 50 años:16 a 584 pg/mL; 50 a 70 años hasta 704 pg/mL Mayor de 70 años: hasta 854 pg/mL • Rango población premenopáusica: 74 a 550 pg/mL; • Percentilo 10 % en población premenopáusica: 166 pg/mL.25%:222. 50%:292. 75%:414 .98%:519. • Percentilo 25 % en población premenopáusica: 222 pg/mL; • Percentilo 50 % en población premenopáusica: 292 pg/mL; • Percentilo 75 % en población premenopáusica: 414 pg/mL; • Percentilo 98 % en población premenopáusica: 519 pg/mL; • Rango población post menopáusica: 556 ± 226 pg/mL. Mujer posmenopausica: hasta 1008 pg/ml Varones adultos |
Modificado/Vigencia |
07.05.2026 |
TER4 |
GENES DE LA TERNEZA DE CARNES BOVINAS, MARCADORES GENETICOS (Calpastatina CAST-2959, Calpastatina Uo |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestras: El análisis de marcadores genéticos de terneza de la carne en bovinos puede realizarse en cualesquiera de los siguientes materiales: • Folículos pilosos: obtener 20 a 50 pelos de la punta de la cola, cuidando que tengan su folículo piloso (parte engrosada). Lavar cuidadosamente (deben estar libres de materia fecal u otra suciedad) y remitir al laboratorio en un sobre a temperatura ambiente. • Semen bovino: remitir al laboratorio una pajuela en envase de telgopor con refrigerante. • Sangre periférica con EDTA, en envase de telgopor con refrigerante. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Amplificación genómica alelo específica y RFLP (RESTRICTION FRAGMENT LENGTH POL |
Valores de referencia |
Genotipos: • Genotipo homocigoto, mayor terneza: ++ (Score = 2) • Genotipos heterocigotos, intermedios: +0 (Score = 1) • Genotipo homocigoto, menor terneza: 00 (Score = 0) Score individual de terneza (sumatoria de los puntajes de los cuatro genotipos, de cada individuo): • 8 a 7: mayor terneza. • 6 a 4: intermedios • 3 a 0: menor terneza. |
Modificado/Vigencia |
21.05.2018 |
TERG |
TEST DE RIESGO FETAL, PRIMER TRIMESTRE, SUERO |
Plazos |
4 dias hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero. Se realiza para Screening del primer trimestre del embarazo en semanas 10 a 13, preferentemente en semanas 11 o 12. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio en la fecha indicada por el médico. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia (Roche) |
Valores de referencia |
BETA LIBRE Semana de Gestación Mediana 9 75.5 mUI/ml 13 29.5 mUI/ml
PROTEINA ASOCIADA AL EMBARAZO (PAPP) 13 4.35 mUI/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
TESBD |
TESTOSTERONA BIODISPONIBLE, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Recomendaciones: Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo, contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
| Método |
Por cálculo derivado de ley de acción de masas a partir de testosterona total (Quimiol |
Valores de referencia |
Mujeres: 0.02 a 0.27 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
TESLI |
TESTOSTERONA LIBRE, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Recomendaciones: Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo, contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
| Método |
Por cálculo derivado de ley de acción de masas a partir de testosterona total (Quimiol |
Valores de referencia |
Mujeres: 4.0 a 39.0 pmol/l |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
TESTO |
TESTOSTERONA TOTAL, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. Recomendaciones: Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo, contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. No requiere ayuno. Informar a la recepcionista del laboratorio si está suplementado con testosterona en cualquier presentación (chip, parche, inyección, pastillas, gel, etc). |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hombres: Hasta 6 meses: 1.5 - 3.5 ng/ml De 7 a 11 meses: 0.5 - 1.5 ng/ml De 1 a 12 Años: Menos de 0.2 ng/ml Adultos: 2.41 - 8.27 ng/ml
Mujeres: Hasta 12 años: Menos de 0.2 ng/ml Adultas: 0.14 - 0.76 ng/ml
|
Modificado/Vigencia |
14.08.2026 |
TFALA |
FENILALANINA NEONATAL, GOTA DE SANGRE SECA |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras deben ser obtenidas desde las 48 horas del nacimiento hasta los 7 días de vida, como máximo.Solicitar al laboratorio el soporte de papel apropiado para la obtención y transporte de la muestra.
Método de obtención de las muestras: 1. Entibiar el talón del bebé con una compresa tibia, punzarlo con una lanceta desechable, formar con el pulgar y el índice un pliegue de la piel en lugar de la punción y oprimir para obtener las gotas de sangre 2. Embeber con la sangre cada uno de los círculos marcados en el papel hasta que la sangre se distribuya homogéneamente por toda la superficie del círculo en ambas caras del mismo. 3. Completar cuidadosamente todos los datos solicitados en el soporte y colocarlo en un envase tipo Ziploc para proteger de la humedad. Si es necesario adjuntar planilla de datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Fluoroinmunoensayo con tecnología DELFIA ® |
Valores de referencia |
Normal: Hasta 3,0 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
TGLUA |
ANTICUERPOS ANTI - TRANSGLUTAMINASA, IgA, SUERO |
Plazos |
4 Dias Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 20 U/ml Positivo: Mayor de 20 U/ml |
Modificado/Vigencia |
21.01.2026 |
TGLUG |
ANTICUERPOS ANTI -TRANSGLUTAMINASA, IgG, SUERO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 0,5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 20 U/ml Positivo: Mayor de 20 U/ml |
Modificado/Vigencia |
21.01.2026 |
TIOOR |
TIOCIANATO (SULFOCIANATO, SULFOCIANURO O RODANURO), ORINA |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 15 mL de orina espontánea en 2 tubos plásticos mas una alícuola de 5 ml en tubo de Khan. Enviar refrigerada. Recolectar la orina al final del turno al final de la semana laboral.
|
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Espectrofotométrico |
Valores de referencia |
BEI: Menor de 6 mg/g creatinina
|
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
TIOSG |
TIOCIANATO (SULFOCIANATO, SULFOCIANURO O RODANURO), SANGRE |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3,0 mL de plasma heparinizado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Espectrofotométrico |
Valores de referencia |
No fumadores: 0,10 a 0,40 mg/dL; Fumadores: 0,30 a 1.20 mg/dL; Límite de detección: 0,05 mg/dL. |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
TIPH |
IDENTIFICACIÓN HONGOS FILAMENTOSOS |
Plazos |
14 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Cepa Hongo Filamentoso aislada |
Instrucciones al paciente |
#N/A |
| Método |
#N/A |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
28.02.2018 |
TIPL |
LEVADURAS IDENTIFICACIÓN |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Cepa de levadura aislada |
Instrucciones al paciente |
#N.A. |
| Método |
Cultivo |
Valores de referencia |
#N.A. |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
TIROG |
TIROGLOBULINA, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
1,6 a 77 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
06.09.2023 |
TOCAM |
TOXOCARA CANIS, ANTICUERPOS IgM, SUERO "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA" |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. "MOMENTANEAMENTE SUSPENDIDA"
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.950 |
Modificado/Vigencia |
23.10.2025 |
TOPIR |
TOPIRAMATO, PLASMA |
Plazos |
13 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2.0 ml de plasma refrigerado (4°C-8°C). Instrucciones: Obtener sangre periférica con EDTA. Centrifugar, separar el plasma y refrigerar. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
TMS (Espectrometría de Masa en Tándem) |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 2,0 a 20 ug/ml
|
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
TOXAI |
TOXOPLASMOSIS, ANTICUERPOS IgA, SUERO |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 ml de suero.. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo Valor de corte: 1/16 |
Modificado/Vigencia |
24.02.2025 |
TOXGI |
TOXOPLASMOSIS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
TOXM |
TOXOPLASMOSIS, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor a 0.50 |
Modificado/Vigencia |
01.09.2023 |
TOXMI |
TOXOPLASMOSIS, ANTICUERPOS IgM, SUERO (IFI) |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
18.05.2018 |
TOXTB |
TOXOIDE TETANICO TOTAL, ANTICUERPOS, SUERO |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Otorgan protección valores mayores a 0.1 UI/ml |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
TOXXE |
TOXOPLASMOSIS, ANTICUERPOS IgG, SUERO (QUIMIOLUMISCENCIA) |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: menor de 1.6 UI/ml Indeterminado: de 1.6 a 2.9 UI/ml Positivo: Igual o mayor a 3.0 UI/ml |
Modificado/Vigencia |
25.08.2023 |
TRANS |
TRANSFERRINA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico |
Valores de referencia |
200 a 360 mg/dl
|
Modificado/Vigencia |
27.01.2025 |
TRICH |
TRICHINELLA SPIRALIS, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 mL de suero. Completar planilla
|
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Negativo: menor o igual a 0,30 ODU |
Modificado/Vigencia |
22.06.2021 |
TRIG |
TRIGLICERIDOS, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimático colorimétrico |
Valores de referencia |
Sin ayuno: Hasta 1 año: 43 a 198 mg/dl De 1 a 10 años: 35 a 128 mg/dl De 10 a 19 años: 41 a 162 mg/dl Mayores de 19 años: Hasta 175 mg/dl
Con ayuno: Hasta 19 años: Hasta 90 mg/dl Mayores de 19 años: Hasta 150 mg/dl |
Modificado/Vigencia |
13.08.2026 |
TRIPN |
TRIPSINA INMUNOREACTIVA NEONATAL, GOTA DE SANGRE SECA |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras deben ser obtenidas desde las 48 horas del nacimiento hasta los 7 días de vida, como máximo.Solicitar al laboratorio el soporte de papel apropiado para la obtención y transporte de la muestra.
Método de obtención de las muestras: 1. Entibiar el talón del bebé con una compresa tibia, punzarlo con una lanceta desechable, formar con el pulgar y el índice un pliegue de la piel en lugar de la punción y oprimir para obtener las gotas de sangre 2. Embeber con la sangre cada uno de los círculos marcados en el papel hasta que la sangre se distribuya homogéneamente por toda la superficie del círculo en ambas caras del mismo. 3. Completar cuidadosamente todos los datos solicitados en el soporte y colocarlo en un envase tipo Ziploc para proteger de la humedad. Si es necesario adjuntar planilla de datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Fluoroinmunoensayo con tecnología DELFIA ® |
Valores de referencia |
Normal: Hasta 70 ng/ml. |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
TROML |
TIEMPO DE TROMBINA |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir 1 ml de plasma citratado congelado (-18°C a -20°), obtenido por doble centrifugación. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
Hasta 22 segundos. |
Modificado/Vigencia |
05.06.2025 |
TROPU |
TROPONINA T, CUANTITATIVA |
Plazos |
1 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir como mínimo 0.5 ml de plasma con heparinao suero Si es una urgencia, remitir al laboratorio de Proceso (Otamendi) Si la muestra no es URGENTE, remitir a División Analítica. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
|
| Método |
Electroquimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 14 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
15.05.2026 |
TRP |
TRIPTOFANO, SUERO |
Plazos |
11 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
•Adultos: 5.1 a 14.9 mg/L. |
Modificado/Vigencia |
08.11.2018 |
TSH |
TIROTROFINA SERICA ULTRASENSIBLE SUERO (TSH) |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Volúmen mínimo 250 mcl |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 3 días 5,17 a 14,6 uUI/ml 4 a 30 días: 0,43 a 16,1 uUI/ml 1 a 11 meses 0.8 a 6.2 µUI/ml 1 a 5 años 0.7 a 5.7 µUI/ml 6 a 10 años 0.6 a 5.0 µUI/ml 11 a 18 años 0.5 a 4.4 µUI/ml Adultos : 0.40 a 4.00 µUI/ml
|
Modificado/Vigencia |
25.08.2023 |
TSHN |
TIROTROFINA NEONATAL, GOTA DE SANGRE SECA |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras deben ser obtenidas desde las 48 horas del nacimiento hasta los 7 días de vida, como máximo.Solicitar al laboratorio el soporte de papel apropiado para la obtención y transporte de la muestra.
Método de obtención de las muestras: 1. Entibiar el talón del bebé con una compresa tibia, punzarlo con una lanceta desechable, formar con el pulgar y el índice un pliegue de la piel en lugar de la punción y oprimir para obtener las gotas de sangre 2. Embeber con la sangre cada uno de los círculos marcados en el papel hasta que la sangre se distribuya homogéneamente por toda la superficie del círculo en ambas caras del mismo. 3. Completar cuidadosamente todos los datos solicitados en el soporte y colocarlo en un envase tipo Ziploc para proteger de la humedad. Si es necesario adjuntar planilla de datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método |
Fluoroinmunoensayo con tecnología DELFIA ® |
Valores de referencia |
Hasta 9,0 uU/ml |
Modificado/Vigencia |
02.02.2026 |
TXUR |
TOXOPLASMA GONDII, ADN |
Plazos |
10 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenidos, en tubo estéril 3.0 ml de plasma con EDTA o 1.0 ml de líquido cefalorraquídeo. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
13.05.2024 |
URE |
UREA, SANGRE |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimatico (ureasa) UV |
Valores de referencia |
Hasta 12 meses: 11 – 53 mg/dl 1 a 15 años: 14 – 50 mg/dl 16 a 60 años: 17 – 49 mg/dl Mayor de 61años: 14 – 50 mg/dl
|
Modificado/Vigencia |
20.01.2025 |
URE24 |
UREA, ORINA 24 HS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico 5 ml de orina de 24 horas tubo de Kahn a temperatura ambiente (18°C a 25°C). Consignar la diuresis: las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
|
| Método |
Enzimatico UV |
Valores de referencia |
15 a 34.2 g/24 horas |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
URET |
SECRECIÓN URETRAL, CULTIVO BACTERIOLÓGICO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: • 2 Hisopos estériles de aluminio. • 1 Tubo con medio de transporte de Stuart (solicitar al laboratorio). • 1 Portaobjetos desengrasado. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). • Procedimiento: El paciente debe concurrir al laboratorio con tres horas de retención como mínimo. Solicitarle al paciente que retraiga el prepucio y presione hacia delante sobre el cuerpo del pene para observar la presencia de secreción y poder introducir mejor el hisopo en la uretra. Introducir por rotación el hisopo en la uretra y efectuar un extendido sobre el portaobjetos. Con el segundo hisopo obtener otra muestra y colocarlo en el tubo con medio de transporte. Tapar cuidadosamente, rotular con los datos del paciente. En caso de solicitar cultivos de Mycoplasma, Ureaplasma, se debe realizar el procedimiento por triplicado e introducir el tercer hisopo en el medio de transporte correspondiente. Si se solicita Chlamydia, con un cuarto hisopo, obtener muestra y colocarlo en tubo seco esteril. |
Instrucciones al paciente |
Suspender todo tratamiento antibiótico (oral o local) 72 horas antes de la toma de la muestra salvo indicación médica. Concurrir al laboratorio con tres horas de retención como mínimo.
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| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
04.09.2024 |
URI24 |
ACIDO URICO, ORINA DE 24 HORAS |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio orina de 24 horas, una alícuota de 5 mL en tubo de Kahn. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Se recomienda: No realizar ejercicios físicos intensos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). No efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
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| Método |
Enzimático colorimetrico |
Valores de referencia |
250 a 750 mg/24 horas |
Modificado/Vigencia |
23.01.2026 |
URIC |
ACIDO ÚRICO, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1.0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimático - Colorimétrico |
Valores de referencia |
Hasta 14 días: 2.7 a 7.1 mg/dl De 14 Días a 12 meses: 2.0 a 5.9 mg/dl De 1 a 3 años: 2.0 a 5.4 mg/dl De 4 a 6 años: 2.4 a 5.7 mg/dl De 7 a 12 años: 2.7 a 6.0 mg/dl De 13 a 18 años: Hombres: 3.0 a 7.1 mg/dl Mujeres: 2.5 a 6.0 mg/dl Mayores de 19 años: Hombres: 3.5 a 7.2 mg/dl Mujeres: 2.6 a 6.0 mg/dl
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Modificado/Vigencia |
11.08.2026 |
UROCO |
UROCULTIVO |
Plazos |
4 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Materiales necesarios: Envase esteril. El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio analítico la porción de chorro medio de orina en envase estéril. • Conservar y transportar las muestras refrigeradas (4°C). |
Instrucciones al paciente |
Instrucciones: - Recoger la muestra antes de comenzar cualquier tratamiento con antibióticos. Si está recibiendo algún antibiótico, interrumpir el tratamiento 72 horas antes de obtener la muestra, excepto indicación contraria de su médico. - Obtención de la muestra: El estudio se realiza con la primera orina de la mañana, o con una retención urinaria mínima de 3 horas. - Antes de obtener la muestra realizar una meticulosa higiene genital con agua y jabón, en el caso de las MUJERES: realizar la higiene de adelante hacia atrás (nunca de atrás hacia adelante, para no contaminar) y enjuagar abundantemente con agua y secar con toalla de papel. Las mujeres adultas deben colocarse un tampón vaginal. Para los VARONES: Con el prepucio retraído, higienizar tres veces el pene, enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel. - La muestra a obtener consiste en orina correspondiente a la porción del chorro medio. Para esto, debe comenzar a orinar en el inodoro, desechando esa parte; luego recoger la porción media en el envase estéril; y finalmente desechar la última parte de la micción. NIÑOS QUE NO CONTROLAN ESFÍNTERES: La muestra debe ser obtenida “ al acecho”, sin usar bolsas colectoras. Es conveniente no recoger más de una micción en el mismo envase. - Para obtener la muestra higienizar la zona genital tres veces con agua y jabón, de adelante hacia atrás, para evitar la contaminación, enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel (en los varones higienizar con el prepucio retraído). Luego dar de beber líquido y cuando se presume que va a orinar quedarse al acecho hasta que el bebé orine, destapar el envase, desechar las primeras gotas de orina y recoger el resto directamente en el envase estéril evitando en lo posible que la muestra toque la piel. Si transcurre media hora y el niño no ha orinado repetir la higiene y todo el procedimiento. - Tapar el envase y refrigerar en la heladera. Conservar y transportar la muestras refrigerada (4°C). No se aceptarán muestras remitidas en bolsa colectora. |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
11.01.2019 |
VALPR |
VALPROATO, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero. Solicitar al paciente dosis y hora de toma del medicamento e informarlas al laboratorio de proceso junto a la hora de extracción. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra. |
| Método |
Inmunoensayo homogéneo con micropartículas |
Valores de referencia |
Rango terapéutico: 50 a 100 mcg/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
VANCO |
VANCOMICINA, SUERO |
Plazos |
2 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio de proceso como mínimo 1.0 ml de suero si es URGENTE y cargar el test MOTO. Consignar horario de la última inyección del producto; horario de obtención de la muestra, tiempo que lleva de tratamiento y dosis. Si la muestra no es URGENTE, remitir a División Analírica. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Enzimoinmunoensayo Homogeneo |
Valores de referencia |
•Concentración en el pico: 30 a 40 mcg/ml. • Concentración en el valle: 5 a 10 mcg/ml |
Modificado/Vigencia |
13.08.2025 |
VANDE |
GRASAS TOTALES (VAN DE KAMER), MATERIA FECAL |
Plazos |
15 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Remitir al laboratorio la totalidad de la materia fecal recogida durante 48 horas en envase de polipropileno de boca ancha, luego de una dieta de 3 días, al cabo de los cuales se efectúa la recolección de las heces, manteniendo la dieta. Enviar en días de semana, no se recibe los sábados No aceptar pañales con materia fecal. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario: • Obtener un envase de polipropileno, de boca ancha, con tapa hermética, para contener el material de todas las deposiciones de 2 días. El envase puede comprarse en una farmacia. • Pesar el envase, incluyendo la tapa, en alguna balanza doméstica o de otra índole. Anotar el peso en el mismo envase. • Observar una dieta de 5 días, comenzando al cuarto día la recolección de la materia fecal. Dieta: Adultos: La dieta consiste en ingerir durante 5 días una cantidad de manteca proporcional al peso corporal, agregada a las comidas o como sea mejor tolerada. Las comidas deberán tener poco aceite y no se deberá ingerir otro tipo de grasas, más que la manteca. Cantidades de manteca, según peso corporal: • Hasta 50 Kg: 50 gramos por día; • 50 a 80 Kg: 80 gramos por día; • Más de 80 Kg: 100 gramos por día; Niños: Durante 5 días agregar a la alimentación habitual del niño 1 gramo de manteca por kilo de peso, repartidos entre todas las comidas. Instrucciones para obtener la muestra: Adultos: • Durante los 5 días de duración de la dieta anotar la fecha y hora aproximada de todas las veces que haya defecado. • No recoger las deposiciones durante los 3 primeros días de la dieta. • Durante el cuarto y quinto día de la dieta recoger en el envase plástico la materia fecal en su totalidad, sin perder ninguna deposición. Todas las deposiciones de esos dos días deben ir en el mismo envase. Desde el momento de la primera recolección la materia fecal debe ser guardada en lugar fresco. Remitir el envase al laboratorio a la mañana siguiente de terminada la recolección. Niños: • Durante los 5 días de duración de la dieta anotar la fecha y hora aproximada de todas las veces que haya defecado. • Niños que controlan esfínteres: Durante el cuarto y quinto día de la dieta recoger en el envase plástico la materia fecal en su totalidad, sin perder ninguna deposición. Todas las deposiciones de esos dos días deben ir en el mismo envase. • Si usan pañales, después de cada deposición retirar inmediatamente del pañal toda la materia fecal, raspando para evitar que queden restos en el mismo, y colocarla en el envase. • En todos los casos, desde el momento de la primera recolección la materia fecal debe ser guardada en lugar fresco. Remitir el envase al laboratorio a la mañana siguiente de terminada la recolección. |
| Método |
Método de Van de Kamer |
Valores de referencia |
• Adultos: hasta 6,0 g/24 horas. • Niños: hasta 1,8 g/24 hs. |
Modificado/Vigencia |
22.02.2012 |
VARGI |
VARICELLA ZOSTER, ANTICUERPOS IgG, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0.5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo : Menor de 150 mUI/ml
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Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
VARMI |
VARICELLA ZOSTER, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 0.5 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menores a 1 Positivo: Mayores o igual a 1
|
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
VCAG |
EPSTEIN BARR VIRUS, CÁPSIDE VIRAL, ANTICUERPOS IgG, SUERO (ELISA) |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Interpretacion: Negativo: Menor de 9 Positivo: Mayor 11 Dudoso: 9 a 11 |
Modificado/Vigencia |
02.05.2023 |
VCAM |
EPSTEIN BARR VIRUS, CÁPSIDE VIRAL, ANTICUERPOS IgM, SUERO |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0,5 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
ELISA (Enzimoinmunoensayo) |
Valores de referencia |
Interpretacion: Negativo: Menor de 9 Positivo: Mayor de 11 Dudoso: 9 a 11 |
Modificado/Vigencia |
02.05.2023 |
VCH |
BUSQUEDA DE VIBRIO CHOLERAE |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
• El laboratorio debe proporcionar las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). • Solicitar al laboratorio medio de transporte de Stuart. Mantener a temperatura ambiente (18°C a 25°C). • No se aceptarán pañales con materia fecal. |
Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario proveerse de: • Envase estéril de boca ancha con tapa hermética y del medio de transporte provisto. • Recipiente seco para recoger las deposiciones (chata, palangana, etc), lavado con agua y jabón. • Cuchara de plástico desechable, nueva o desinfectada, para trasvasar materia fecal al frasco. Alternativamente puede utilizarse una espátula estéril de madera. • Instrucciones para obtener las muestras: • Obtener materia fecal de cualquier deposición espontánea en el recipiente desinfectado, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té en el envase estéril y con el hisopo tomar de una porciòn y colocarlo en el medio de transporte • Seleccionar preferentemente una porción de la materia fecal de aspecto sanguinolento o mucoso • Si se trata de pañal, raspar y pasar al envase estéril y al medio de transporte. No llevar el pañal al laboratorio: no será aceptado. • Conservar a temperatura ambiente hasta llevar ambos (frasco y medio de transporte) al laboratorio. |
| Método |
Bacteriología directa y cultivo |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
28.02.2018 |
VD125 |
1.25 HIDROXIVITAMINA D |
Plazos |
33 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio 1.0 ml de suero refrigerado.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
De 19.9 a 79.3 pg/ml |
Modificado/Vigencia |
08.10.2026 |
VD25C |
VITAMINA D, 25-HIDROXI, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia - La metodología permite la detección de Vitamina D2 y D3 |
Valores de referencia |
Deficiente: Menor de 10 ng/ml Insuficiente: 10 a 30 ng/ml Toxicidad: Mayor de 100 ng/ml Deseable: Mayor de 30 ng/ml |
Modificado/Vigencia |
17.08.2023 |
VDNUR |
VIRUS DEL NILO, ARN |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenidos, en tubo estéril 1,0 mL de suero o 200 ul de líquido cefalorraquídeo. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
RT-PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
15.03.2023 |
VDRL |
VDRL (VENEREAL DISEASE RESEARCH LABORATORY) CUALITATIVA, SUERO |
Plazos |
1 día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Floculación |
Valores de referencia |
No reactiva |
Modificado/Vigencia |
16.04.2014 |
VDRLC |
VDRL(VENEREAL DISEASE RESEARCH LABORATORY) CUANTITATIVA, SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Floculación |
Valores de referencia |
No reactiva |
Modificado/Vigencia |
22.02.2012 |
VDRLR |
VDRL(VENEREAL DISEASE RESEARCH LABORATORY), LIQUIDOCEFALORRAQUIDEO |
Plazos |
1 Día Hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico líquido cefalorraquídeo en envase estéril, en el día de su obtención. |
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
Floculación |
Valores de referencia |
No reactiva |
Modificado/Vigencia |
30.03.2019 |
VIIID |
FACTOR VIII DE LA COAGULACÓN, CURVA DE DILUCIÓN |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 mL de plasma citratado. Instrucciones: • Obtener sangre periférica en tubo citratado. Centrifugar inmediatamente. • Mantener a temperatura ambiente (18°C a 25°C) durante no más de 4 horas; de lo contrario congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • Adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Coagulométrico |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
VIRSI |
VIRUELA SIMICA, ADN, CUALITATIVO |
Plazos |
2 Días Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir la laboratorio analítico: 1-Hisopado del contenido vesicular: Frotar vigorosamente la lesión para garantizar que se recolecta suficiente material para la obtención del ADN viral. Colectar 1 hisopo tomado de una o varias vesículas, aún a pesar de tener características diferentes, y colocar en tubo seco estéril. 2-Costras de lesiones: Remitir en tubo seco estéril. 3- Hisopado rectal : En caso de utilizar rectoscopio y visualizar la lesión, frotar vigorosamente la lesión para garantizar que se recolecta suficiente material para la obtención del ADN viral . En ausencia de lesión, introducir el hisopo y rotar 10 seg. contra la mucosa rectal . En ambos casos recolectar en tubo seco estéril. NOTA: -En ningún caso agregar solución fisiológica. -Utilizar únicamente hisopos de dacrón o poliéster. -Dos lesiones del mismo tipo deben recogerse en un solo tubo, preferiblemente de diferentes lugares del cuerpo y que difieren en apariencia, usar diferente hisopo, pero deben ir todos los hisopos en elmismo tubo. Ej, hisopado de vesícula o de superficies cutáneas. -Los hisopados de diferentes tipos de lesiones ej: vesículas líquidas y costras no deben mezclarse en el mismo tubo, deben ir en tubos diferentes. Las costras deben ir en tubo seco diferente al de loshisopados. -Mantener las muestras refrigeradas hasta tanto enviar al laboratorio de proceso Las muestras deben estar acompañadas con ficha epidemiológica, resumen de historia clínica y solicitud de diagnóstico. Para facilitar la identificación en receptoría de análisis, aclarar por fuera del triple envase: MUESTRA PARA DX DE VIRUELA SÍMICA.
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Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N.A.
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Modificado/Vigencia |
02.09.2024 |
VITA |
VITAMINA, A (RETINOL), SUERO |
Plazos |
26 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1.0 ml de suero en tubo plástico BLANCO. Mantener de esta forma la muestra al abrigo de la luz y congelado. Enviar tubo exclusivo para esta determinación.
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Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas.
El paciente debe abstenerse de ingerir alcohol las 24 hs previas a la toma de muestra.
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| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
1 - 6 años: 0.25 a 0.43 mg/l Adultos: 0.30 a 1.20 mg/l |
Modificado/Vigencia |
24.08.2026 |
VITB1 |
VITAMINA B1 (TIAMINA), SUERO |
Plazos |
22dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 0.60 ml de suero congelado (-18°C a -20°C) y al abrigo de la luz. Utilizar tubos de plástico con tapa hermética envueltos en papel metálico para proteger las muestras de la luz. Enviar tubo exclusivo para esta determinación |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
4,0 a 20 ug/l |
Modificado/Vigencia |
16.12.2025 |
VITB2 |
VITAMINA B2 (RIBOFLAVINA), SUERO |
Plazos |
13 dias habiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,0 ml de suero congelado (-18°C a -20°C) y al abrigo de la luz. Utilizar tubos de plástico con tapa hermética envueltos en papel metálico para proteger las muestras de la luz Enviar tubo exclusivo para esta determinación |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
6,2 a 39 nmol/l |
Modificado/Vigencia |
08.07.2026 |
VITB6 |
VITAMINA B6 (PIRIDOXINA), SUERO |
Plazos |
22 Días Hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 0.6 ml de suero congelado (-18°C a -20°C) y al abrigo de la luz. Instrucciones Utilizar tubos de plástico con tapa hermética envueltos en papel metálico para proteger las muestras de la luz Enviar tubo exclusivo para esta determinación |
Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método |
HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
Valores de referencia |
2 a 17 años: 3.00 a 40.00 ng/ml Adultos: 10.00 a 40.00 ng/ml • |
Modificado/Vigencia |
16.12.2025 |
VITE |
VITAMINA E (ALFATOCOFEROL), SUERO |
Plazos |
26 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 2,0 ml de suero en tubo plástico BLANCO. Mantener de esta forma la muestra al abrigo de la luz y congelado. Enviar tubo exclusivo para esta determinación.
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Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método |
HPLC |
Valores de referencia |
5 - 20 mg/l |
Modificado/Vigencia |
16.12.2025 |
VLDL |
COLESTEROL VLDL (Very Low Density Lipoprotein Cholesterol), SUERO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
N.A. |
Valores de referencia |
Hasta valores de triglicéridos de 400 mg/dL, se considera que el nivel de colesterol VLDL debe ser equivalente aproximadamente a la quinta parte del de éstos. |
Modificado/Vigencia |
22.02.2012 |
VONWI |
FACTOR DE von WILLEBRAND ANTIGENICO |
Plazos |
1 Día hábil |
Indicaciones para el laboratorio |
Muestra: Remitir al laboratorio analítico 2,5 ml de plasma citratado. Instrucciones: • 1-La extracción debe realizarse con un reposo previo de 30 minutos 2- Obtener sangre periférica en tubo citratado. 3- Inmediatamente después de extraer, centrifugar a 3000 rpm durante 15 minutos y separar el plasma con pipeta de plástico (polipropileno similares), pasándolo a un tubo de plástico. 4- Centrifugar el plasma que se separó nuevamente a 3000 rpm durante 15 minutos y con pipeta de plástico transferir el sobrenadante a otro tubo plástico. 5- Congelar a -18°C a -20°C y remitir al lugar de procesado en estas condiciones. • 6- Adjuntar a la muestra planilla con datos clínicos. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Se deberán evitar situaciones de estrés, actividad física excesiva, fumar o comer en forma abundante el día anterior al estudio. Dirigirse al laboratorio realizando la menor actividad posible (por ej. no concurrir en bicicleta) al llegar deberá permanecer en reposo, al menos 30 minutos antes de la extracción. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico (LIA-Test) |
Valores de referencia |
60 a 170 % |
Modificado/Vigencia |
19.09.2025 |
VRPCR |
PANEL VIRUS RESPIRATORIOS, ARN (INFLUENZA A, INFLUENZA B, SINCICIAL RESPIRATORIO, CORONAVIRUS) |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Las muestras recomendadas son aquellas del tracto respiratorio bajo, incluyendo esputo, lavado broncoalveolar y aspirado traqueal (cuando sea posible según los criterios médicos). Sin embargo, cuando no es posible la toma de estas muestras, las del tracto respiratorio alto también son útiles, como ser hisopado nasofaríngeo combinado con un hisopado orofaríngeo (los hisopos deben colocarse y transportarse en el mismo tubo con medio de transporte viral).
Para la obtención de muestras respiratorias el laboratorio debe contar con: Hisopos estériles con punta de poliéster o dacron, nunca de madera con punta de algodón. Tubos plásticos (polipropileno o similares), estériles, con tapa a rosca con 0,5 ml (mínimo) y 1,0 ml (máximo) de solución fisiológica de uso parenteral estéril.
Serán rechazadas las muestras que no se hayan conservado refrigeradas, las que haya sido obtenidas en tubos con heparina y las que no correspondan a secreciones respiratorias.
Instrucciones:
SECRECIONES NASALES O FARÍNGEAS: Obtener las muestras de los orificios nasales profundos (hisopado nasal) o de la faringe (hisopado faríngeo).Por cada tipo de muestra (nasal o faríngea) recolectar dos hisopos. Colocar ambos hisopos en el tubo con solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente y rotular. Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante. Adjuntar la planilla de datos clínicos
ASPIRADOS TRAQUEALES, NASOFARÍNGEOS O BRONQUIALES: Diluir el material obtenido por aspiración en la solución fisiológica estéril. Tapar cuidadosamente el tubo.Refrigerar a temperatura de heladera (4°C-8°C) y remitir al laboratorio analítico en contenedor térmico con refrigerante.
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Instrucciones al paciente |
N/A |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
N/A |
Modificado/Vigencia |
23.06.2026 |
VZUR |
VARICELLA ZOSTER VIRUS, ADN, CUALITATIVO (URGENTE) |
Plazos |
5 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir en el día de obtenido, en tubo estéril 200 uL de líquido cefalorraquídeo. También se puede procesar en hisopado de lesiones o plasma con EDTA 1.0 ml (la búsqueda en sangre se realiza en caso de pacientes inmunosuprimidos o bebés).
|
Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método |
PCR (Real Time) |
Valores de referencia |
N.A. |
Modificado/Vigencia |
13.05.2024 |
WID |
WIDAL, REACCION DE, SUERO (Antígeno somático O de Salmonella Typhi; Antígeno Fl |
Plazos |
2 Día hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Aglutinación. |
Valores de referencia |
Negativo |
Modificado/Vigencia |
21.05.2018 |
XIIIC |
FACTOR XIIIC CUANTITATIVO |
Plazos |
2 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir 1 ml de plasma citratado congelado (-18°C a -20°), obtenido por doble centrifugación. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Inmunoturbidimétrico |
Valores de referencia |
70 a 140 % |
Modificado/Vigencia |
01.10.2026 |
ZIKA |
VIRUS DE ZIKA, ARN |
Plazos |
3 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 3.0 ml de plasma con EDTA refrigerado (2 a 8 °C). Adjuntar obligatoriamente ficha epidemiológica completa
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
PCR Real Time |
Valores de referencia |
#N/A |
Modificado/Vigencia |
03.09.2025 |
ZIKAG |
ZIKA VIRUS, ANTICUERPOS IGG |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero.
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Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.9 Indeterminado: 0.9 a 1.1 Positivo: Mayor de 1.1 |
Modificado/Vigencia |
19.09.2024 |
ZIKAM |
ZIKA VIRUS, ANTICUERPOS IGM |
Plazos |
7 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimioluminiscencia |
Valores de referencia |
Negativo: Menor de 0.9 Indeterminado: 0.9 a 1.1 Positivo: Mayor de 1.1 |
Modificado/Vigencia |
19.09.2024 |
ZINC |
ZINC, SUERO |
Plazos |
1Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero libre de hemólisis. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Colorimétrico |
Valores de referencia |
70-120 ug/dl |
Modificado/Vigencia |
23.12.2024 |
ZINCA |
ZINC, SUERO (ABSORCION ATOMICA) |
Plazos |
10 Dias hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero libre de hemólisis. "SOLO SOLICITABLE PARA INTERLAB" |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
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| Método |
Absorción Atómica |
Valores de referencia |
Menores de 10 años: 0.60 a 1.20 ug/ml Mayores de 10 años: 0.66 a 1.10 ug/ml |
Modificado/Vigencia |
07.07.2022 |
ZNT8 |
TRANSPORTADOR DE ZINC, ANTICUERPOS |
Plazos |
26 Días hábiles |
Indicaciones para el laboratorio |
Remitir al laboratorio como mínimo 1.0 ml de suero refrigerado. |
Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método |
Quimiolumimiscencia |
Valores de referencia |
Hasta 10 AU/ml |
Modificado/Vigencia |
15.09.2026 |
Recuerde que puede ver sus resultados a través del ROL