| Listado de Análisis Clínicos |  |
| P1433 | PROTEINA 14-3-3 (ENFERMEDAD DE CREUTZFELDT-JAKOB), LCR |  |
| Plazos | 90 Días hábiles |
Instrucciones al paciente  |
N/A |
| Método | Western Blot |
| Valores de referencia | N/A |
| PAFEN | PARA-AMINOFENOL, ORINA | |
| Plazos | 7 |
| Instrucciones al paciente |
N/A |
| Método | HPLC |
| Valores de referencia | Indice Biológico de Expocición: Menor de 50 mg/g creatinina |
| PAFRE | PARASITOLOGICO EN FRESCO, MATERIA FECAL | |
| Plazos | 2 Día hábil |
| Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio solicitar al laboratorio un envase con la solución de conservación y transporte (SAF). No adquirir este envase en farmacias, puede contener otro conservante. Proveerse de un recipiente para recoger la deposición (chata, palangana, etc).
Instrucciones para obtener las muestras: Obtener material de cualquier deposición del día en el recipiente limpio, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té de la materia fecal y colocarlo en el envase. Conservar a temperatura ambiente, hasta llevar al laboratorio.
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| Método | Microscópico |
| Valores de referencia | N.A. |
| PAIP | GEN DEL INHIBIDOR DEL ACTIVADOR DEL PLASMINOGENO (PAI), POLIMORFISMO 4G / 5G, SANGRE PERIFÉRI | |
| Plazos | 25 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | PCR (Real Time) |
| Valores de referencia | •Genotipo homocigoto 4G/4G: marcador de riesgo en ambos alelos • Genotipo heterocigoto 4G/5G: marcador de riesgo en un solo alelo •Genotipo Homocigoto 5G/5G: no presenta marcador de riesgo. |
| PARA | PARACETAMOL | |
| Plazos | 3 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Concurrir al Laboratorio sin haber tomado la medicación de la mañana, la misma debe ser tomada después de obtenida la muestra.
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| Método | Enzimatico |
| Valores de referencia | Rango terapeutico 10-30 ug/ml - Nivel Toxico: mayor a 200 ug/ml
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| PARAC | PARACOCCIDIOIDES BRASILIENSIS, ANTICUERPOS, SUERO | |
| Plazos | 19 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Ouchterlony (doble difusión) |
| Valores de referencia | Negativo |
| PARGI | PAROTIDITIS HUMANA VIRUS, ANTICUERPOS IgG, SUERO | |
| Plazos | 2 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Quimioluminiscencia |
| Valores de referencia | Negativo: Menor a 9.0 UA/ml Dudoso: 9.0 a 11.0 UA/ml Positivo: Mayor a 11.0 UA/ml |
| PARMF | PARASITOLOGICO, MATERIA FECAL | |
| Plazos | 4 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio solicitar al laboratorio un envase con la solución de conservación y transporte (SAF). No adquirir este envase en farmacias, puede contener otro conservante. Proveerse de un recipiente para recoger la deposición (chata, palangana, etc).
Instrucciones para obtener las muestras: Durante 7 a 10 días (no más) obtener material de 3 a 5 deposiciones recogidas en días alternados (por ej,: Lunes, Miércoles y Viernes). Obtener cada deposición en un recipiente limpio, no en el inodoro. Inmediatamente recoger el equivalente a una cucharada de té de la materia fecal y mezclarla bien con el líquido conservante. Colocar el material de las siguientes deposiciones en el mismo envase. Conservar a temperatura ambiente, hasta llevar al laboratorio. |
| Método | Observación Microscópica |
| Valores de referencia | N.A. |
| PARMI | PAROTIDITIS HUMANA VIRUS, ANTICUERPOS IgM, SUERO | |
| Plazos | 2 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Quimioluminiscencia |
| Valores de referencia | Negativo: Menor de 0.9 |
| PARS | PARASITOS SUPERIORES | |
| Plazos | 2 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Remitir al laboratorio el material sospechoso diluido en Solución Fisiológica o en agua corriente, nunca con alcohol. El envase debe ser estéril o bien uno muy limpio asegurándose que no tenga restos de detergentes,lavandina ni alcohol. Cuidar que el recipiente quede bien cerrado.
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| Método | Microscópico |
| Valores de referencia | N.A. |
| PARVG | PARVOVIRUS B19, ANTICUERPOS IgG, SUERO | |
| Plazos | 2 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Quimioluminiscencia |
| Valores de referencia | Negativo: Menor a 0.90 U/ml Dudoso: 0.90 a 1.10 U/ml Positivo: Mayor a 1.10 U/ml |
| PARVO | PARVOVIRUS B19, ANTICUERPOS IgM, SUERO | |
| Plazos | 2 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Quimioluminiscencia |
| Valores de referencia | Negativo: Menor a 0.90 U/ml Dudoso: 0.90 a 1.10 U/ml Positivo: Mayor a 1.10 U/ml |
| PB | PLOMO, SANGRE | |
| Plazos | 15 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Espectrofotometría de Absorción Atómica (atomización en horno de grafito |
| Valores de referencia | Indice Biológico de Exposición: hasta 30.0 ug/dl |
| PBDAV | ANTICUERPOS HETERÓFILOS (PAUL - BUNNELL - DAVIDSON), SUERO | |
| Plazos | 2 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Paul-Bunnell-Davidson |
| Valores de referencia | Negativo |
| PBG | PORFOBILINOGENO, CUANTITATIVO, ORINA | |
| Plazos | 10 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: • Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. • Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros), si es posible de color caramelo o verde oscuro.. Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Si no es posible encontrar recipientes oscuros, envolverlos en papel de aluminio o papel negro, para evitar el contacto de la muestra con la luz. • Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. • Recolectar orina de 24 horas. Recolección de orina de 24 horas: 1. En la mañana del día de la prueba, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2. A partir de ese momento junte en el recipiente de recolección todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada al abrigo de la luz y en lugar fresco, preservándola del calor. 3. Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4. En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5. Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible, siempre al abrigo de la luz. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas. |
| Método | Cromatografía de intercambio iónico. Espectrofotométrico. |
| Valores de referencia | 0.5 a 2.1 mg/24 hs |